全 文 ：不同处理对叶下珠种子萌发的影响
常　莉，薛建平，王　兴
（淮北煤炭师范学院 生命科学学院 资源植物生物学安徽省重点实验室，安徽 淮北 ２３５０００）
［收稿日期］　２００８０４０１
［基金项目］　资源植物生物学安徽省重点实验室项目（ｚｙ０８０２）
［通信作者］　薛建平，Ｔｅｌ：（０５６１）３８０２０２５，Ｅｍａｉｌ：ｘｕｅｊｐ２０００＠ｙａ
ｈｏｏ．ｃｏｍ．ｃｎ
　　叶下珠ＰｈｙｌａｎｔｈｕｓｕｒｉｎａｒｉａＬ．为大戟科叶下珠
属植物，全草入药，有清肝明目、利尿、降血糖、降压、
解毒和消积等功效［１］。其活性成分主要为酚类、萜
类、黄酮、生物碱以及脂类化合物，其中短叶苏木酚
酸甲酯等成分具明显的抗乙肝病毒的活性和护肝作
用［２］。另外有报道称叶下珠的水提物杠香藤酸 Ａ
（ｒｅｐａｎｄｕｓｉｎｉｃａｃｉｄＡ）有抑制抗艾滋病毒逆转录酶
活性的作用［３］。目前，叶下珠仍处于野生状态［４］，
种子发芽率不高。随着研究的不断深入，人们对叶
下珠的需求急剧增长，通过采收野生资源已不能满
足社会的需求［５］，必须人工种植。探讨叶下珠种子
萌发条件，可以在短期内获得大量幼苗，可更好地满
足社会日益增长之需。本实验以不同浸种时间、温
度、光照和赤霉素浓度处理种子，探索了叶下珠的种
子萌发特性，从而为叶下珠的种苗抚育管理以及种
群生态恢复提供理论依据。
１　材料
叶下珠的种子于２００７年９月底采自中国科学
院合肥物质科学研究院科学岛上，０～４℃冰箱内贮
藏２个月，经安徽大学生命科学学院何家庆教授鉴
定为大戟科叶下珠属植物叶下珠Ｐ．ｕｒｉｎａｒｉａ。
２　方法
２．１　叶下珠种子形态特征观察
体视显微镜下观察种子的形态特征。
２．２　种子千粒重的测定
采用百粒法（参照《中华人民共和国国家标
准———农作物种子检验规程 ＧＢ／Ｔ３５４３１３５４３７
１９９５》），即从纯净种子中随机抽取１００粒种子为１
组，重复取８组用电子分析天平称量，并由此计算出
千粒重。
２．３　种子吸胀率的测定
将风干的叶下珠种子２００粒为１组，重复取３组
（由纱布包着）浸在盛满水的烧杯中，置于２０℃的恒
温箱中，２ｈ测定１次种子的吸水量（吸水量＝种子吸
水的质量／风干种子的质量×１００％），连续观测４８ｈ。
２．４　不同处理条件下种子萌发率的测定
种子萌发实验以每组２００粒、３个重复进行，将
种子置于直径为９０ｍｍ垫有２层充分湿润滤纸的
培养皿中，每天滴加适量蒸馏水以补充水分，种子萌
发以胚根突破种皮为准。萌发实验２４ｈ统计１次
种子萌发数，直至萌发稳定。
萌发率（％）＝正常萌发的种子数／供试种子数×１００％
２．４．１　不同温度和浸种时间处理　将叶下珠种子
分别浸泡１２，２４，３６ｈ，置于１０，２０，２５，３０，３５℃５个
恒温和３个温变周期（５／１５，１５／２５，２０／３０℃）下培
养，研究叶下珠种子萌发的最适温度和浸种时间。
２．４．２　不同光照时间处理　根据不同温度和浸种
时间试验结果，在最适温度和浸种时间处理种子后
进行全光照、全黑暗和１２ｈ光照／１２ｈ黑暗下萌发
试验，研究叶下珠种子萌发的最适光照。
２．４．３　不同浓度 ＧＡ３处理　在前述试验的最适温
度和光照条件下进行不同ＧＡ３浓度处理。叶下珠种
子分别放在ＧＡ３质量浓度为２０，４０，８０，１６０，３２０ｍｇ
·Ｌ－１５个梯度，并以蒸馏水为对照，共６个处理条
