全 文 ：芍药苷研究进展
孙丽荣，曹 雄，侯凤青，朱心红，高天明
（南方医科大学 神经生物学教研室，广东 广州 ５１０５１５）
［摘要］ 芍药苷为常用中药芍药的主要有效成分，是一种单萜类糖苷化合物。近年来，国内外学者对芍药苷
展开了较为深入的研究，发现芍药苷具有多种生物学效应，并且毒副作用较小；但在检测方法、药效功用等方面的
研究结果有很大差异。为了进一步开发其药用价值，揭示其药物配伍规律的物质基础，查阅了 ＰｕｂＭｅｄ、中国期刊
全文数据库有关芍药苷的研究，并结合作者的实验，从芍药苷的检测方法、药物代谢动力学、药理学及毒理学等方
面予以综合述评。
［关键词］ 芍药苷；高效液相色谱；酶联免疫吸附；离子通道；受体；神经保护
［中图分类号］Ｒ２８５５ ［文献标识码］Ａ ［文章编号］１００１５３０２（２００８）１８２０２８０５
［收稿日期］ ２００８０３２０
［基金项目］ 国家自然科学基金项目（３０６７２６６０）
［通讯作者］ 朱心红，Ｔｅｌ：（０２０）６１６４７１１２，Ｅｍａｉｌ：ｚｈｕｘｈ＠
ｆｉｍｍｕｃｏｍ
芍药苷（ｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ，ＰＦ）是芍药的主要有效成分之一，
是一种单萜类糖苷化合物。国内外学者对ＰＦ展开了较为深
入的研究，发现其具有多种生物学效应，并且毒副作用较小。
但在检测方法、药效功用等方面的研究结果有很大差异。为
了进一步开发其药用价值，揭示其药物配伍规律的物质基
础，作者以“ｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ”为关键词，在 ＰｕｂＭｅｄ上共检测到
２０８篇文献，以“芍药苷”为关键词，在中国期刊全文数据库
中共检测到４５３篇文献。依据这些研究成果，就 ＰＦ的检测
方法、药物代谢动力学、药理学及毒理学等方面的研究予以
综述。
１ ＰＦ的检测方法研究
由于白芍中ＰＦ的含量较高，检测较为容易，通常用高效
液相色谱法，中药复方制剂中也通常选用测定 ＰＦ的含量为
制剂质量标准。然而，ＰＦ进入体内后，在血浆、组织中的含
量微小，检测较为困难。因而，近些年来，研究者们为了深入
揭示ＰＦ的作用机制及药物作用的直接靶点，对微量样本中
ＰＦ的检测方法也作了系统研究，改进和发明了一些新的检
测方法。
１１ 高效液相色谱（ＨＰＬＣ）法
ＨＰＬＣ法仍然是检测血浆、组织中的 ＰＦ含量的主要方
法，但在样本制备、色谱条件、内标物的选择等操作环节上各
个实验室有很大的不同，直接影响样品中 ＰＦ的回收率（ｒｅ
ｃｏｖｅｒｙ）、检测灵敏度（ｓｅｎｓｉｔｉｖｉｔｙ）以及实验结果的可重复性。
１１１ 样本制备 目前已建立了适宜于血浆、大脑皮层、海
马、心、肝、肾、脾、肺、睾丸等各种组织中ＰＦ的ＨＰＬＣ检测样
品制备方法。由于这些样品中蛋白含量丰富，因而去蛋白是
样品制备中的必要步骤，也是影响 ＰＦ回收率的关键环节。
通常采用的去蛋白方法有：３５％ ～７５％的乙腈［１２］、４５％高
氯酸（ｐＨ０７２）［３］或磷酸二氢钠（ｐＨ５０）酸化的醋酸乙
酯［４］处理样品后，１３０００ｒ·ｍｉｎ－１离心 １０ｍｉｎ，得上清液。
有研究表明用乙腈处理样品，ＰＦ的回收率较低且重复性差，
均不如用４５％高氯酸处理［３］。由于ＰＦ在正常及碱性溶液
中易于离子化，因而样品酸化处理易于提高ＰＦ的回收率，但
目前没有不同酸化条件对 ＰＦ回收率影响的研究，尚不能够
