全 文 :α葡萄糖苷酶抑制活性跟踪分离芙蓉菊中的活性成分
吴琦1,杨秀伟1,邹磊2,3,傅德贤3
(1.北京大学 天然药物及仿生药物国家重点实验室 药学院 天然药物学系,北京 100191;
2.中国医药研究开发中心有限公司,北京 102206;
3.中国科学院 过程工程研究所 生化工程国家重点实验室,北京 100080)
[摘要] 目的:研究芙蓉菊全草中具有抑制α葡萄糖苷酶活性的化学成分。方法:采用体外α葡萄糖苷酶抑制活性跟踪
方法和各种柱色谱技术进行化学成分的分离和纯化;应用各种谱学方法鉴定化合物的结构;对单体化合物进行α葡萄糖苷酶
抑制活性试验,确定活性成分。结果:芙蓉菊70%乙醇提取物的醋酸乙酯萃取部分和水溶性部分对α葡萄糖苷酶活性具有较
强的抑制作用,从两部分分离鉴定了5,7二羟基3′,4′,5′三甲氧基黄酮 (1),东莨菪素(2),艾菊素,粗毛豚草素(3),5,5′,7
三羟基3′,4′二甲氧基黄酮(4),柯伊利素(5),万寿菊黄素3,6,7三甲基醚(6),石杉黄素(7),东莨菪苷(8)和槲皮万寿菊
素3,6二甲醚(9)。其中,化合物2,3,5~7,9对α葡萄糖苷酶活性具有较强的抑制作用,IC50(μmol·L
-1)值分别为(3436±
206),(14628±1244),(24626±873),(7406±383),(4219±525),(13620±2573),强于同条件下的阳性对照药
阿卡波糖[IC50=(48925±3855)μmol·L
-1]。化合物1,4,8和艾菊素的IC50值皆大于1000μmol·L
-1。结论:化合物5和
9为首次从该属植物中分离得到;化合物2,3,5~7,9对α葡萄糖苷酶活性具有较强的抑制作用,其抑制作用类型属于竞争性
抑制作用,它们可能是芙蓉菊防治糖尿病的物质基础。
[关键词] 芙蓉菊;黄酮;α葡萄糖苷酶
[收稿日期] 20090423
[基金项目] 国家基础研究发展计划(973)项目(2001CB51008)
[通信作者] 杨秀伟,Tel:(010)82805106,Email:xwyang@bjmu.
edu.cn
菊科蕲艾属 CrosostephiumLess.植物全世界有
4种,产中亚、东亚、菲律宾和美国加尼福利亚,我国
引种有芙蓉菊C.chinense(L.)Makino1种。广东
民间用芙蓉菊全草治疗糖尿病;叶入药治疗风寒感
冒、痈疽、疔疮;根入药治疗风湿性关节痛和胃脘冷
痛[1]。
食物中的多糖复合物可由淀粉酶水解为糊精
和寡糖,在肠吸收和进入血液循环之前进一步由
α葡萄糖苷酶(αglucosidase;又称 α葡萄糖苷水
解酶)水解,从低聚糖底物的非还原端切开 α1,4
糖苷键,释放出葡萄糖,在机体多种代谢功能中起
着关键的作用。它与因代谢紊乱失调引起的疾病
如糖尿病密切相关[2],人们试图寻找合适的抑制
剂,如 1995年德国拜耳公司上市的阿卡波糖
(Acarbose;拜唐平)现已成为控制和调节α葡萄糖
苷酶活性的首选药物,以期对有关疾病进行防治。
但是,由于阿卡波糖能够引起某些严重的副作用,
以 α葡萄糖苷酶为靶分子,从中药或天然产物中
寻找 α葡萄糖苷酶抑制剂已成为一个世界性的热
点[37]。本文以芙蓉菊全草治疗糖尿病为线索,研
究其是否存在抑制 α葡萄糖苷酶活性成分,阐明
其治疗糖尿病的物质基础。
1 仪器与试剂
JEOLAL300OV型核磁共振波谱仪,TMS为
内标,二甲基亚砜(DMSO)d6为溶剂;Finnigan
TRACEMS(EI电离源,70eV)质谱仪;HZSH型
恒温水浴振荡器(哈尔滨市东联电子技术开发有
限公司);UVmaxKineticMicroplateReader(Molecu
larDynamics,Inc.,Sunnyvale,California,CA,
USA)。96孔板购自 CorningCostar(Cambridge,
MA,USA)公司。α葡萄糖苷酶(EC32120,
028K1186)、对硝基酚αD吡喃葡萄糖苷(pnitro
phenylαDglucopyranoside,PNPG;097K2582)、对
