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Effects of alcoholic extracts from Acorus tatarinowii on defensive enzymes of tomato

石菖蒲醇提物对番茄幼苗防御酶影响



全 文 :广 西 植 物 Guihaia Aug.2015,35(4):597-602           http://journal.gxzw.gxib.cn 
DOI:10.11931/guihaia.gxzw201406008
孙雪丹,何苗,罗友,等.石菖蒲醇提物对番茄幼苗防御酶影响[J].广西植物,2015,35(4):597-602
SunXD,HeM,LuoY,etal.EfectsofalcoholicextractsfromAcorustatarinowiiondefensiveenzymesoftomato[J].Guihaia,2015,35(4):597-602
石菖蒲醇提物对番茄幼苗防御酶影响
孙雪丹1,何 苗1,罗 友1,刘铁秋1,2,卢 勇3,曾宪垠1,2∗
(1.四川农业大学 生命科学学院,四川 雅安625014;2.四川农业大学 原子能农业应用研究室,
四川 雅安625014;3.四川玛思特农业开发有限公司,四川 南充637105)
摘 要:为了探讨石菖蒲醇提物作为一种中药杀菌剂对病菌寄主植物本身防御酶体系的影响,该研究以番茄
欧粉贝幼苗和川产道地中药石菖蒲为材料,采用冷浸法制备石菖蒲醇提物,经不同浓度石菖蒲醇提物对番茄
幼苗进行处理,用比色法测定多酚氧化酶(PPO)、苯丙氨酸解氨酶(PAL)和过氧化物酶(POD)的活性,并利用
GCGMS联用技术,对石菖蒲醇提物的主要化学成分进行定性分析.结果表明:第1天,醇提物浓度在0.04~
0.08g􀅰mLG1时,PAL活性显著高于对照;随后PAL活性随浓度升高降低;当浓度在0.04~0.16g􀅰mLG1时,
POD活性与对照无显著差异;浓度为0.32g􀅰mLG1时,POD活性显著高于对照;浓度为0.64g􀅰mLG1时,POD
活性显著低于对照;当浓度在0.04~0.32g􀅰mLG1时,PPO活性显著高于对照;浓度为0.64g􀅰mLG1时,PPO
活性与对照无显著差异;随着时间的延长,三种酶各处理组之间的差异逐步减少.第4天时,各处理组之间
PAL的活性无显著差异;当浓度为0.04g􀅰mLG1和0.64g􀅰mLG1时,PPO活性与对照无显著差异,其余范围均
显著高于对照;当浓度在0.08~0.32g􀅰mLG1时,POD活性数值上均高于对照.以上表明在一定浓度范围内
醇提物可以增强防御酶活性,未破坏植物的防御酶体系.因此,该醇提物作为一种新型的中药杀菌剂有巨大
的开发和利用潜力.利用GCGMS联用技术,可从醇提物中鉴定出30种化学成分,这些物质中多为苯丙素类
物质,如βG细辛醚、αG细辛醚和顺式甲基异丁香油酚等,其中含量最高的物质为βG细辛醚(42.48%).这提示在
后续的研究中,可针对βG细辛醚等醇提物的主要化学成分进行.
关键词:石菖蒲;番茄;防御酶;GCGMS;βG细辛醚
中图分类号:Q946;S482.2  文献标识码:A  文章编号:1000G3142(2015)04G0597G06
EffectsofalcoholicextractsfromAcorustatarinowi
ondefensiveenzymesoftomato
SUNXueGDan1,HEMiao1,LUOYou1,LIUTieGQiu1,2,
LUYong3,ZENGXianGYin1,2∗
(1.ColegeofLifeSciences,SichuanAgriculturalUniversity,Ya’an625014,China;2.IsotopeResearchLaboratory ,Sichuan
AgriculturalUniversity,Ya’an625014,China;3.SichuanMasterAgriculturalDevelopmentCo.,Ltd,Nanchong637105,China)
Abstract:ThispaperaimstoexploreAcorustatarinowialcoholextractsasakindoftraditionalChineseherbalmediG
cinefungicideefectsontheplantdefenseenzymesystemoffungihost.Thetestmaterialsweretomatoseedlingsand
SichuanauthenticherbalmedicineA.tatarinowi.A.tatarinowialcoholextractswerepreparedbycoldGmaceration.