确定ＰＦ提取时样本制备的最佳酸性条件。另外，液液萃取
（ｌｉｑｕｉｄｌｉｑｕｉｄｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ）或固相萃取（ｓｏｌｉｄｐｈａｓｅｅｘｔｒａｃｔｉｏｎ）
等提取方式的不同也可能影响 ＰＦ的提取回收率。ＰＦ的水
溶性稍好、脂溶性差，因而采用二氯甲烷、己烷二氯甲烷异
丙醇混合液（２０∶１０∶１）、醋酸乙酯等液液提取方式提取 ＰＦ
的回收率很低，一般不超过１７％。有研究发现采用固相萃
取能够提高样品中ＰＦ的回收率，再结合液质联用质谱分析
的检测方法，从而提高检测的灵敏度［１］。但固相萃取消耗较
大，操作步骤繁琐，加上液质联用质谱分析的检测方法所需
设备昂贵，导致该方法不利于推广。
１１２ 色谱条件 检测血浆或组织样品中的 ＰＦ采用的色
谱条件为：Ｃ１８色谱住；柱温（２５±１）℃；检测波长 ２３０ｎｍ。
但流动相以及流速的选择有较大的差别。常用的流动相有
甲醇水（６８∶３２）［５］、甲醇０１％ 甲酸水溶液（５０∶５０）［２］、梯
度乙腈０１％甲酸水溶液［６］、乙腈０１％磷酸缓冲液（１８∶
８３）［７］、乙腈水（１４∶８６）［３］、乙腈水醋酸（１８∶８２∶０４）［４］、乙
腈００５％甲酸水溶液（２５∶７５）［１］。有研究表明，流动相中加
入甲酸或缓冲液能够获得较好的峰型和分离效果［４，６］。流
动相的选择无疑是影响实验结果的重要因素，造成如此多样
流动相选择差异的原因，可能与样品的处理、ＨＰＬＣ检测设
备差异等的不同有关。作者采用 Ａｇｉｌｅｎｔ１２００ＨＰＬＣ系统，
比较分析了乙腈水醋酸（１８∶８２∶０４）、乙腈水（１８∶８２）以
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及乙腈水（１４∶８６）３种流动相（流速１０ｍＬ· ｍｉｎ－１）对经
４５％高氯酸处理的同一血浆上样样品的色谱分离效果，结
果发现乙腈水（１４∶８６）的分离效果最好。流速的选择也是
影响色谱分析结果的原因，通常选用的流速为 １０ｍＬ·
ｍｉｎ，也有研究者选用 ０５ｍＬ·ｍｉｎ－１或 ０２～０３ｍＬ·
ｍｉｎ－１［１］。原则上，流速越慢，色谱峰分离的效果越好，但流
速慢，必然导致检测时间延长，很难得到描述精密度（ｐｒｅｃｉ
ｓｉｏｎ）的重要指标，比如日间差异（ｉｎｔｒａｄａｉｌｙｖａｒｉａｎｃｅｓ）、日内
差异（ｉｎｔｅｒｄａｉｌｙｖａｒｉａｎｃｅｓ）等。
１１３ 内标物的选择 样品中加入内标物是提高实验重复
性、可靠性的重要手段。通常选用的内标物有己酮可可碱
（ｐｅｎｔｏｘｉｆｙｌｉｎｅ）、胡黄连苦苷（ｐｉｃｒｏｓｉｄｅ）等。有研究显示胡
黄连苦苷与ＰＦ在理化特性上相似，在 ＨＰＬＣ的检测中也呈
现相似的保留特性（ｒｅｔｅｎｔｉｏｎｂｅｈａｖｉｏｒ）［４］。内标物应于样品
去蛋白处理前加入，根据色谱峰面积先测出内标物的得率，
检验样品处理过程中造成的实验误差，进一步校正样品中
ＰＦ实际含量，从而提高实验的可重复性。
１２ 酶联免疫测定（ｅｎｚｙｍｅｌｉｎｋｅｄｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔａｓｓａｙ）法
该方法最早由Ｓｈｏｙａｍａ于１９８４年提出，后又有所改进。
ＰＦ免疫原的制备是该方法的重要环节（８）。按照上述方法可
以得到多个单克隆抗体（ｍｏｎｏａｎｔｉｂｏｄｙ），这些抗体不仅能够