硝基苯酚(pnitrophenol,PNP;097K2582)、牛血清
白蛋白(BSA)、DMSO皆购自 Sigma公司;阿卡波
糖(acarbose,100808200501)购自中国药品生物
制品检定所;Na2CO3购自北京化学试剂公司。柱
色谱和薄层色谱用硅胶皆为青岛海洋化工厂产
品;大孔吸附树脂 D101为天津化学试剂二厂产
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品;所用试剂皆为市售分析纯。
芙蓉菊样品采自广东芙蓉菊栽培基地,经中国
科学院植物研究所郭仲琛研究员鉴定为C.chinense
的全草,凭证标本存放在中国科学院过程工程研究
所标本室,标本号为2003081001。
2 方法
2.1 α葡萄糖苷酶抑制活性组分的跟踪分离
芙蓉菊干燥全草70%乙醇提取物溶于水中,依
次用环己烷、醋酸乙酯(EtOAc)和正丁醇(BuOH)萃
取,得相应萃取和残留水层,其制备过程详见文献
[89]。
EtOAc萃取物和残留水层对α葡萄糖苷酶活性
具有抑制作用,进行如下分离纯化。
取 EtOAc萃取物 350g经硅胶柱色谱,环己
烷EtOAc梯度洗脱,得 5个流分。流分 2反复经
硅胶柱色谱,石油醚丙酮(9∶1)和三氯甲烷
(CHCl3)EtOAc(8∶1)洗脱,得到化合物5,7二羟
基3′,4′,5′三甲氧基黄酮(1,30mg)。流分3经
硅胶柱色谱,CHCl3EtOAc(9∶1)和石油醚丙酮
(9∶1)洗脱,得到东莨菪素(2g,2)。流分4经硅
胶柱色谱,CHCl3丙酮梯度洗脱,分为 A,B,C,D4
个部分。A部分经硅胶柱色谱,环己烷EtOAc(1∶
1)洗脱,得到艾菊素(5g)。B部分再经硅胶柱色
谱,环己烷EtOAc梯度洗脱,得到2个组分;前一
组分经制备性 HPLC纯化,得到粗毛豚草素(3,30
mg)、5,5′,7三羟基3′,4′二甲氧基黄酮(4,30
mg)和柯伊利素(5,20mg);后一组分用丙酮重结
晶,得到万寿菊黄素3,6,7三甲基醚(6,1g),母
液经聚酰胺柱色谱,H2OMeOH洗脱,得到4(202
mg),5(205mg)和6(5mg)。D部份再经聚酰胺
柱色谱,EtOAcMeOH洗脱,得到石杉黄素(7,50
mg,4′,5′,5,7四羟基3′甲氧基黄酮)。流分5经
硅胶柱色谱,CHCl3MeOH(5∶1)洗脱,得到东莨菪
苷(8,200mg)。
残留水层部分500g经大孔吸附树脂柱色谱,依
次用 10%,30%,60%,95%乙醇水溶液梯度洗脱。
60%乙醇水溶液洗脱部分再反复经硅胶柱色谱,
CHCl3MeOHH2O(6∶3∶1)洗脱,得5个流分。流分2
经硅胶柱色谱,CHCl3MeOH(20∶1)洗脱,得到东莨菪
素(35mg);流分3经聚酰胺柱色谱,CHCl3MeOH(3∶
1)洗脱,得到化合物1(34mg)和槲皮万寿菊素3,6
二甲醚(9,21mg);流分4经硅胶柱色谱,CHCl3
MeOH(5∶1)洗脱,得到化合物8(30mg)。
2.2 α葡萄糖苷酶抑制活性的试验方法
2.2.1 试验方法 按稍改良的方法[10]在96孔板
上进行,用UVmaxKineticMicroplateReader于405nm
波长下测定吸光度A值。
2.2.2 标准曲线制作 根据采用的反应体系,用
01mol·L-1磷酸盐缓冲液(pH68)配制 1000
μmol·L-1PNP溶液,稀释成250,200,150,100,50,
25,10,5,2,0μmol·L-1系列浓度。分别取10个不
同浓度的 PNP溶液各160μL,加入02mol·L-1
Na2CO3溶液80μL,混匀,在405nm下测定A值,测
4组取平均值。以A值为纵坐标(Y),PNP浓度(X)
为横坐标,绘制标准曲线。
2.2.3 α葡萄糖苷酶活力的测定 根据所采用的
反应体系:112μL01mol·L-1磷酸钾缓冲液(pH
68),加入20μL08U·mL-1α葡萄糖苷酶溶液,
8μLDMSO,37℃恒温15min后加入50mmol·
L-1PNPG溶液20μL,37℃恒温反应15min。再加
入80μL02mol·L-1的Na2CO3溶液,于405nm波