ThemainexperimentalmethodswerecolorimetricmethodandgaschromatographyGmassspectrometry.Theactivity
ofplantdefensiveenzymeswereexaminedbycolorimetricmethodafterthetreatmentoftomatoseedlingsusingdifG
收稿日期:2014G10G29  修回日期:2014G12G11
基金项目:四川省科技厅国际合作项目(2012HH0013);四川农业大学双支计划项目(00770107).
作者简介:孙雪丹(1993G),男,主要从事中药天然抗菌化合物研究,(EGmail)jijichenmo@163.com.
∗通讯作者:曾宪垠,博士,研究员,主要从事天然药物筛选及其生物学功能研究,(EGmail)xyzeng@sicau.edu.cn.
ferentconcentrationsofalcoholicextractsfromA.tatarinowi.AndthemainchemicalcompositionsofA.tatariG
nowiialcoholextractswereanalyzedbygaschromatographyGmassspectrometry.Theseresultsshowedthatwhenthe
concentrationofA.tatarinowialcoholextractsin0.04-0.08g􀅰mLG1,theactivityofPALwassignificantlyhigher
thancontrolgroupsonthefirstday.ThentheactivityofPALreducedwiththeincreaseoftheconcentrationofalcoG
holextract.AndattheoutsetoftheactivityofPODhadnosignificantdiferenceonconcentrationconditionof0.04-
0.16g􀅰mLG1.WhentheconcentrationofA.tatarinowialcoholextractsin0.64g􀅰mLG1,theactivityofPALwas
significantlylowerthancontrolgroups.AndtheactivityofPPOwassignificantlyhigherthancontrolgroupsonconG
centrationconditionof0.04-0.32g􀅰mLG1.Whenin0.64g􀅰mLG1,theactivityofPPOhadnosignificantdiference
withcontrolgroups.Butwiththeextensionoftime,thediferencebetweeneachgroupofthreeenzymeswasreduced.
Onthe4thday,theactivityofPALhadnosignificantdiferencesbetweentreatmentgroups.Whentheconcentration
ofalcoholextractsin0.04-0.64g􀅰mLG1,theactivityofPPOhadnosignificantdiferenceswithcontrolgroups.The
activityofPPOwassignificantlyhigherthancontrolgroupsonthescopeoftheother.Whenin0.08-0.32g􀅰mLG1,
theactivityofPODofvalueswerehigherthanthoseincontrolgroups.TheresultsshowedthatA.tatarinowialcoG
holextractscouldinfluencetheactivityofplantdefensiveenzymesandacertainconcentrationofA.tatarinowialcoG
holextractscouldenhanceitwithoutdamagingplantsdefenseenzymesystem.Therefore,A.tatarinowialcoholexG
tractsasanewtypeoftraditionalChineseherbalmedicinefungicideisahugepotentialofdevelopmentandutilization.
AndthirtychemicalcompositionswereidentifiedfromA.tatarinowialcoholicextractsbygaschromatographyGmass
spectrometry.ThemainchemicalcompositionofA.tatarinowialcoholextractswasphenylpropanoidssuchasβGasaG
rone,αGasaroneandcisGMethylisoeugenol.ThemostabundantchemicalcompositionwasβGasarone.Andthecontent
ofβGasaroneinA.tatarinowialcoholextractsaccountedfor42.48%.AndinfolowGupstudies,wecanstudythe
mainchemicalcompositionofA.tatarinowiialcoholextractslikeβGasarone.
Keywords:Acorustatarinowii;tomato;defensiveenzymes;GCGMS;βGasarone
  番茄(Lycopersiconesculentum)是我国重要的
蔬菜之一,但危害番茄较为严重的病害就有40余
种,每年给番茄种植业造成巨大损失(赵统敏等,
2011).其中,番茄灰霉病菌(Botrytiscinerea)是严
重影响番茄产量的重要病菌(Wangetal.,2010),
该病菌危害大,繁殖快,抗病育种困难(Decognetet
al.,2009),现主要依靠传统化学农药进行防治.随
着传统化学农药所带来的环境和健康问题日益凸
显,植物源农药因其环境友好型的特点成为了农药
发展的新热点(单承莺等,2011).
