全 文 :喜树愈伤组织的诱导与培养
马 林
(西南科技大学 生命科学与工程学院,四川 绵阳 621010)
[摘要] 目的:研究喜树叶片、茎段和带芽茎段的愈伤组织诱导效果以及愈伤组织继代培养条件。方法:以
MS为基本培养基,附加不同质量浓度6BA,NAA和2,4D,通过正交试验研究愈伤组织继代培养的适宜条件。结
果与结论:MS+6BA2mg·L-1+NAA2mg·L-1+2,4D2mg·L-1的诱导效果较好,容易诱导出愈伤组织,其中
叶片的诱导率可达80%以上。愈伤组织在MS+6BA1mg·L-1+2,4D1mg·L-1培养基上继代培养生长快速,
疏松易分散,适合用于细胞培养。
[关键词] 喜树;愈伤组织;组织培养
[中图分类号]S567 [文献标识码]A [文章编号]10015302(2007)13127304
[收稿日期] 20060417
[通讯作者] 马林,Tel:(0816)6089524,Email:malin@swust.
edu.cn
喜树Camptothecaacuminata为珙桐科喜树属落
叶乔木,又名旱莲木、千丈树、水桐树,分布于我国长
江以南各省及长江以北部分地区。喜树的果实、根、
叶、皮均含有喜树碱及其衍生物,可供药用,是一种
经济价值很高的药用绿化两用树种[1,2]。国内外对
喜树碱及其类似物的药理作用进行了较多的研究,
结果表明这类药物具有抗肿瘤、抗病毒和治疗皮肤
病等方面的作用[2]。
喜树的组织和细胞培养研究在国内外已有一定
的报道,1974年日本学者Sakato等最早进行了喜树
细胞培养研究[3,4],但随后并没有更多的研究报道。
直到20世纪末,由于喜树碱新的药理作用的发现,
才有了进一步的报道,如 VanHengel等报道了喜树
愈伤组织的形成和喜树碱产生的特点[5];赵洁等研
究了不同因素对叶片脱分化的效应[6];Jain等通过
芽诱导进行了喜树繁殖研究[7];Wiedenfeld等和
Song等以幼茎及幼根为外植体诱导愈伤组织并在
细胞培养方面进行了研究[8,9]。近年来,喜树组织
培养研究也有一些报道[1013]。但是,以往的研究者
大多单独采用叶片、茎尖或带芽茎段等作外植体,同
时采用几种外植体进行愈伤组织诱导未见有报道,
关于愈伤组织的继代培养也未见有较深入的研究。
作者研究了喜树几种外植体的诱导效应以及愈伤组
织的继代培养条件和生长变化情况,以便为细胞培
养研究奠定一定的基础。
1 材料与方法
1.1 外植体的灭菌处理
喜树春发新梢采自西南科技大学西山校区,由
本校金虹副教授鉴定为C.acuminata。剪切成小段
后用自来水冲洗干净,用洗衣粉溶液浸泡15min,流
水下反复冲洗。用01% HgCl2溶液进行表面灭菌
处理,茎段灭菌时间设 3个处理分别为 8,12,15
min,叶片和带腋芽茎段灭菌时间设3个处理分别为
6,8,15min,处理后用无菌水冲洗3~4次。将茎段
和带腋芽茎段切成05~08cm的小段,将叶片切
成约025cm2的小方块,在无菌的条件下接种到培
养基上。根据接种5d后外植体的变化情况确定最
佳灭菌处理时间。
1.2 诱导培养基及培养条件
以MS为基本培养基,附加不同质量浓度的6
BA,NAA,2,4D等激素,每配制1L培养基加入8g
琼脂和30g蔗糖,除愈伤组织继代培养正交试验
外,均调pH至58~60。将培养基分装到50~100
mL三角瓶中,每瓶20mL,在121℃下灭菌15min。
培养温度(25±2)℃,光照强度1000~1500lx,每
天光照时间12h。
1.3 愈伤组织的继代培养
1.3.1 愈伤组织的生长变化 采用诱导愈伤组织
效果较好的培养基进行继代培养,观察继代接种后
愈伤组织的生长变化情况。继代接种量每瓶
035~045g,每隔5d随机取样10瓶,测定愈伤组
织的鲜重,将数据换算成每克接种量的净增重,分析
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愈伤组织的生长规律。
1.3.2 愈伤组织继代培养正交试验 采用4因素
3水平正交试验设计 L9(4