识别血浆中ＰＦ，还与芍药中其他化合物，如白芍苷（ａｌｂｉｆｌｏｒ
ｉｎ）、氧化芍药苷（ｏｘｙｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ）、苯甲酰芍药苷（ｂｅｎｚｏｙｌ
ｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ）等有交叉反应，从而影响了检测的特异性。进
一步的研究发现，其中一个单克隆抗体ＭＡｂＣ３１Ｂ９能够较特
异性地识别ＰＦ和氧化芍药苷，经测序得到 ＭＡｂＣ３１Ｂ９的重
链和轻链的序列，将其构建于ｐＥＴ２８／ｓｃＦｖ质粒中，再将该质
粒转染入大肠杆菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａｃｏｌｉ）Ｂ２１中进行蛋白扩增，即
得到特异性地识别ＰＦ和氧化芍药苷的抗体Ｆｖ段，从而大大
简化了酶联免疫测定的抗体制备过程［９］。与ＨＰＬＣ相比，该
方法具有较高的检测灵敏度，能够检测到血浆样品中纳克水
平的ＰＦ（ＨＰＬＣ检测灵敏度为微克水平），为研究治疗剂量
（０５～４０ｍｇ·ｋｇ－１）条件下ＰＦ的体内代谢过程提供了可能
的检测手段。
１３ 光反应探针（ｐｈｏｔｏｒｅａｃｔｉｖｅｐｒｏｂｅ）检测法
光亲和标记（ｐｈｏｔｏａｆｉｎｉｔｙｌａｂｅｌｉｎｇ）技术是用于确定药物
与靶蛋白结合位点的一种技术，利用该技术不仅可以确定药
物作用的靶蛋白，还可以提供药物与靶蛋白结合的结构上的
信息。有研究者构建了ＰＦ生物素标记的光反应探针［１０］，可
能为揭示ＰＦ作用靶点的研究提供有益的检测方法。
２ 药物代谢动力学研究
ＰＦ的体内代谢过程基本符合二室开放模型。给药途径
不同，ＰＦ的体内代谢过程亦不同。ＰＦ的口服生物利用度很
低，约３％～４％。研究表明，口服 ＰＦ在肠内菌的作用下产
生３种转化物，分别为ＰＦ代谢素（ｐａｅｏｎｉｍｅｔａｂｏｌｉｎ）Ⅰ，Ⅱ，Ⅲ
（简称ＰＭⅠ，Ⅱ，Ⅲ）。ＰＦ在２４～３０ｈ内被完全代谢，此时
ＰＭⅠ的产量最大，约相当于原药物ＰＦ的７２％；其后ＰＭⅠ
的产量逐渐减少。ＰＭⅡ的代谢过程与 ＰＭⅠ相似，但过程
缓慢，产量仅为ＰＭⅠ的１／４。ＰＭⅢ仅在转化的早期出现，
服药２５ｈ后就检测不到了［１１］。Ｈｅｉｋａｌ等比较了 ＳＤ大鼠灌
胃给药０５，５ｍｇ·ｋｇ－１后血浆ＰＦ与ＰＭⅠ水平的时间变化
曲线，发现２种浓度下 ＰＦ，ＰＭⅠ的血浆水平的变化曲线相
似。ＰＦ很快即达到最大血药浓度时间（ｔｍａｘ＝１１６～１３３
ｍｉｎ），此后血药浓度逐渐下降；而 ＰＭⅠ达到最大血药浓度
的时间较长（ｔｍａｘ＝６０～８０ｍｉｎ），并且维持于较高的浓度水
平＞４ｈ。还发现，ＰＭⅠ的最大血浆浓度是ＰＦ的２～５倍。
为了提高 ＰＦ的血浆浓度，有研究者发现药物配伍可以
明显提高ＰＦ的口服生物利用度。Ｌｉｕ等的研究发现 ＰＦ与
青藤碱（ｓｉｎｏｍｅｎｉｎｅ）联合灌胃给予 ＳＤ大鼠，ＰＦ的血浆浓度
明显高于单纯灌胃给予ＰＦ，提示青藤碱具有提高ＰＦ的口服
生物利用度的作用［１２１３］；进一步的研究发现，青藤碱能够抑
制肠道内Ｐ糖蛋白向肠腔内转运ＰＦ的功能，增强了肠道吸
收ＰＦ的能力，从而提高了 ＰＦ的口服生物利用度［１４］。但也
有研究发现，芍药的解痉作用可能主要是 ＰＭⅠ的作用，因
为ＰＭⅠ的解痉作用明显优于 ＰＦ。此外，芍药甘草汤为治
疗腹痛的主要代表方剂，研究发现口服芍药甘草汤后，Ｗｉｓｔａｒ