石菖蒲(Acorustatarinowii)为天南星科菖蒲
属多年生草本植物,味辛性温,具有保护神经细胞、
抗癌、抗惊厥、抗心律失常、抗病虫害等作用(Liet
al.,2010;王睿等,2013;Kimetal.,2003).刘铁秋
等(2013)发现石菖蒲醇提物对番茄灰霉病菌有显著
抑菌效果,这使得以石菖蒲为原料研发中药杀菌剂
成为可能.但关于该醇提取物对植物防御酶体系影
响的研究一直未见报道.鉴于此,本文测定经醇提
物处理后的番茄3种防御酶酶活并分析提取物的主
要成分,以探讨其用于番茄灰霉病防治的实际意义,
为石菖蒲中药杀菌剂的开发利用奠定科学的基础.
1 材料与方法
1.1材料
石菖蒲根茎((RhizomaAcoritatarinowii),购
自四川省成都市北京同仁堂总府路店;欧粉贝番茄
幼苗,购自山东寿光旺盛种业总公司.
1.2提取物制备
参考刘铁秋等(2014)的方法,制备原药浓度为
1g􀅰mLG1的醇提物.
1.3对植株防御酶的影响
选择生长旺盛且长势基本相同的欧粉贝番茄幼
苗进行试验.用浓度为0.04、0.08、0.16、0.32、0.64
g􀅰mLG1的石菖蒲醇提物均匀涂抹相同叶位的叶片
正反面,无菌水作对照,3次重复.处理后1、2、3、4
d进行取样测定.苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性测定
参考秦培文等(2011)的方法,以1min内 OD290增
加0.01为PAL的1个酶活力单位(U);多酚氧化酶
(PPO)活性测定参考邹芳斌等(2008)的方法,以1
min内 OD398增加0.01为 PPO 的1个活力单位
(U);过氧化物酶(POD)活性测定参考关丽杰等
895 广 西 植 物                  35卷
(2008)的方法,以每1minOD470值变化0.01为1
个酶活性单位(U).
1.4GCGMS条件
气相色谱条件:色谱柱为 AgilentDBG5 MS
DG;进样温度为250℃;柱温60℃保持5min,再以
20.0℃􀅰minG1速率升温至270℃,保持5min;溶剂
延迟为3.5min;载气为体积分数99.999%的高纯氦
气;柱前压60kPa;进样方式为GC自动进样器;进
样量为0.2μL,分流比为30∶1.质谱条件:EI离子
源温度为280℃;MS四极杆温度为150℃;电子能
量为70eV;接口温度为270℃;质量范围为30~
400amu.
1.5分析方法
1.5.1统计分析 采用PASWStatistics18软件进
行,显著性分析采用DMRT法(P<0.05).
1.5.2GCGMS分析 对总离子流图中的各峰进行质
谱扫描,用色谱数据处理系统,以峰面积归-法确定
各化学成分的相对含量.通过 NIST05质谱库检
索和有关质谱资料查阅进行成分定性分析.
2 结果与分析
2.1石菖蒲醇提物对番茄幼苗防御酶活性的影响
2.1.1对苯丙氨酸解氨酶(PAL)活性影响 图1显
示,第1天,当醇提物浓度为0.04~0.08g􀅰mLG1
时,PAL活性显著高于对照;浓度高于0.08g􀅰
mLG1时,PAL活性显著低于对照;第2天至第3天
PAL活性变化规律同第1天,即浓度为0.04~0.16
g􀅰mLG1时,PAL活性高于对照,浓度高于0.16g􀅰
mLG1时,PAL活性显著低于对照;到第4天,各处理
组PAL活性无显著差异仅数值上存在以上变化规
律.这表明石菖蒲醇提物处理初期,低浓度处理可
以激活PAL,高浓度处理有抑制PAL作用,但随着
时间的延迟PAL水平又恢复到正常水平.
2.1.2对多酚氧化酶(PPO)活性的影响 由图2可
知,第1天,当醇提物浓度为0.04~0.32g􀅰mLG1
时,PPO活性显著高于对照;当浓度为0.64g􀅰
mLG1时,PPO活性与对照无显著差异.第2天,当
浓度为0.04g􀅰mLG1时,PPO活性与对照无显著差
异;当浓度为0.08~0.32g􀅰mLG1时,PPO活性显著
高于对照;当浓度为0.64g􀅰mLG1时,PPO活性显
著低于对照.第3天,当浓度为0.04~0.08g􀅰
mLG1时,PPO 活性与对照无显著差异;当浓度为
图1 石菖蒲醇提物对番茄幼苗
苯丙氨酸解氨酶活性影响
Fig.1 InfluenceofA.tatarinowiethanol
extractsonPALactivityoftomatoseedlings
图2 石菖蒲醇提物对番茄幼苗多酚氧化酶活性影响
Fig.2 InfluenceofA.tatarinowiethanolextracts
onPPOactivityoftomatoseedlings
图3 石菖蒲醇提物对番茄幼苗过氧化物酶活性影响
Fig.3 InfluenceofA.tatarinowiethanolextractson
PODactivityoftomatoseedlings
0.16~0.32g􀅰mLG1时,PPO活性显著高于对照;当
浓度为0.64g􀅰mLG1时,PPO活性显著低于对照.