3)(表1),采用来自同一
诱导培养基的愈伤组织作材料进行试验,每处理接
种5瓶,每瓶接种量030~045g,25d后测定愈伤
组织鲜重,换算成每克接种量的净增重,对结果进行
极差分析。
表1 愈伤组织继代培养正交试验因素和水平
水平
A
6BA/mg·L-1
B
2,4D/mg·L-1
C
蔗糖/g·L-1
D
pH
1 10 05 20 55
2 20 10 30 60
3 40 20 40 65
2 结果与分析
2.1 灭菌处理时间对外植体的影响
将外植体灭菌时间定为15min进行初试,接种
后观察外植体的生长变化情况。结果发现,接种5d
后外植体有不同程度的褐变,随着培养时间的延长,
外植体逐渐转为黑色并干枯死亡。因此,对茎段采
用8,12,15min灭菌时间处理,对叶片和带芽茎段
采用6,8,15min灭菌时间处理。接种5d后观察发
现,15min灭菌处理的3种外植体均全部死亡,茎段
采用12min处理,也全部死亡,当灭菌时间减至8
min时,其成活率可达89%;叶片和带芽茎段灭菌处
理8min,成活率仅为17%,而用6min处理时,5d
后外植体色泽仍保持正常不失绿。故在以下试验中
均采用茎段8min,叶片和带芽茎段6min的灭菌处
理时间。
2.2 愈伤组织及芽的诱导
2.2.1 6BA与 NAA不同浓度组合对愈伤组织诱
导的影响 设6BA与NAA不同浓度组合共6种配
方处理,分别接种不同的外植体。从表2可见,培养
30d后不同质量浓度激素组合对外植体愈伤组织
均有不同程度的诱导,其中以 6BA2mg·L-1+
NAA2mg·L-1和6BA4mg·L-1+NAA2mg·
L-1的效果较好,3种外植体的愈伤组织诱导效果均
较其他培养基为好。当 6BA浓度相同时,叶片和
茎段的愈伤组织诱导率随NAA的浓度增大而提高,
诱导效果在同一培养基叶片优于茎段。而当 NAA
浓度相同时,除个别的培养基外,6BA浓度增大反
而使外植体愈伤组织诱导率降低。带芽茎段的愈伤
组织诱导效果均较差,但芽的启动萌发十分明显,出
芽率均达到90%以上,一般接种5d后便出现芽的
启动,且长势较好。试验观察到3种外植体的愈伤
组织出现的时间均较晚,叶片最早出现愈伤组织是
在接种后17d,茎段和带芽茎段大约在20d后,以
后随培养时间的延长,愈伤组织才逐步增多。
表2 BA与NAA不同质量浓度组合对愈伤组织诱导的影响
质量浓度/mg·L-1 叶片 茎段 带芽茎段
6BA NAA 接种数 出愈数 出愈率/% 接种数 出愈数 出愈率/% 接种数 出愈率/% 出芽率/%
20 05 28 8 286 26 4 154 24 83 917
20 10 24 15 625 30 8 267 20 150 950
20 20 30 23 767 28 16 571 21 381 952
40 05 27 7 259 28 5 179 22 45 909
40 10 30 11 368 24 6 250 21 95 952
40 20 30 20 667 28 13 464 21 286 100
2.2.2 添加2,4D对愈伤组织诱导的影响 选择
诱导愈伤组织效果较好的2个组合(6BA2mg·
L-1+NAA2mg·L-1和6BA4mg·L-1+NAA2
mg·L-1),进一步试验添加不同浓度的2,4D对愈
伤组织诱导的影响,培养30d后的结果见表3。比
较表2和表3可见,添加05mg·L-1的2,4D对叶
片和茎段愈伤组织诱导率的提高没有明显影响,添
加与不添加的诱导率差异不大。但当添加的2,4D
增大到1mg·L-1及2mg·L-1时,叶片和茎段愈伤
组织的诱导效果均比不加2,4D的好,其中,使用2
mg·L-1比1mg·L-1具有更好的诱导效果。在相
同培养基中叶片的诱导率仍然高于茎段,各处理的
愈伤组织产生时间与不加2,4D的处理类似,在培
养15d后才有愈伤组织产生。
2.3 愈伤组织继代培养中的生长变化
采用MS+6BA2mg·L-1+NAA2mg·L-1+
2,4D2mg·L-1培养基进行愈伤组织继代培养。继