大鼠血浆中ＰＭⅠ的水平明显高于口服对应剂量的ＰＦ时血
浆ＰＭⅠ水平［１５］，表明芍药甘草配伍可能促进了 ＰＦ向 ＰＭ
Ⅰ的转化，从而具有更好的解痉作用。这些结果提示：芍药
的有效组分可能被不同的药物配伍改变了，进而针对不同的
临床症状发挥不同的药理作用。
除了给药途径、药物配伍影响ＰＦ的药代动力学以外，生
物体的状态也可以影响ＰＦ的药代动力学。有研究者比较了
正常Ｗｉｓｔａｒ大鼠和双侧颈总动脉结扎造成的脑缺血再灌流
大鼠ＰＦ的体内代谢过程。结果发现，在脑缺血动物体内，
ＰＦ的血浆浓度明显升高、半衰期明显缩短、平均滞留时间延
长、清除率下降［１６］。
３ 药理学和毒理学研究
３１ 对离子通道的作用
离子通道是细胞膜上能够通透离子的一类跨膜蛋白质，
是许多化合物的作用靶点。研究表明，在 ＮＧ１０８１５细胞系
（１种神经胶质瘤细胞系）上，ＰＦ能够阻断 Ｌ型钙通道（Ｃａｖ
１３），并呈剂量依赖性和活动依赖性，ＩＣ５０为１４μｍｏｌ·Ｌ
－１，
３００μｍｏｌ·Ｌ－１浓度的ＰＦ几乎可以完全阻断 Ｃａｖ１３；而且
ＰＦ能够延长Ｃａｖ１３复活的时间，这可能是由于ＰＦ对Ｎａ＋
Ｋ＋通道也具有部分阻断作用，从而导致膜电位下降造成
的［１７］。在急性分离的昆明种小鼠海马 ＣＡ１区神经细胞上，
ＰＦ能够阻断 Ｎａ＋通道电流，并呈剂量依赖效应，ＩＣ５０为２７１
μｍｏｌ·Ｌ－１；但最大阻断效应仅为８０％（ＰＦ浓度达到１ｍｍｏｌ
·Ｌ－１）［１８］。可见ＰＦ对 Ｃａｖ１３通道的阻断作用可能更为
敏感。
３２ 对受体的作用
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较早的研究发现，口服ＰＦ能够改善腹腔注射０３ｍｇ·
ｋｇ－１Ｍ受体阻断剂东莨菪碱（ｓｃｏｐｏｌａｍｉｎｅ）造成的 Ｗｉｓｔａｒ大
鼠的空间学习记忆障碍，并呈剂量依赖性（００１～１ｍｇ·
ｋｇ－１，口服）。进一步的研究发现，非选择性β受体阻断剂普
萘洛尔（ｐｒｏｐｒａｎｏｌｏｌ）和 β１受体阻断剂阿替洛尔（ａｔｅｎｏｌｏｌ）以
及α１受体阻断剂育亨宾（ｙｏｈｉｍｂｉｎｅ）均能够阻断 ＰＦ对东莨
菪碱诱导的大鼠空间学习记忆障碍的改善作用；而 α２受体
阻断剂哌唑嗪（ｐｒａｚｏｓｉｎ）没有类似的作用。由于这些受体阻
断剂本身并不能够造成大鼠的空间学习记忆障碍，也不能够
改善东莨菪碱诱导的大鼠空间学习记忆障碍，因而提示 ＰＦ
对Ｍ受体、β１受体和 α１受体可能具有类似激活的效应。在
成年大鼠（１８０～２８０ｇ）离体脑片的研究表明，非选择性Ｍ受
体阻断剂东莨菪碱以及 Ｍ１受体阻断剂哌吡卓酮（ｐｉｒｅｎｚ
ｅｐｉｎｅ）均能够抑制突触长时程增强（ｌｏｎｇｔｅｒｍｐｏｔｅｎｔｉａｔｉｏｎ，
ＬＴＰ），而Ｍ２受体则没有此作用；ＰＦ（１μｍｏｌ·Ｌ
－１）能够逆转
东莨菪碱、哌吡卓酮对ＬＴＰ诱导的抑制效应；但对 ＬＴＰ的诱
导没有作用［１９］。提示 ＰＦ不是直接激活了 Ｍ１受体，而可能
是间接地阻断了由于 Ｍ受体抑制产生的效应，从而改善东
莨菪碱导致的大鼠空间学习记忆障碍。
腺苷Ａ１受体（ａｄｅｎｏｓｉｎｅＡ１ｒｅｃｅｐｔｏｒ）是 Ｇ蛋白偶联受
体，具有多种生物学效应。ＰＦ对腺苷 Ａ１受体的作用，目前
报道的结果不一致。有研究表明，ＰＦ在０３～１０ｍｇ·ｋｇ－１
（腹腔注射，ｉｐ），能够呈现与腺苷 Ａ１受体阻断剂（ａｎｔａｇｏ
ｎｉｓｔ）８环戊基１，３二丙基黄嘌呤（ＤＰＣＰＸ）相似的药理效