9954期         孙雪丹等:石菖蒲醇提物对番茄幼苗防御酶影响
图4 石菖蒲醇提物总离子流色谱图
Fig.4 TICofA.tatarinowiethanolextracts
表1 石菖蒲醇提物成分分析
Table1 AnalysisresultsofcomponentofethanolextractsfromA.tatarinowii
序号
No.
保留时间
RT(min)
化合物Compound
分子式
Molecular
formula
分子量
Molecular
weight
相对含量
Relative
content(%)
1 3.85 乙缩醛Acetal C6H14O2 118 0.10
2 4.42 (2S,3S)G(+)G2,3G丁二醇 (2S,3S)G(+)G2,3GButanediol C4H10O2 90 0.10
3 4.54 丙三醇1,2,3GPropanetriol C4H10O2 90 0.23
4 7.42 桉叶油醇Cineole C3H8O3 92 0.15
5 8.80 芳樟醇Linalool C10H18O 154 0.02
6 9.91 左旋樟脑lGCamphor C10H18O 154 0.06
7 10.88 4G萜烯醇TerpinenG4Gol C10H16O 152 0.29
8 11.29 2G茨醇Borneol C10H18O 154 0.39
9 11.41 DLG异冰片醇DLGIsoborneol C10H18O 154 0.06
10 14.69 甲基丁香酚 Methyleugenol C11H14O2 178 2.30
11 15.46 顺式甲基异丁香油酚cisGMethylisoeugenol C11H14O2 178 4.59
12 16.05 反式甲基异丁香油酚transGMethylisoeugenol C11H14O2 178 0.84
13 16.26 βG石竹烯βGcaryophylene C15H24 204 0.87
14 16.51 d一杜松烯dGcadinene C15H24 204 3.31
15 16.58 喇叭茶萜醇ledol C15H26O 222 0.72
16 16.95 ɑG细辛醚ɑGAsarone C12H16O3 208 7.04
17 17.31 吉玛烯BgermacreneB C15H24 204 2.14
18 17.58 βG细辛醚βGasarone C12H16O3 208 42.48
19 17.78 二羟基G异菖蒲二醇dehydroxyGisocalamendiol C15H24O 220 0.57
20 18.19 (2E,6E)G金合欢醇 (2E,6E)Gfarnesol C15H26O 222 1.97
21 18.35 γG细辛醚γGAsarone C12H16O3 208 4.05
22 18.63 tauG紫穗槐醇tauGmuurolol C15H26O 222 1.04
23 18.80 tauG杜松醇tauGcadinol C15H26O 222 3.66
24 18.91 ɑG杜松醇ɑGcadinol C15H26O 222 3.79
25 19.84 菖蒲酮shyobunone C15H24O 220 2.58
26 20.27 柏木G9G酮cedranG9Gone C15H24O 220 0.41
27 20.33 桉油烯醇(G)GSpathulenol C15H24O 220 0.52
28 21.63 棕榈酸Palmiticacid C16H32O2 256 3.01
29 23.44 亚油酸Linoleicacid C18H32O2 280 1.65
30 26.17 己二酸二辛酯Dioctyladipate C22H42O4 370 0.15
第4天,当浓度在0.08~0.32g􀅰mLG1时,PPO活性
均显著高于对照;当浓度为0.04g􀅰mLG1和0.64
g􀅰mLG1时,PPO活性与对照无显著差异.以上表
明除第1天外低浓度醇提物处理对PPO活性无显
006 广 西 植 物                  35卷
著影响,而高浓度醇提物处理在初期有抑制PPO作
用,到了第4天抑制作用消失.