长下测A值。
酶活力单位定义:37℃,pH68条件下,每分钟
水解底物PNPG所产生1μmol·L-1PNP的酶量,
规定为1个酶活力单位(U)。
2.2.4 数据分析 按照抑制率% =[1-(样品
A试验组 -样品A空白组)/(对照A试验组 -对照A空白组)]×
100%计算抑制率,并用 OriginPro75SR1软件计算
半数抑制浓度(IC50)值。实验数据用 珋x±s表示(n=
4)。各组组间差异采用F检验 双样本方差分析后,
采用t检验(Excel)进行组间的两两比较,以P<005
作为具有统计学意义的标准。
3 结果与讨论
3.1 结构鉴定
粗毛豚草素(hispidulin,3)和石杉黄素(selagin,
4′,5′,5,7四羟基3′甲氧基黄酮;7)的结构鉴定已
在文献[9]报道;通过与文献数据比较和与对照品
共TLC分析,鉴定了艾菊素(tanacetin)[1112],5,7
二羟基3′,4′,5′三甲氧基黄酮(tricetin3′,4′,
5′trimethylether,1),5,5′,7三羟基3′,4′二甲氧
基黄酮(apometzgerin,4),万寿菊黄素3,6,7三甲基
醚(quercetagetin3,6,7trimethylether,6)[9],东莨菪
素(scopoletin,2),东莨菪苷(scopolin,8)[11]的化学
结构。
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柯伊利素(chrysoeriol,5)黄色粉末;EIMSm/z
300[M]+;1HNMR(DMSOd6,300MHz)δ:1296
(1H,s,5OH),690(1H,s,3H),619(1H,s,H
6),650(1H,s,H8),756(1H,s,H2′),754(1H,
s,H6′),692(1H,d,J=90Hz,H5′),389(3H,
s,3′OMe)。以上1HNMR数据与文献[13]报道的
数据一致,鉴定该化合物为柯伊利素。
槲皮万寿菊素3,6二甲醚(quercetagetin3,6
dimethylether,9)淡黄色粉末;1HNMR(DMSOd6,
300MHz)δ:1277(1H,s,5OH),751(1H,d,J=
20Hz,H2′),742(1H,dd,J=20,85Hz,H6′),
688(1H,d,J=85Hz,H5′),643(1H,s,H8),
376(3H,s,3OMe),372(3H,s,6OMe)。以上1H
NMR数据与文献[14]报道的数据一致,鉴定该化合
物为5,7,3′,4′四羟基3,6二甲氧基黄酮,即槲皮
万寿菊素3,6二甲醚。
以上化合物的化学结构如图1。
R1 R2 R3 R4 R5 R6 2 R=H
1 H H H OMeMe OMe8 R=βDglucopyranosyl
3 H OMeH H H H
4 H H H OMeMe OH
5 H H H OMeH H
6 Me OMeOMeOH H H
7 H H H OMeH OH
9 H OMeOMeOH H H
图1 芙蓉菊中化合物的结构式
3.2 α葡萄糖糖苷酶抑制活性
3.2.1 实验优化 反应体系按文献[10]方法,对
α葡萄糖糖苷酶和底物 PNPG的浓度配比进行了
考察(表 1),即考察阳性对照药阿卡波糖的浓度
为1000mg·L-1时对 α葡萄糖糖苷酶的抑制率。
发现在表1所示的12个配比,阿卡波糖的抑制率
均大于60%,抑制率大于85%的有4组,即5~8
组。但在这些配比中,不加抑制剂阿卡波糖时
PNP产生量有很大差别,导致 A值有差别。为提
高检测灵敏度,选择阿卡波糖抑制率最高、PNP产
量相对较大的配比,即 α葡萄糖苷酶和底物 PNPG
的浓度分别定为 08U·mL-1和 5mmol·L-1进
行实验。
表1 α葡萄糖苷酶、底物PNPG和阿卡波糖
温孵体系的优化
组号
酶浓度
/U·mL-1
底物浓度
/mmol·L-1
抑制率
/%
A值
1 10 75 6332 268
2 10 50 7468 243
3 10 25 7708 150