应：逆转腺苷Ａ１受体激动剂（ａｇｏｎｉｓｔ）氮６环戊基腺苷 （Ｎ６
ｃｙｃｌｏｐｅｎｔｙｌａｄｅｎｏｓｉｎｅ，ＣＰＡ）缩短的小鼠被动逃避反应（ｐａｓｓｉｖｅ
ａｖｏｉｄａｎｃｅｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ）的潜伏期，并呈剂量依赖性。离体脑
片的研究还发现，腺苷（１０μｍｏｌ·Ｌ－１）能抑制 ＬＴＰ的诱导，
而１μｍｏｌ·Ｌ－１ＰＦ能够逆转腺苷的这一效应［２０］。但多数研
究发现，ＰＦ可能对腺苷Ａ１受体具有激动剂效应。ＰＦ（２０ｍｇ
·ｋｇ－１，皮下注射，ｓｃ）能够增强ＣＰＡ抗伤害性疼痛（ａｎｔｉｎｏｃｉ
ｃｅｐｔｉｖｅ）的效应；也具有神经保护作用，这些药理效应能够为
ＤＰＣＰＸ所阻断［２１２２］。受体竞争结合实验的研究发现，ＰＦ能
够与腺苷Ａ１受体阻断剂乙基羧化腺苷（ＮＥＣＡ）发生竞争性
结合，腺苷Ａ１受体第 ７跨膜段上的苏氨酸残基（ｔｈｒｅｏｎｉｎｅ
ｒｅｓｉｄｕｅ）可能是他们的结合位点［２２］，提示 ＰＦ可能直接作用
于腺苷Ａ１受体。造成上述实验结果不一致的原因可能与
ＰＦ的使用剂量与给药方法的不同有关；作者的研究也发现，
ＰＦ在１～１０ｍｇ·ｋｇ－１呈现剂量依赖性的抗抑郁效应，但当
剂量＞２０ｍｇ·ｋｇ－１时该药理效应即消失［２３］。
３３ 神经保护作用
关于ＰＦ的神经保护作用，系统性的研究工作来自朱兴
族教授的实验室。研究发现，在 ＳＤ大鼠大脑中动脉阻塞再
灌流（ＭＣＡＯ）脑缺血模型上，ＰＦ（２５～１０ｍｇ·ｋｇ－１，ｓｃ）能
够显著降低模型大鼠的死亡率，缩小缺血造成的大脑皮层的
梗死面积，改善大鼠的神经损伤状况以及空间学习记忆能
力［２２２５］；在双侧颈总动脉结扎（２ＶＯ，４周）造成的慢性脑缺
血模型上，ＰＦ（１２５～２５ｍｇ·ｋｇ－１，ｓｃ）能够显著改善由慢
性缺血造成的Ｗｉｓｔａｒ大鼠空间学习记忆障碍，并明显保护易
受损的海马 ＣＡ１区神经元［２６］。在 ６羟基多巴胺（６ＯＨ
ＤＡ）、四氢吡啶 （ＭＰＴＰ）等造成的帕金森疾病（Ｐａｒｋｉｎｓｏｎ＇ｓ
ｄｉｓｅａｓｅ）啮齿类动物模型上，ＰＦ能够保护黑质（ＳＮｃ）多巴胺
能神经元，显著改善动物的运动能力［２７２８］。尤为重要的是
研究发现，静脉注射ＰＦ，在１０～１６０ｍｇ·ｋｇ－１内对清醒状态
的大鼠的平均动脉血压、心率、体温等均无影响，而注射腺苷
Ａ１受体的激动剂 ＣＰＡ０２５ｍｇ·ｋｇ－１即可造成大鼠平均动
脉血压和心率的显著下降［２２］。另外，在离体培养的皮层神
经元损伤模型上，有研究发现ＰＦ能够对抗由咖啡因、谷氨酸
或高钾等造成的神经损伤［２９］。但目前还没有关于 ＰＦ在离
体培养的皮层或海马神经元糖氧剥夺神经损伤模型上的神
经保护作用的研究报道，而糖氧剥夺神经损伤模型才是最
为公认的模拟脑缺血缺氧造成神经损伤的离体模型。
关于ＰＦ作用机制的研究表明：ＰＦ可能通过抑制星形胶
质细胞的激活、增强 ＡＴＰ敏感的钾通道的表达从而降低细
胞膜的兴奋性、增强脑源性营养因子（ＢＤＮＦ）的表达以及抑
制细胞色素 Ｃ的释放、ＮＫκＢ的激活等多个环节而发挥神
经保护作用［２５２６］。但由于尚不清楚 ＰＦ的作用靶点，因而目
前还不清楚ＰＦ神经保护作用的明确机制。
３４ 抗伤害性疼痛的作用
有研究报道，ＰＦ（５～１００ｍｇ·ｋｇ－１，ｉｐ）能够显著降低蜂
毒引起的疼痛反应，这一效应能被鸦片受体阻断剂盐酸纳洛
酮（ｎａｌｏｘｏｎｅ）所阻断［３０］；但 ＰＦ（５～２０ｍｇ·ｋｇ－１，ｓｃ）对机械