2.1.3对过氧化物酶(POD)活性影响 由图3可知,
第1天,当醇提物浓度为0.04~0.16g􀅰mLG1时,
POD活性与对照无显著差异;当浓度为0.32g􀅰
mLG1时,POD活性显著地高于对照;当浓度为0.64
g􀅰mLG1时,POD活性显著低于对照.第2天,当浓
度为0.04~0.32g􀅰mLG1时,POD活性显著高于对
照;当浓度为0.64g􀅰mLG1时,POD活性与对照无
显著差异.第3天,当浓度为0.04~0.08g􀅰mLG1
时,POD活性与对照无显著差异;当浓度为0.16~
0.32g􀅰mLG1时,POD活性显著高于对照;当浓度
为0.64g􀅰mLG1时,POD活性显著低于对照.第4
天,当浓度为0.04g􀅰mLG1时,POD活性显著高于
对照;当浓度为0.08~0.32g􀅰mLG1时,POD活性
数值上均高于对照;浓度为0.64g􀅰mLG1时,POD
活性显著低于对照.这表明高度醇提物处理有抑制
POD的作用且抑制作用可持续,而低浓度处理后第
4天仍可使POD活性保持在一个较高水平.
2.2GCGMS分析
对石菖蒲醇提物进行 GCGMS测定,获得其总
离子流色谱图(图4).从石菖蒲醇提物中共鉴定30
种化学成分(表4),占提取物总量的89.09%.其中
主要成分为βG细辛醚(42.48%)、ɑG细辛醚(7.04%)、
顺式甲基异丁香油酚(4.59%)、γG细辛醚(4.05%)和
αG杜松醇(3.79%)等.
3 讨论
防御酶活性增强是诱导抗病性产生的重要机制
之一(Lathaetal.,2009).在病原微生物侵染过程
中POD、PPO、PAL等防御酶都为保护植物体起着
重要的作用.POD主要在木质素生物合成过程中
催化 H2O2分解而发挥作用;PPO主要参与酚的氧
化,形成对病菌毒性较高的醌类物质,从而构成保护
性屏蔽而使细胞免受病菌的侵害;PAL则是木质素
与植保素沿苯丙烷类代谢途径合成的关键调节酶
(Grosskopfetal.,1990;Liuetal.,2005;刘姬艳等,
2010;张绍珊等,2010).各浓度的石菖蒲醇提物处
理初期,3种防御酶活总体表现为 Hormesis效应
(高抑低促).但随着时间的推移,不同防御酶活性
变化有很大差异.其中PAL和PPO这两种酶的大
多数处理组都在第4天恢复至正常水平.但在第4
天时,POD活性依然表现为 Hormesis效应.可见
随时间延长石菖蒲醇提物对PAL和PPO并无明显
影响但对POD有明显诱导或抑制作用,从而引起
植株本身抗病性的变化.
本研究中石菖蒲醇提物主要化学成分为苯丙素
类,如细辛醚、甲基异丁香油酚,其中相对含量最高
的物质为βG细辛醚.这与林双峰等(2004)的研究结
果一致.除了苯丙素类物质外,石菖蒲醇提物还检
出多种单萜类和倍半萜类物质,如石竹烯、杜松烯
等.但石菖蒲中含量较少的成分类型,在不同文献
中结果存在较大差异,这可能与中药的道地性有关
(房敏峰等,2009;刘春海等,2006).而石菖蒲醇提
物中具体哪些物质影响番茄防御酶活性及其影响机
制,目前仍有待进一步研究.
参考文献:
DecognetV,RavettiF,MartinC,etal.2009.ImprovedleafprunG
ingreducesdevelopmentofstemcankerscausedbygreymould
ingreenhousetomatoes[J].AgronSustDev,30(2):465-472
FangMF(房敏峰),ZhangWJ(张文娟),LiYF(李云峰),etal.
2009.AnalysisoffatGsolublecomponentsfromdrugmatched
pairofPolygalatenuifolia wild.and Acorustatarinowii
Schott.byGCGMS(GCGMS分析药对远志G石菖蒲中的脂溶性
成分)[J].ChinPharm(中国药业),18(23):3-5
GrosskopfDG,FelixG,BolerT.1990.KG252ainhibitstheresponse
oftomatocelstofungalelicitorsinvivoandtheirmicrosomal
proteinkinaseinvitro[J].FEBSLet,275(1):177-180
GuanLJ(关丽杰),BaiK(白坤),LiHY(李海燕),etal.2008.