4 02 75 8343 108
5 02 50 8569 103
6 02 25 8832 075
7 08 50 8976 225
8 07 50 8697 215
9 06 50 8111 201
10 05 50 8250 186
11 04 50 7207 165
12 03 50 6333 148
3.2.2 标准曲线 以PNP浓度(X)为横坐标,A值
为纵坐标(Y),绘制标准曲线,得回归方程 Y=
00077X+00123(r=09990),线性关系良好;线
性浓度范围为0~250μmol·L-1。
3.2.3 提取部位的 α葡萄糖苷酶抑制活性 从表
2试验结果可见,EtOAc萃取物和残留水层的抑制
活性较好,其抑制率明显高于其他萃取物以及阳性
对照药物阿卡波糖[IC50=(31586±2489)mg·
L-1]。
表2 芙蓉菊70%乙醇提取物及其萃取物对
α葡萄糖苷酶抑制活性的筛选
试验部位 IC50/mg·L-1
70%乙醇提取物 126949±5545
环己烷萃取物 88921±10993
醋酸乙酯萃取物 29278±4431)
正丁醇萃取物 191943±28813
水溶性部位 20818±13292)
阿卡波糖 31586±2489
注:与阳性对照组阿卡波糖比较1)P<0001,2)P<005。
3.2.4 活性部位中单体化合物对 α葡萄糖苷酶的
抑制活性 由表2筛选结果,证明醋酸乙酯萃取物
和水溶性部位对α葡萄糖苷酶具有抑制活性,从其
分离得到的单体化合物抑制活性的IC50总结在表3。
除化合物1,4和8外,其他6个化合物的 IC50值均
小于阳性对照药阿卡波糖,抑制活性由高到低的顺
序是:2>7>6>9>3>5。从有活性的醋酸乙酯
萃取物中分离得到的艾菊素对 α葡萄糖苷酶活性
无抑制作用,IC50>1000μmol·L
-1。从水溶性部
位分离得到的3个化合物中,仅有化合物2对 α葡
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萄糖苷酶活性有抑制作用。因此,芙蓉菊中对 α葡
萄糖苷酶活性有抑制作用的活性成分主要集中在
70%乙醇提取物的醋酸乙酯萃取物中。
表3 活性部位中单体化合物对α葡萄糖苷
酶抑制活性的IC50
化合物 来源部位 IC50/μmol·L-1 IC50/mg·L-1
阿卡波糖 48925±3855 31586±2489
1 醋酸乙酯、水 >1000 >344
2 醋酸乙酯、水 3436±2061) 660±0401)
3 醋酸乙酯 14628±12442) 4388±3731)
4 醋酸乙酯 >1000 >330
5 醋酸乙酯 24626±8731) 7387±2621)
6 醋酸乙酯 7406±3831) 2666±1381)
7 醋酸乙酯 4219±5252) 1333±1661)
8 醋酸乙酯、水 >1000 >700
9 水 13620±25732) 4713±8901)
注:与阳性对照组阿卡波糖比较1)P<005,2)P<0001。
3.2.5 抑制作用类型的研究 根据底物不同浓度
时的酶催化反应,求出1/[S]与1/V([S]为底物浓
度,V为反应速度),绘图,并求出线性方程 Y=
31985X+20393。则 Vmax=049μmol·L
-1·
s-1,Km=157mmol·L
-1(Km为米氏常数)。对于
IC50值大于阳性对照药阿卡波糖的6个化合物进行
了抑制作用类型的研究,受试化合物选取两个合适
的浓度,PNPG选取 4个浓度,测定反应速度。按
LineweaveBurk作图法,以1/[S]为横坐标,1/V为
纵坐标,分别绘制6个化合物抑制作用的动力学曲
线(图2~7)。从图2~7可以看出,所有化合物的
反应速度 Vmax随受试化合物浓度的增大而保持不
变,Km增大,判断这些化合物对 α葡萄糖苷酶抑制
作用属竞争性抑制作用[1516]。根据竞争性抑制作
用动力学方程1/Km′=1/{Km(1+[I]/Ki)}(式中
[I]为抑制剂浓度),可求出受试化合物2,3,5~7,9
的抑制剂常数(Ki)值分别为:0073,0044,1747,