压迫造成的伤害性疼痛没有作用［２１］。ＰＦ对抗炎性疼痛可
能与其抗炎作用有关，因为有研究发现 ＰＦ能够减轻 ＳＤ大
鼠佐剂性关节炎的症状，抑制腹腔巨噬细胞的吞噬功能以及
炎性因子的产生［３１］。
３５ ＰＦ的其他药理作用
近些年来的研究还发现ＰＦ具有保肝作用［３２］；能够抑制
肺癌Ａ５４９细胞系细胞的分裂［３３］；能够刺激培养的脂肪细胞
释放腺苷从而促进糖代谢［３４］；能够保护培养的胸腺细胞免
受放射损害［３５］。但也有研究发现，ＰＦ对放射造成的海马
ＣＡ１区神经损伤没有保护作用［３６］。
３６ ＰＦ的细胞毒性检验
有研究表明在培养的正常胸腺细胞中加入０１～１０００
ｍｇ·Ｌ－１的ＰＦ没有发生毒性反应［３５］；在 Ｕ９３７细胞系（人骨
髓单核细胞系）中加入１６０～６４０ｍｇ·Ｌ－１浓度的ＰＦ也没有
发生毒性反应［３７］。但作者的研究发现，在 ＨＥＫ２９３细胞系
上，当ＰＦ的终浓度 ＞５００μｍｏｌ·Ｌ－１（相当于２４０２３ｍｇ·
Ｌ－１）时即可导致细胞的死亡。结果提示针对不同的细胞，
ＰＦ可能呈现不同的毒性反应。
４ 小结
ＰＦ是中药芍药的主要有效成分，研究已经发现其具有
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多种生物学效应，但目前尚不清楚针对不同的生物学效应，
真正起效的是ＰＦ本身，还是其代谢产物，因为 ＰＦ的药物代
谢动力学研究发现ＰＦ的口服生物利用度很低，即使是静脉
给药，ＰＦ也很快代谢为 ＰＭⅠ。另外，由于检测手段的局
限，目前还不清楚ＰＦ的作用靶点。因而，阐明 ＰＦ及其代谢
产物的作用靶点及其信号转导机制，可能为认识中药芍药的
药理作用，发现其药用价值，揭示其药物配伍规律的物质基
础提供指导。
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·１３０２·
第３３卷第１８期
２００８年９月
中 国 中 药 杂 志
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Ａ５４９ｃｅｌｓ［Ｊ］ＣｌｉｎＥｘｐＰｈａｒｍａｃｏｌＰｈｙｓｉｏｌ，２００８，３５（２）：１４１
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ｏｘｙｇｅｎｓｐｅｃｉｅｓａｎｄｔｈｅｍｉｔｏｇｅｎａｃｔｉｖａｔｅｄｐｒｏｔｅｉｎｋｉｎａｓｅｓ［Ｊ］Ｉｎｔ
ＪＢｉｏｃｈｅｍＣｅｌＢｉｏｌ，２００７，３９（２）：４２６
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ｐｏｃａｍｐｕｓｉｎｄｕｃｅｄｂｙｔｈｅｃｏｂａｌｔｆｏｃｕｓｅｐｉｌｅｐｓｙｍｏｄｅｌ［Ｊ］Ｅｘｐ
Ｎｅｕｒｏｌ，１９９７，１４６（２）：５１８
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ｇｅｎｅｓｒｅｓｐｏｎｓｉｖｅｔｏｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ，ａｈｅａｔｓｈｏｃｋｐｒｏｔｅｉｎｉｎｄｕｃｉｎｇ
ｃｏｍｐｏｕｎｄ，ｉｎｈｕｍａｎｌｅｕｋｅｍｉａＵ９３７ｃｅｌｓ［Ｊ］ＩｎｔＪＨｙｐｅｒｔｈｅｒ
ｍｉａ，２００７，２３（６）：５２９