EffectsofPsoraleacorylifoliaL.extractonthedefensiveenG
zymesofcucumber(补骨脂提取物对黄瓜体内防御酶系的影
响)[J].ChinJBiolContr(中国生物防治),24(S1):71-75
KimS,ParkC,OhhM,etal.2003.ContactandfumigantactiviG
tiesofaromaticplantextractsandessentialoilsagainstLasioG
dermaserricorne(Coleoptera:anobidae)[J].JStorProdRes,
39(1):11-19
KimS,RohJ,Kim D,etal.2003.Insecticidalactivitiesof
aromaticplantextractsandessentialoilsagainstSitophilus
oryzaeandCallosobruchuschinensis[J].JStorProdRes,39
(3):293-303
LathaP,anandT,RagupathiN,etal.2009.antimicrobialactivity
ofplantextractsandinductionofsystemicresistanceintomato
plantsbymixturesofPGPRstrainsandZimmuleafextractaG
gainstalternariasolani[J].BiolContr,50(2):85-93
LiC,XingG,Dong M,etal.2010.BetaGasaroneprotection
againstbetaamyloidinducedneurotoxicityinPC12celsviaJNK
signalingandmodulationofBclG2familyproteins[J].EurJ
Pharmacol,635(1):96-102
LinSF(林双峰),WeiG(魏刚),HeB(何斌),etal.2004.GCGMS
AnalysisofalcoholicextractsfromAcorustatarinowi (石菖蒲醇
提液主要化学成分GCGMS分析)[J].TraditChinDrugRes&
ClinPharmacol(中药新药与临床药理),15(2):116-118
LiuCH(刘春海),LiuXJ(刘西京),YangHS(杨华生).2006.
1064期         孙雪丹等:石菖蒲醇提物对番茄幼苗防御酶影响
GCGMSanalysisofessentialoilsfromAcorustatarinowiiSchott.
(石菖蒲挥发油的GCGMS分析)[J].ChinArchTrandChin
Med(中医药学刊),24(7):1280-1281
LiuH,JiangW,BiY,etal.2005.PostharvestBTHtreatment
inducesresistanceofpeach(Prunuspersica)fruittoinfection
byPeniciliumexpansumandenhancesactivityoffruitdefense
mechanisms[J].PostharvestBiolTechnol,35(3):263-269
LiuJY(刘姬艳),LiuRD(刘如东),HuDH(胡定慧).2010.
EffectsofwaterextractofSophoraondefensivekeyenzymes
activiticesinwheatleaves(苦参提取物对小麦防御性关键酶活
性的影响)[J].JHangzhouNormUniv:NatSciEd(杭州师
范大学学报􀅰自然科学版),9(5):369-371
LiuTQ(刘铁秋),SunXD(孙雪丹),HeM(何苗),etal.2013.
Inhibitoryeffecsof20speciesofSichuanautheicherbalmedicine
onmycelialgrowthofBotrytiscinerea(20种川产道地药材对
番茄灰霉病的抑菌作用研究)[J].SciTechnolFoodInd(食品
工业科技),34(24):114-119
LiuTQ(刘铁秋),SunXD(孙雪丹),LuFR(卢发瑞),etal.2014.
Inhibitoryeffect on Botrytiscinerea and optimization of
extractionprocedureofantifungalsubstancesfrom rhizome
acorustatarinowii(石菖蒲提取物的抑菌效果及其提取工艺的
优化)[J].ChinJBiol(中国生物制品学杂志),27(1):94-99
QinPW(秦培文),SongWD(宋文东),LiXF(李晓菲),etal.
2011.TheinhibitionofseabrineonAlternariasolaniandits
effectsondefenseenzymesoftomatoleaves(海盐苦卤对番茄早
疫病菌的抑制及其对番茄叶片防御酶系的影响)[J].Chin
AgricSciBull(中国农学通报),27(16):182-185
ShanCY(单承莺),MaSH(马世宏),ZhangWM(张卫明).2011.
Reviewonresearchanddevelopmentofbotanicalpesticidesin
China(我国植物源农药研究进展)[J].ChinWildPlant
Resour(中国野生植物资源),30(6):14-18
WangR(王睿),FeiHX(费洪新),LiXM(李晓明),etal.2013.