代接种3d后,即发现新的愈伤组织开始生长,新长
出的愈伤组织颜色为白色或淡黄色,较为疏松,体积
明显增大,到20d左右,生长达到最旺盛阶段,颜色
大多转变为浅绿色,有的出现少量的紫红色,25d
以后生长逐渐减慢,30d后有少部分愈伤组织转变
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表3 2,4D对愈伤组织诱导的影响
质量浓度/mg·L-1
6BA NAA 2,4D
叶片
接种数 出愈数 出愈率/%
茎段
接种数 出愈数 出愈率/%
20 20 05 32 24 750 25 14 560
20 20 10 36 29 806 21 13 619
20 20 20 38 32 842 27 19 704
40 20 05 36 25 694 22 13 591
40 20 10 35 24 686 30 17 567
40 20 20 36 26 722 33 22 667
为不同程度的浅灰色或褐色,有的甚至使培养基的
颜色也呈浅灰色。在以后的继代培养中,以25d作
为继代周期。继代时将不同颜色的愈伤组织分开分
别接种。
颜色为浅绿色的愈伤组织一般经4~5次继代
后,其质地变得疏松易分散,适于作细胞悬浮培养。
紫红色的愈伤组织经继代后,新产生的愈伤组织也
是呈不同程度的紫红色,很难出现白色或淡黄色的
愈伤组织,其质地虽疏松但成团块状不易分散。颜
色接近深绿的愈伤组织,其质地坚硬不易分散,培养
后期出现芽点有分化的迹象,这部分适于作分化培
养。灰色或褐色的愈伤组织继代后基本未见新的愈
伤组织生长,大多在培养10d后出现细胞死亡,有
的呈黏稠水浸状,有的逐渐变干枯。
分析愈伤组织颜色出现较大差异的原因,可能
与继代时没有区分愈伤组织的初始诱导培养基有
关,经初始诱导得到的愈伤组织由于外植体来源不
同、培养基激素种类和水平也不同,有可能在继代时
得到不同的结果。
2.4 不同继代培养条件对喜树愈伤组织生长的影
响
采用 MS+6BA 2 mg· L-1 +NAA 2
mg·L-1+2,4D2mg·L-1作起始诱导培养基,将
得到的愈伤组织经同样培养基4次继代增殖后进行
如表1设计的正交试验。表4为继代接种25d后
各处理的平均鲜重增长情况,处理1和2的每克接
种量净增重明显高于其他处理,分别为7799mg和
7221mg,其次为处理9,为6112mg。极差分析结
果表明,对愈伤组织生长影响程度最大的因素是
pH,其次是6BA和蔗糖,而2,4D的影响最小,最
佳培养基为6BA1mg·L-1+2,4D1mg·L-1,蔗
糖用量30g·L-1,pH55。
在各处理间未观察到愈伤组织颜色和质地的明
显不同,第25天取样称重时,愈伤组织颜色均为淡
表4 不同培养条件对愈伤组织生长的影响
处理
6BA
/mg·L-1
2,4D
/mg·L-1
蔗糖
/g·L-1
pH
接种量
/mg
每克接种量
净增重/mg
1 10 05 20 55 3428 7799
2 10 10 30 60 2975 7221
3 10 20 40 65 3627 2178
4 20 05 30 65 3775 2039
5 20 10 40 55 4505 3522
6 20 20 20 60 3831 3278
7 40 05 40 60 3645 2853
8 40 10 20 65 3954 2159
9 40 20 30 55 3683 6112
黄色至浅绿色,且基本呈颗粒状堆积,容易分散。这
可能与愈伤组织来源一致,继代培养周期均为25d
且继代次数较少有较大关系。
3 讨论
3种外植体中,叶片的愈伤组织诱导效果较好,
茎段和带芽茎段也能诱导产生愈伤组织但诱导率比
叶片低且诱导时间较慢,带芽茎段容易诱导出芽,适
于作植株快速繁殖的外植体。
以MS为基本培养基,在6BA和 NAA不同组
合的培养基上,3种外植体均能诱导产生愈伤组织,
但不同培养基之间的诱导率差异较大,添加适当浓
度的2,4D有利于叶片和茎段愈伤组织诱导率的提
高。试验发现诱导效果最好的培养基为 MS+6BA