0063,0040,0057mmol·L-1。
图2 2的LineweaveBurk双倒数曲线
图3 3的LineweaveBurk双倒数曲线
图4 5的LineweaveBurk双倒数曲线
图5 6的LineweaveBurk双倒数曲线
图6 7的LineweaveBurk双倒数曲线
图7 9的LineweaveBurk双倒数曲线
4 结论
选取生物活性跟踪的方法首次用 α葡萄糖苷
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酶抑制活性体外筛选模型对芙蓉菊70%乙醇提取
物及其不同极性萃取物抑制 α葡萄糖苷酶活性进
行了筛选,结果表明醋酸乙酯萃取物和水溶性部位
有较高的抑制活性。
从2个活性部位中分离得到的单体化合物包括
倍半萜、黄酮和香豆素等类化合物。其中,倍半萜类
化合物艾菊素、香豆素苷类化合物东莨菪苷、兼具
5,7二羟基和3′,4′二甲氧基取代基本结构的黄酮
类化合物5,7二羟基3′,4′,5′三甲氧基黄酮(1)和
5,5′,7三羟基3′,4′二甲氧基黄酮(4)对 α葡萄糖
苷酶活性无抑制作用。石杉黄素抑制 α葡萄糖苷
酶活性最高[IC50=(4219±525)μmol·L
-1或
(1333±166)mg·L-1]。依据 IC50值,本文中的
黄酮类化合物抑制 α葡萄糖苷酶活性由强到弱的
顺序是:7>6>9>3>5。
上述5个黄酮类化合物和香豆素类化合物东莨
菪素对α葡萄糖苷酶抑制作用属于竞争性抑制类
型,与阳性对照药阿卡波糖的抑制作用类型相同。
文献[17]报道万寿菊黄素3,6,7三甲醚对体
外培养的大鼠胰岛分泌胰岛素功能有促进作用,综
合本文研究结果,其作用于降糖作用的多个环节,推
测其对糖尿病防治可能具有潜在的开发应用前景。
文献[17]报道东莨菪素对体外培养的大鼠胰
岛分泌胰岛素功能有抑制作用,而本文结果东莨菪
素对α葡萄糖苷酶具有抑制活性,其在糖尿病防治
上的应用应慎重、综合考虑。
芙蓉菊中的黄酮类化合物可能是其防治糖尿病
的物质基础,有待整体药理学研究进一步证实。
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Vol.34,Issue 17
September,2009
Bioactivityguidedisolationofalphaglucosidaseinhibitorfromwhole
herbsofCrossostephiumchinense
WUQi1,YANGXiuwei1,ZOULei2,3,FUDexian3
(1.StateKeyLaboratoryofNatural&BiomimeticDrugs,DepartmentofNaturalMedicine,Schoolof
PharmaceuticalSciences,PekingUniversity,Beijing100191,China;
2.NationalPharmaceuticalR&DCo.Ltd.,Beijing102206,China;
3.StateKeyLaboratoryofBiochemicalEngineering,InstituteofProcesEngineering,Beijing100080,China)
[Abstract] Objective:Toinvestigatethechemicalconstituentsof70% aqueousethanolextractfromthewholeplantofCros
sostephiumchinenseforinhibitoryactivityagainstalphaglucosidase.Method:Abioactivityguidedisolationandpurificationprocess
wasusedtoidentifythealphaglucosidaseactivityinhibitingcomponentsofthewholeplantofC.chinense.Thedriedwholeplantswere