件下浸种１２ｈ。在最佳温度和最佳光照条件下，分
别测定叶下珠种子在不同浓度ＧＡ３溶液浸种后的萌
发率。从处理第２天开始检查记录发芽种子数，到
种子不再萌发时为止，找出叶下珠种子萌发的最适
ＧＡ３溶液浓度。
２．５　数据分析
采用ＳＰＳＳ１３０通过单因子方差分析在９５％水
平上，对数据进行显著性检验。用 Ｅｘｃｅｌ２０００软件
制图。
３　结果与分析
３．１　种子形态特征
种子三棱形，具网纹，长 １１３～１２７ｍｍ，宽
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０７５～１０２ｍｍ，种皮薄，成熟时浅黄色，无种阜，有
胚乳，千粒重（０２８９３±００１４１）ｇ；蒴果扁球形，有
小疣状凸起，见图１。
图１　叶下珠种子（Ａ）和果实（Ｂ）
３．２　种子吸胀率
种子吸胀率见图２，在吸胀处理的４８ｈ以内，叶
下珠种子吸胀率随着处理时间的增加而增大。种子
在吸胀处理中的前２４ｈ，吸水速率较快，至２８ｈ吸
水量达到５２７８％后开始趋向平衡，种子几乎不再
吸水，即达到饱和状态。
图２　种子吸水速率
３．３　不同温度和浸种时间对种子萌发率的影响
１０℃时不同浸种时间处理的叶下珠种子萌发
率均为０，见表１。经方差分析，同一温度，随着浸种
时间的延长，萌发率显著（Ｐ＜００５）升高。在１０～
３５℃恒温下，随着温度的增加，叶下珠种子的萌发
率呈现先升后降的趋势。１０℃时萌发率为０，２０℃
时萌发率较低，仅２３３３％，３０℃浸种３６ｈ萌发率
最高，达到７６６７％。经方差分析表明，几个温度下
的萌发率之间均存在显著差异（Ｐ＜００５）。萌发率
大小顺序依次为３０℃ ＞２５℃ ＞２０℃ ＞３５℃ ＞１０
℃，即恒温下叶下珠的最适萌发温度为３０℃。
在５／１５，１５／２５，２０／３０℃３个温变周期下，叶下
珠种子的萌发率差异显著（Ｐ＜００５），在５／１５℃温
　　表１　不同浸种时间和温度条件下叶下珠种子的萌发率
％　
处理
温度
／℃
浸种时间／ｈ
１２ ２４ ３６
恒温　　 １０ ０ｅ ０ｅ ０ｅ
　 ２０ １３４７±０５０ｃ２０３１±０７５ｃ２３１２±１４７ｃ
　 ２５ ２０３７±０６４ｂ３１７３±０６１ｂ４１６３±０７８ｂ
　 ３０ ５４４９±０５９ａ６３２５±０７８ａ７６３３±１５３ａ
　 ３５ ６６９±０２９ｄ１６６７±０５８ｄ１９６２±１２１ｄ
温变周期 ５／１５ ０ｃ ０ｃ ０ｃ
　 １５／２５ ６６８±０２８ｂ ９６８±０２８ｂ１６５４±００７ｂ
　 ２０／３０６３２４±０９５ａ８２６１±０９５ａ９３３１±０１８ａ
　　注：不同字母表示在Ｐ＜００５水平上有显著性差异。
变周期下，不同浸种时间处理下种子萌发率均为０，
２０／３０℃温变周期萌发率最高为９３３１％，１５／２５℃
温变周期下仅为１６５４％。同时方差分析表明，２０／
３０℃温变周期下的萌发率显著高于３０℃恒温下的
萌发率，即变温对叶下珠种子的萌发有显著影响。
３．４　不同光照对种子萌发率的影响
光对某些种子的萌发是必不可少的。从本试验
可以看出，１２ｈ光照处理，叶下珠种子萌发率为
９４８２％，显著高于２４ｈ光照处理（Ｐ＜００５），２４ｈ
处理萌发率７４５７％，但０ｈ光照（即全黑暗）处理，
叶下珠种子萌发率仅为７２５％。这表明适宜的光
照条件更有利于叶下珠种子的萌发。光照是影响叶
下珠种子发芽的主要因素之一。
