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Callus induction and cultivation of Camptotheca acuminata

喜树愈伤组织的诱导与培养



全 文 :喜树愈伤组织的诱导与培养
马 林
(西南科技大学 生命科学与工程学院,四川 绵阳 621010)
[摘要] 目的:研究喜树叶片、茎段和带芽茎段的愈伤组织诱导效果以及愈伤组织继代培养条件。方法:以
MS为基本培养基,附加不同质量浓度6BA,NAA和2,4D,通过正交试验研究愈伤组织继代培养的适宜条件。结
果与结论:MS+6BA2mg·L-1+NAA2mg·L-1+2,4D2mg·L-1的诱导效果较好,容易诱导出愈伤组织,其中
叶片的诱导率可达80%以上。愈伤组织在MS+6BA1mg·L-1+2,4D1mg·L-1培养基上继代培养生长快速,
疏松易分散,适合用于细胞培养。
[关键词] 喜树;愈伤组织;组织培养
[中图分类号]S567 [文献标识码]A [文章编号]10015302(2007)13127304
[收稿日期] 20060417
[通讯作者] 马林,Tel:(0816)6089524,Email:malin@swust.
edu.cn
  喜树Camptothecaacuminata为珙桐科喜树属落
叶乔木,又名旱莲木、千丈树、水桐树,分布于我国长
江以南各省及长江以北部分地区。喜树的果实、根、
叶、皮均含有喜树碱及其衍生物,可供药用,是一种
经济价值很高的药用绿化两用树种[1,2]。国内外对
喜树碱及其类似物的药理作用进行了较多的研究,
结果表明这类药物具有抗肿瘤、抗病毒和治疗皮肤
病等方面的作用[2]。
喜树的组织和细胞培养研究在国内外已有一定
的报道,1974年日本学者Sakato等最早进行了喜树
细胞培养研究[3,4],但随后并没有更多的研究报道。
直到20世纪末,由于喜树碱新的药理作用的发现,
才有了进一步的报道,如 VanHengel等报道了喜树
愈伤组织的形成和喜树碱产生的特点[5];赵洁等研
究了不同因素对叶片脱分化的效应[6];Jain等通过
芽诱导进行了喜树繁殖研究[7];Wiedenfeld等和
Song等以幼茎及幼根为外植体诱导愈伤组织并在
细胞培养方面进行了研究[8,9]。近年来,喜树组织
培养研究也有一些报道[1013]。但是,以往的研究者
大多单独采用叶片、茎尖或带芽茎段等作外植体,同
时采用几种外植体进行愈伤组织诱导未见有报道,
关于愈伤组织的继代培养也未见有较深入的研究。
作者研究了喜树几种外植体的诱导效应以及愈伤组
织的继代培养条件和生长变化情况,以便为细胞培
养研究奠定一定的基础。
1 材料与方法
1.1 外植体的灭菌处理
喜树春发新梢采自西南科技大学西山校区,由
本校金虹副教授鉴定为C.acuminata。剪切成小段
后用自来水冲洗干净,用洗衣粉溶液浸泡15min,流
水下反复冲洗。用01% HgCl2溶液进行表面灭菌
处理,茎段灭菌时间设 3个处理分别为 8,12,15
min,叶片和带腋芽茎段灭菌时间设3个处理分别为
6,8,15min,处理后用无菌水冲洗3~4次。将茎段
和带腋芽茎段切成05~08cm的小段,将叶片切
成约025cm2的小方块,在无菌的条件下接种到培
养基上。根据接种5d后外植体的变化情况确定最
佳灭菌处理时间。
1.2 诱导培养基及培养条件
以MS为基本培养基,附加不同质量浓度的6
BA,NAA,2,4D等激素,每配制1L培养基加入8g
琼脂和30g蔗糖,除愈伤组织继代培养正交试验
外,均调pH至58~60。将培养基分装到50~100
mL三角瓶中,每瓶20mL,在121℃下灭菌15min。
培养温度(25±2)℃,光照强度1000~1500lx,每
天光照时间12h。
1.3 愈伤组织的继代培养
1.3.1 愈伤组织的生长变化 采用诱导愈伤组织
效果较好的培养基进行继代培养,观察继代接种后
愈伤组织的生长变化情况。继代接种量每瓶
035~045g,每隔5d随机取样10瓶,测定愈伤组
织的鲜重,将数据换算成每克接种量的净增重,分析
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    中 国 中 药 杂 志
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愈伤组织的生长规律。
1.3.2 愈伤组织继代培养正交试验 采用4因素
3水平正交试验设计 L9(4
3)(表1),采用来自同一
诱导培养基的愈伤组织作材料进行试验,每处理接
种5瓶,每瓶接种量030~045g,25d后测定愈伤
组织鲜重,换算成每克接种量的净增重,对结果进行
极差分析。
表1 愈伤组织继代培养正交试验因素和水平
水平