extractedwith70% aqueousethanol.Theextractwassuspendedinwaterandthenfurtherfractionatedsuccessivelywithcyclohexane,
ethylacetate,andnormalbutanol,andtestedfortheirinhibitoryactivityagainstalphaglucosidaseinvitro.Thechemicalstructuresof
isolatedcompoundsweredeterminedbyspectroscopicmethodsincludingNMRandMS,andcomparisonwithdataofauthenticsamples.
Alofcompoundswereassayedfortheirinhibitoryactivityagainstalphaglucosidaseinvitro.Result:Theethylacetateandwaterlayer
fractionsshowedthestronginhibitoryactivity,andweresubjectedtocolumnchromatographyoverthevariousstationaryphases.Trice
tin3′,4′,5′trimethylether(1),scopoletin(2),tanacetin,hispidulin(3),apometzgerin(4),chrysoeriol(5),quercetagetin3,6,
7trimethylether(6),selagin(7),scopolin(8),andquercetagetin3,6dimethylether(9)wereisolatedandcharacterizedbydifer
entspectroscopictechniques.Amongthem,compounds2,3,57and9forinhibitoryactivityagainstalphaglucosidasewithIC50
(μmol·L-1)valuesof(3436±206),(14628±1244),(24626±873),(7406±383),(4219±525)and
(13620±2573),respectively,wereassayedastheactivecomponents.Apositivedrug,acarbose,showedtheinhibitoryactivity
againstalphaglucosidasewithIC50valueof(48925±3855)μmol·L
-1inthesameassayconditionswiththeabovetestcom
pounds.TheIC50valuesofcompounds1,4,8andtanacetinwerealmorethan1000μmol·L
-1.Conclution:Thecompounds5
and9wereisolatedfromthegenusCrossostephiumforthefirsttime.Thecompounds2,3,57,and9showedthestronginhibitoryac
tivityagainstalphaglucosidaseinvitrointhesimplecompetitivemanner.Theresultsindicatedthatthesecompoundsmaybeinvolved
inthetreatmentofdiabetesinthewholeplantofC.chinenseforhuman.
[Keywords] Crosostephiumchinense;flavone;αglucosidase
[责任编辑 王亚君]
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第34卷第17期
2009年9月
Vol.34,Issue 17
September,2009