３．５　赤霉素ＧＡ３对种子萌发率的影响
ＧＡ３是一种重要的植物激素，能促进种子和其
他休眠器官的萌发。本试验表明，最适温度和光照
条件下，不同浓度的ＧＡ３溶液处理叶下珠种子，对其
萌发率都有一定的影响，２０，４０ｍｇ·Ｌ－１ＧＡ３对叶下
珠种子萌发率有显著影响（Ｐ＜００５），８０ｍｇ·Ｌ－１
ＧＡ３对萌发率没有显著影响。当 ＧＡ３高于８０ｍｇ·
Ｌ－１时对叶下珠种子的发芽有显著的抑制作用（Ｐ＜
００５）。其中 ＧＡ３为４０ｍｇ·Ｌ
－１时萌发率最高，为
９６９４％。
４　讨论
在其他因素均相同的条件下，随着浸种时间的
增加萌发率增加，浸种３６ｈ后，叶下珠种子的萌发
率最高。叶下珠种子与水接触后，种子不断吸水，当
吸水饱和时，随着浸种时间的进一步增加，一方面，
种子呼吸渐渐受抑，另一方面，种子内含有的促进萌
发的物质也可能发生了变化。试验表明，浸种时间
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影响叶下珠种子萌发率。
温度是种子萌发所必要的外部条件之一。从试
验可知，１０℃时叶下珠种子不发芽，２０℃时萌发率
低，叶下珠发芽的适宜恒温为３０℃。２０／３０℃温变
周期可显著提高萌发率，即变温对叶下珠种子的萌
发有显著影响。
光虽然不是所有植物种子萌发都必需的条件，
本试验中，１２ｈ光照和１２ｈ黑暗交替处理下，叶下
珠种子发芽率显著高于黑暗和２４ｈ全光照，表明在
适宜的温度下，叶下珠种子的萌发率受光照条件影
响较大，光照是影响叶下珠种子发芽的主要因素。
经过ＧＡ３处理的叶下珠种子在萌发过程中，胚
根较白、较粗，伸长速度较快；根毛分布较密，在４０
ｍｇ·Ｌ－１效果最为明显。但随着浓度的提高，种子
萌发率有所降低，可能是因为一定浓度范围，ＧＡ３能
促使种子细胞分裂分化，有利于活种子内部酶的活
性；ＧＡ３浓度过高，抑制种子发芽，浓度降低则不能
起到明显的促进效果［６］。
本试验结果表明，２０／３０℃温变周期，光／暗
（１２／１２ｈ），４０ｍｇ·Ｌ－１赤霉素是叶下珠种子萌发
的最适宜条件。
［参考文献］
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医药·植物药分册，１９９２，７（６）：２４９．
［２］　马新宇，裴俊俊．叶下珠药理研究综述［Ｊ］．齐鲁药事，２００６，２５
（２）：１０４．
［３］　ＯｇａｔａＴ，ＨｉｇｕｃｈｉＨ，ＭｏｃｈｉｄａＳ，ｅｔａｌ．ＨＩＶ１ｒｅｖｅｒｓｅｔｒａｎｓｃｒｉｐｔａｓｅ
ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｆｒｏｍＰｈｙｌａｎｔｈｕｓｎｉｒｕｒｉ［Ｊ］．ＡＩＤＳＲｅｓＨｕｍＲｅｔｒｏｖｉｒｕｓｅｓ，
１９９２，８（１１）：１９３７．
［４］　赵永华，丁　赢，杨春清．我国叶下珠属药用植物资源的开发
利用［Ｊ］．生物学通报，２０００，３５（１２）：３９．
［５］　彭建明，管志斌，张丽霞，等．苦味叶下珠家化种植技术［Ｊ］．现
代中药研究与实践，２００５，１９（４）：１８．
［６］　刘　丽，郭巧生，赵荣梅，等．土荆芥种子萌发特性的研究［Ｊ］．
中国中药杂志，２００７，３２（１３）：１３４６．
［责任编辑　吕冬梅］
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