6BA/mg·L-1

2,4D/mg·L-1

蔗糖/g·L-1

pH
1 10 05 20 55
2 20 10 30 60
3 40 20 40 65
2 结果与分析
2.1 灭菌处理时间对外植体的影响
将外植体灭菌时间定为15min进行初试,接种
后观察外植体的生长变化情况。结果发现,接种5d
后外植体有不同程度的褐变,随着培养时间的延长,
外植体逐渐转为黑色并干枯死亡。因此,对茎段采
用8,12,15min灭菌时间处理,对叶片和带芽茎段
采用6,8,15min灭菌时间处理。接种5d后观察发
现,15min灭菌处理的3种外植体均全部死亡,茎段
采用12min处理,也全部死亡,当灭菌时间减至8
min时,其成活率可达89%;叶片和带芽茎段灭菌处
理8min,成活率仅为17%,而用6min处理时,5d
后外植体色泽仍保持正常不失绿。故在以下试验中
均采用茎段8min,叶片和带芽茎段6min的灭菌处
理时间。
2.2 愈伤组织及芽的诱导
2.2.1 6BA与 NAA不同浓度组合对愈伤组织诱
导的影响 设6BA与NAA不同浓度组合共6种配
方处理,分别接种不同的外植体。从表2可见,培养
30d后不同质量浓度激素组合对外植体愈伤组织
均有不同程度的诱导,其中以 6BA2mg·L-1+
NAA2mg·L-1和6BA4mg·L-1+NAA2mg·
L-1的效果较好,3种外植体的愈伤组织诱导效果均
较其他培养基为好。当 6BA浓度相同时,叶片和
茎段的愈伤组织诱导率随NAA的浓度增大而提高,
诱导效果在同一培养基叶片优于茎段。而当 NAA
浓度相同时,除个别的培养基外,6BA浓度增大反
而使外植体愈伤组织诱导率降低。带芽茎段的愈伤
组织诱导效果均较差,但芽的启动萌发十分明显,出
芽率均达到90%以上,一般接种5d后便出现芽的
启动,且长势较好。试验观察到3种外植体的愈伤
组织出现的时间均较晚,叶片最早出现愈伤组织是
在接种后17d,茎段和带芽茎段大约在20d后,以
后随培养时间的延长,愈伤组织才逐步增多。
表2 BA与NAA不同质量浓度组合对愈伤组织诱导的影响
质量浓度/mg·L-1 叶片 茎段 带芽茎段
6BA NAA 接种数 出愈数 出愈率/% 接种数 出愈数 出愈率/% 接种数 出愈率/% 出芽率/%
20 05 28 8 286 26 4 154 24 83 917
20 10 24 15 625 30 8 267 20 150 950
20 20 30 23 767 28 16 571 21 381 952
40 05 27 7 259 28 5 179 22 45 909
40 10 30 11 368 24 6 250 21 95 952
40 20 30 20 667 28 13 464 21 286 100
2.2.2 添加2,4D对愈伤组织诱导的影响 选择
诱导愈伤组织效果较好的2个组合(6BA2mg·