Researchprogressonchemicalcompositionsandpharmacological
actionsofAcorustatarinowiiSchott(石菖蒲的化学成分及药
理作用研究进展)[J].ChinArchTradChinMed(中华中医药
学刊),31(07):1606-1610
WangYF,YuT,XJD,etal.2010.Biocontrolofpostharvestgray
moldofcherrytomatoeswiththemarineyeastRhodosporidium
paludigenum[J].BiolContr,53(2):178-182
ZhangSS(张绍珊),ChenJJ(陈娇娇),YangXP(杨晓萍).2013.InG
duction of Phenylalanine ammonium Lyase, Polyphenol
OxidaseandPeroxidaseinpostharvestpeachfruitbyteaextract
(茶叶提取物对采后桃果苯丙氨酸解氨酶、多酚氧化酶、过氧化
物酶活性的诱导)[J].FoodSci(食品科学),34(10):304-307
ZhaoTM(赵统敏),YuWG(余文贵),ZhaoLP(赵丽萍),etal.
2011.ResearchprogressinbreedingoftomatoresistancetoBotG
rytiscinerea(番茄抗灰霉病育种研究进展)[J].JiangsuJ
AgricSci(江苏农业学报),27(5):1141-1147
ZouFB(邹芳斌),SiLT(司龙亭),LiX(李新),etal.2008.The
relationbetweentheresistanceofthecucumberwiltandtheacG
tivitiesofseveralenzymeindefensesystem(黄瓜枯萎病抗性与
防御系统几种酶活性关系的研究)[J].ActaAgricBorSin(华
北农学报),23(03):181-184
􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰􀤰
(上接第563页Continuefrompage563)
 miccharactersinsugarcanepopulationincontrastingenvironment
anddifferentcropyear[J].SugarcIntern,4:6-12
SilvaMDA,JifonJL,DasilvaJAG,etal.2012.Relationships
betweenphysiologicaltraitsandproductivityofsugarcaneinreG
sponsetowaterdeficit[J].JAgricSci,7:1-15
SelviA,NairNV,BalasundaramN,etal.2003.Evaluationofmaize
microsatelitemarkersforgeneticdiversityanalysisandfingerG
printinginsugarcane[J].Genome,46:394-403
Salem KFM,ElGZanatyAM,EsmailRM.2008.Assessingwheat
(Triticum aestivum L.)geneticdiversityusingmorphological
charactersandmicrosatalitemarkers[J].WorldJAgricSci,4
(5):538-544
SteelRGD,TorrieJH.1980.PrinciplesandProceduresofStatistics
[M].NewYork:McGrawHilBookCo.Inc.
SajadM,KhanFA.2009.GeneticdiversityamongsugarcanecultiG
varsinPakistan,AmericanGEurasianJ[J].Agric& Environ
Sci,6(6):730-736
SoomroAF,JunejoS,AhmedA,etal.2006.Evaluationofdifferent
promising sugarcane varieties for some quantitative and
qualitativeattributesunderThatta(Pakistan)conditions[J].InG
ternJAgric&Biol,8(2):195-197
SmiulahFAK,AfzalA,AbdulahIU,etal.2013.Geneticdiversity
assessmentinsugarcaneusingprincipalcomponentanalysis
(PCA)[J].InternJModAgric,2(1):34-38
VermaSK,SachanJN.2000.GeneticdivergenceinIndainmustard
BrassicajunceaCzernandCoss[J].CropRes(Hisar),19(2):
271-276
WaclawovskyAJ,SatoPM,LembkeCG,etal.2010.Sugarcanefor
bioenergyproduction:anassessmentofyieldandregulationofsuG
crosecontent[J].PlantBiotechnolJ,8:263-276
WagihME,MusaY,AlaA.2004.FundamentalbotanicalandagroG
nomicalcharacterizationofsugarcanecultivarsforclonalidentifiG
cationandmonitoringgeneticvariations[J].SugarTechnol,6
(3):127-140
WagnerGP,SchwenkK.2000.EvolutionarilystableconfiguraG
tions:functionalintegrationandtheevolutionofphenotypicstaG
bility[J].EvolBiol,31:155-217
XueW.2006.DataAnalysisBasedonSPSS[M].Beijing:theChiG
nesePeople′sUniversityPress,5:359-385
YangLT,MoFL,ZhuQZ,etal.2012.EffectofvinasseappliG
cationonsugarcanegrowthandyield[J].JSouthernAgric,
43(1):18-21
206 广 西 植 物                  35卷