Ｐｒｏｇｒｅｓｓｉｖｅｓｔｕｄｉｅｓｏｆｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ
ＳＵＮＬｉｒｏｎｇ，ＣＡＯＸｉｏｎｇ，ＨＯＵＦｅｎｇｑｉｎｇ，ＺＨＵＸｉｎｈｏｎｇ，ＧＡＯＴｉａｎｍｉｎｇ
（ＤｅｐａｒｔｍｅｎｔｏｆＮｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，ＳｏｕｔｈｅｒｎＭｅｄｉｃａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｇｕａｎｇｚｈｏｕ５１０５１５，Ｃｈｉｎａ）
［Ａｂｓｔｒａｃｔ］ ＰａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎｉｓｏｎｅｏｆｔｈｅｂｉｏａｃｔｉｖｅｃｏｍｐｏｎｅｎｔｓｏｆＰａｅｏｎｉａｌａｃｔｉｆｌｏｒａ，ａｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌＣｈｉｎｅｓｅｈｅｒｂａｌｍｅｄｉｃｉｎｅＩｔｉｓｔｈｅ
ｍａｉｎｍｏｎｏｔｅｒｐｅｎｅｇｌｕｃｏｓｉｄｅｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｔｈｅＰｌａｃｔｉｆｌｏｒａｉｎ１９６３Ｓｉｎｃｅｔｈｅｎ，ｒｅｓｅａｒｃｈｅｒｓｈａｖｅｆｏｕｎｄｔｈａｔｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎｈａｓｍｕｌｔｉｆｏｌｄ
ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌｅｆｅｃｔｓＩｎｔｈｉｓｒｅｖｉｅｗ，ｂａｓｅｄｏｎｔｈｅｒｅｃｅｎｔａｖａｉｌａｂｌｅｐａｐｅｒｓｐｕｂｌｉｓｈｅｄｉｎＰｕｂＭｅｄａｎｄＮａｔｉｏｎａｌＫｎｏｗｌｅｄｇｅＩｎｆｒａｓｔｒｕｃ
ｔｕｒｅＤａｔａＢａｓｅ，ｗｅｐｒｅｓｅｎｔｔｈｅｍａｊｏｒｃｕｒｅｎｔａｐｐｒｏａｃｈｅｓｉｎｕｎｄｅｒｓｔａｎｄｉｎｇｔｈｅｄｅｔｅｃｔｉｏｎｍｅｔｈｏｄｏｌｏｇｙ，ｐｈａｒｍａｃｏｋｉｎｅｔｉｃｓａｎｄｐｈａｒｍａｃｏｌ
ｏｇｙ，ａｎｄｔｏｘｉｃｏｌｏｇｙｏｆｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ
［Ｋｅｙｗｏｒｄｓ］ ｐａｅｏｎｉｆｌｏｒｉｎ；ｈｉｇｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅｌｉｑｕｉｄｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ；ｅｎｚｙｍｅｌｉｎｋｅｄｉｍｍｕｎｏｓｏｒｂｅｎｔａｓｓａｙ；ｉｏｎｃｈａｎｎｅｌ；ｒｅｃｅｐ
ｔｏｒ；ｎｅｕｒｏｐｒｏｔｅｃｔｉｏｎ
［责任编辑 古云侠
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第３３卷第１８期
２００８年９月
中 国 中 药 杂 志
ＣｈｉｎａＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｈｉｎｅｓｅＭａｔｅｒｉａＭｅｄｉｃａ
Ｖｏｌ．３３，Ｉｓｓｕｅ １８
Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ，２００８