L-1+NAA2mg·L-1和6BA4mg·L-1+NAA2
mg·L-1),进一步试验添加不同浓度的2,4D对愈
伤组织诱导的影响,培养30d后的结果见表3。比
较表2和表3可见,添加05mg·L-1的2,4D对叶
片和茎段愈伤组织诱导率的提高没有明显影响,添
加与不添加的诱导率差异不大。但当添加的2,4D
增大到1mg·L-1及2mg·L-1时,叶片和茎段愈伤
组织的诱导效果均比不加2,4D的好,其中,使用2
mg·L-1比1mg·L-1具有更好的诱导效果。在相
同培养基中叶片的诱导率仍然高于茎段,各处理的
愈伤组织产生时间与不加2,4D的处理类似,在培
养15d后才有愈伤组织产生。
2.3 愈伤组织继代培养中的生长变化
采用MS+6BA2mg·L-1+NAA2mg·L-1+
2,4D2mg·L-1培养基进行愈伤组织继代培养。继
代接种3d后,即发现新的愈伤组织开始生长,新长
出的愈伤组织颜色为白色或淡黄色,较为疏松,体积
明显增大,到20d左右,生长达到最旺盛阶段,颜色
大多转变为浅绿色,有的出现少量的紫红色,25d
以后生长逐渐减慢,30d后有少部分愈伤组织转变
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   表3 2,4D对愈伤组织诱导的影响
质量浓度/mg·L-1
6BA NAA 2,4D
叶片
接种数 出愈数 出愈率/%
茎段
接种数 出愈数 出愈率/%
20 20 05 32 24 750 25 14 560
20 20 10 36 29 806 21 13 619
20 20 20 38 32 842 27 19 704
40 20 05 36 25 694 22 13 591
40 20 10 35 24 686 30 17 567
40 20 20 36 26 722 33 22 667
为不同程度的浅灰色或褐色,有的甚至使培养基的
颜色也呈浅灰色。在以后的继代培养中,以25d作
为继代周期。继代时将不同颜色的愈伤组织分开分
别接种。
颜色为浅绿色的愈伤组织一般经4~5次继代
后,其质地变得疏松易分散,适于作细胞悬浮培养。
紫红色的愈伤组织经继代后,新产生的愈伤组织也
是呈不同程度的紫红色,很难出现白色或淡黄色的
愈伤组织,其质地虽疏松但成团块状不易分散。颜
色接近深绿的愈伤组织,其质地坚硬不易分散,培养
后期出现芽点有分化的迹象,这部分适于作分化培
养。灰色或褐色的愈伤组织继代后基本未见新的愈
伤组织生长,大多在培养10d后出现细胞死亡,有
的呈黏稠水浸状,有的逐渐变干枯。
分析愈伤组织颜色出现较大差异的原因,可能
与继代时没有区分愈伤组织的初始诱导培养基有
关,经初始诱导得到的愈伤组织由于外植体来源不
同、培养基激素种类和水平也不同,有可能在继代时
得到不同的结果。
2.4 不同继代培养条件对喜树愈伤组织生长的影