2mg·L-1+NAA2mg·L-1+2,4D1~2mg·
L-1,这与张冬艳等[10]及邓冬青等[13]研究发现的最
佳培养基有所不同,可能与喜树品种、取样时间等有
较大关系。
以茎段作外植体,愈伤组织诱导率可达70%,
但带芽茎段的诱导率却较低(45% ~381%),陈
颖等同样发现带芽茎段的愈伤组织比率较低
(13%~21%)[11],但林桂芸等以 B5,WH和 MS作
基本培养基与6BA和 IBA组合,从带芽茎段得到
的诱导率却较高(389% ~857%)[12]。这表明茎
段和带芽茎段均可作为愈伤组织诱导的外植体,但
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带芽茎段更适于通过腋芽诱导进行植株快速繁
殖[11,12]。
试验发现来自不同诱导培养基的愈伤组织多次
继代到同一培养基后会出现颜色和质地的明显差异,
而来源相同的愈伤组织经同一培养基继代则较少出
现颜色和质地的差异,这是由于不同激素种类和水平
对细胞代谢的影响不同所致。张冬艳等发现,不同基
本培养基上诱导的愈伤组织在形态、颜色和质地等方
面有一定差异,继代培养后其生长情况也表现出不
同,只有MS培养基上的愈伤组织经继代培养后适于
用作细胞悬浮培养[10]。Wiedenfeld等[7]、邓冬青
等[13]也得到类似结果,但他们发现除了MS外,B5也
是诱导愈伤组织和继代培养的较好培养基。这表明,
为了筛选到较好的用于细胞悬浮培养的愈伤组织体
系,应当选择来自同一诱导培养基且颜色正常、疏松
易分散的愈伤组织予以继代培养。
已有研究表明,不同的基本培养基、激素种类及
水平与愈伤组织和悬浮培养细胞中的喜树碱积累有
一定关系[8,10,13],因此,有必要结合喜树碱的检测进
一步研究愈伤组织的诱导和继代培养条件。
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CalusinductionandcultivationofCamptothecaacuminata
MALin
(SchoolofLifeScienceandEngineering,SouthwestUniversityofScienceandTechnology,Mianyang621010,China)
[Abstract] Objective:Tostudythecalusinductionfromleaf,stemsegmentsandstemsegmentswithaxilary’sbudandthe
subcultureconditionsofcalusinCamptothecaacuminata.Method:TheexplantswereinoculatedintothemediaofMSwithdiferent
concentrationsof6BA,NAAand2,4Dbyorthogonalexperiment.ResultandConclusion:Theoptimalmediumforcalusinduction
wasMSwith6BA2mg·L-1,NAA2mg·L-1and2,4D2mg·L-1.Ithadbeterefectsinleafthaninotherexplants.Theinduc
tionratioinleafreachedabove80%.ThecalussubculturedonthemediumofMSwith6BA1mg·L-1and2,4D1mg·L-1grew
vigorousandmorequicklythanthatinothermedia.Itwasloose,friableinconsistencyandsuitableforcelculture.
[Keywords] Camptothecaacuminata;calus;tissueculture
[责任编辑 张宁宁]
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