采用 MS+6BA 2 mg· L-1 +NAA 2
mg·L-1+2,4D2mg·L-1作起始诱导培养基,将
得到的愈伤组织经同样培养基4次继代增殖后进行
如表1设计的正交试验。表4为继代接种25d后
各处理的平均鲜重增长情况,处理1和2的每克接
种量净增重明显高于其他处理,分别为7799mg和
7221mg,其次为处理9,为6112mg。极差分析结
果表明,对愈伤组织生长影响程度最大的因素是
pH,其次是6BA和蔗糖,而2,4D的影响最小,最
佳培养基为6BA1mg·L-1+2,4D1mg·L-1,蔗
糖用量30g·L-1,pH55。
在各处理间未观察到愈伤组织颜色和质地的明
显不同,第25天取样称重时,愈伤组织颜色均为淡
   表4 不同培养条件对愈伤组织生长的影响
处理
6BA
/mg·L-1
2,4D
/mg·L-1
蔗糖
/g·L-1
pH
接种量
/mg
每克接种量
净增重/mg
1 10 05 20 55 3428 7799
2 10 10 30 60 2975 7221
3 10 20 40 65 3627 2178
4 20 05 30 65 3775 2039
5 20 10 40 55 4505 3522
6 20 20 20 60 3831 3278
7 40 05 40 60 3645 2853
8 40 10 20 65 3954 2159
9 40 20 30 55 3683 6112
黄色至浅绿色,且基本呈颗粒状堆积,容易分散。这
可能与愈伤组织来源一致,继代培养周期均为25d
且继代次数较少有较大关系。
3 讨论
3种外植体中,叶片的愈伤组织诱导效果较好,
茎段和带芽茎段也能诱导产生愈伤组织但诱导率比
叶片低且诱导时间较慢,带芽茎段容易诱导出芽,适
于作植株快速繁殖的外植体。
以MS为基本培养基,在6BA和 NAA不同组
合的培养基上,3种外植体均能诱导产生愈伤组织,
但不同培养基之间的诱导率差异较大,添加适当浓
度的2,4D有利于叶片和茎段愈伤组织诱导率的提
高。试验发现诱导效果最好的培养基为 MS+6BA
2mg·L-1+NAA2mg·L-1+2,4D1~2mg·
L-1,这与张冬艳等[10]及邓冬青等[13]研究发现的最
佳培养基有所不同,可能与喜树品种、取样时间等有
较大关系。
以茎段作外植体,愈伤组织诱导率可达70%,
但带芽茎段的诱导率却较低(45% ~381%),陈
颖等同样发现带芽茎段的愈伤组织比率较低
(13%~21%)[11],但林桂芸等以 B5,WH和 MS作
基本培养基与6BA和 IBA组合,从带芽茎段得到
的诱导率却较高(389% ~857%)[12]。这表明茎
段和带芽茎段均可作为愈伤组织诱导的外植体,但
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带芽茎段更适于通过腋芽诱导进行植株快速繁
殖[11,12]。
试验发现来自不同诱导培养基的愈伤组织多次
继代到同一培养基后会出现颜色和质地的明显差异,
而来源相同的愈伤组织经同一培养基继代则较少出
现颜色和质地的差异,这是由于不同激素种类和水平
对细胞代谢的影响不同所致。张冬艳等发现,不同基
本培养基上诱导的愈伤组织在形态、颜色和质地等方
面有一定差异,继代培养后其生长情况也表现出不
同,只有MS培养基上的愈伤组织经继代培养后适于
用作细胞悬浮培养[10]。Wiedenfeld等[7]、邓冬青
等[13]也得到类似结果,但他们发现除了MS外,B5也
是诱导愈伤组织和继代培养的较好培养基。这表明,
为了筛选到较好的用于细胞悬浮培养的愈伤组织体
系,应当选择来自同一诱导培养基且颜色正常、疏松
易分散的愈伤组织予以继代培养。
已有研究表明,不同的基本培养基、激素种类及
水平与愈伤组织和悬浮培养细胞中的喜树碱积累有
一定关系[8,10,13],因此,有必要结合喜树碱的检测进
一步研究愈伤组织的诱导和继代培养条件。
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CalusinductionandcultivationofCamptothecaacuminata
MALin
(SchoolofLifeScienceandEngineering,SouthwestUniversityofScienceandTechnology,Mianyang621010,China)
[Abstract] Objective:Tostudythecalusinductionfromleaf,stemsegmentsandstemsegmentswithaxilary’sbudandthe
subcultureconditionsofcalusinCamptothecaacuminata.Method:TheexplantswereinoculatedintothemediaofMSwithdiferent
concentrationsof6BA,NAAand2,4Dbyorthogonalexperiment.ResultandConclusion:Theoptimalmediumforcalusinduction
wasMSwith6BA2mg·L-1,NAA2mg·L-1and2,4D2mg·L-1.Ithadbeterefectsinleafthaninotherexplants.Theinduc
tionratioinleafreachedabove80%.ThecalussubculturedonthemediumofMSwith6BA1mg·L-1and2,4D1mg·L-1grew
vigorousandmorequicklythanthatinothermedia.Itwasloose,friableinconsistencyandsuitableforcelculture.
[Keywords] Camptothecaacuminata;calus;tissueculture
[责任编辑 张宁宁]
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