全 文 ：书收稿日期：２０１４－０９－０４
基金项目：辽宁省药品检验检测院资助项目（２０１３年）
作者简介：郭晓璐（１９８９－），女（满族），辽宁抚顺人，硕士研究生，Ｅ－ｍａｉｌ　ｇｕｏｘｉａｏｌｕ０１１１＠１６３．ｃｏｍ；＊通讯作者：袁丹
（１９６３－），女（汉族），辽宁丹东人，教授，博士，主要从事传统药物质量标准化分析技术和体内药物动力学研究，Ｔｅｌ．
０２４－２３９８６５０２，Ｅ－ｍａｉｌ　ｙｕａｎｄａｎ＿ｋａｍｐｏ＠１６３．ｃｏｍ。
文章编号：１００６－２８５８（２０１５）０８－０６１８－０５　 ＤＯＩ：１０．１４０６６／ｊ．ｃｎｋｉ．ｃｎ２１－１３４９／ｒ．２０１５．０８．００７
刺五加果ＴＬＣ鉴别及原儿茶酸、
绿原酸、金丝桃苷的含量测定
郭晓璐，师子明，齐　文，张国哲，袁　丹＊
（沈阳药科大学 中药学院，辽宁 沈阳１１００１６）
摘要：目的 建立刺五加果的ＴＬＣ定性鉴别法和原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷的 ＨＰＬＣ色谱含量测
定法。方法 以金丝桃苷为对照品，采用氯仿－甲醇－水－冰醋酸（体积比为６５∶３５∶４∶１）为展开剂，在
ＵＶ　２５４ｎｍ下检视，对刺五加果进行薄层色谱法定性鉴别。采用 Ｈｙｐｅｒｓｉｌ　ＯＤＳ２ 柱（１５０ｍｍ×
４．６ｍｍ，５μｍ），冰醋酸－水（体积比为１∶９９）和甲醇－乙腈（体积比为１∶１）为流动相，在２５４ｎｍ检测
波长下，以 ＨＰＬＣ法测定刺五加果中原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷的含量。结果 刺五加果薄层色
谱中，金丝桃苷斑点清晰、分离度好。ＨＰＬＣ定量分析中，原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷线性范围分
别为２．０～５０．０ｍｇ·Ｌ－１（ｒ＝０．９９９　８）、８．０～２００ｍｇ·Ｌ－１（ｒ＝０．９９９　６）、２．０～５０．０ｍｇ·Ｌ－１（ｒ＝
０．９９９　５），平均回收率分别为９９．４％（ＲＳＤ＝２．７％）、１００．９％（ＲＳＤ＝１．８％）和９８．１％（ＲＳＤ＝
２．４％）。结论 该方法可用于刺五加果的质量控制。
关键词：刺五加果；金丝桃苷；绿原酸；原儿茶酸；高效液相色谱法；薄层色谱法
中图分类号：Ｒ　２８　　　文献标志码：Ａ
　　刺五加果为五加科植物刺五加 Ａｃａｎｔｈｏ－
ｐａｎａｘ　ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ（Ｒｕｐｒ．ｅｔ　Ｍａｘｉｍ．）Ｈａｒｍｓ的干
燥成熟果实。历代本草未见有关刺五加果的记
载，但其在民间作为镇定安神药被广泛应用［１］。
刺五加果主要含有机酸类［２］、黄酮类［３］、皂苷
类［４］、萜类［５］、苯丙素类［２］等成分。其中金丝桃苷
具有镇痛［６］、增强免疫力［７］等作用，绿原酸具有抗
菌、抗疲劳［８］等作用，原儿茶酸具有降低心肌耗氧
量、缓解心绞痛［９］作用等。目前市场已有刺五加
果实颗粒剂、口服液等保健食品开发上市。关于
刺五加果的质量评价方法研究，已有的定量分析
方法有：ＨＰＬＣ法测定其中异嗪皮啶［１０］、金丝桃
苷［１１］、槲皮素鼠李糖苷［１２］或齐墩果酸和熊果
酸［１３］等单一或两个指标成分的含量，以及三波
长－分光光度法测定其中总黄酮的含量［３］等，ＴＬＣ
鉴别方法尚未见文献报道。为此，本文作者研究
了刺五加果的ＴＬＣ定性鉴别法，以及高效液相色
谱同时测定刺五加果中原儿茶酸、绿原酸、金丝桃
苷（结构式见图１）等３种活性成分的含量测定
法，为刺五加果的质量标准化研究提供科学依据。
Ｆｉｇ．１　Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅｓ　ｏｆ　ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ（１），ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ（２）ａｎｄ　ｈｙｐｅｒｉｎ（３）
图１　原儿茶酸（１）、绿原酸（２）和金丝桃苷（３）的结构式
第３２卷 第８期
２　０　１　５年８月
沈　阳　药　科　大　学　学　报
Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｓｈｅｎｙａｎｇ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ
Ｖｏｌ．３２　　Ｎｏ．８
Ａｕｇ．２０１５　ｐ．６１８
１　仪器与材料
Ｓｈｉｍａｄｚｕ　ＬＣ－２０１０ＡＨＴ 高效液相色 谱 仪、
ＣＬＡＳＳ－ＶＰ色谱工作站（日本Ｓｈｉｍａｄｚｕ公司），
ＡＧ－２４５电子天平（瑞士 Ｍｅｔｔｌｅ－Ｔｏｌｅｄｏ公司），
ＫＱ－２００ＫＤＢ超声波清洗器（昆山市超声仪器有
限公司），硅胶ＧＦ２５４薄层板（青岛海洋化工厂）。
原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷对照品（中国药
品生 物 制 品 检 定 所，批 号 分 别 为 １１０８０９－
２００６０４、１１０７５３－２００２１２、１５２１－２００２０２），甲醇、
乙腈（色谱纯，山东禹王实业有限公司禹城化工
厂），水为重蒸水，其他试剂均为市售分析纯。
１１批刺五加果药材采集于辽宁、吉林和黑龙
江等地，或购于三地的药材市场，由沈阳药科大学
袁丹教授鉴定为刺五加Ａｃａｎｔｈｏｐａｎａｘ　ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ
（Ｒｕｐｒ．ｅｔ　Ｍａｘｉｍ．）Ｈａｒｍｓ的果实。
２　方法与结果
２．１　薄层色谱鉴别
取刺五加果干燥品粉末１ｇ，加甲醇２０ｍＬ，
超声（功率１００Ｗ，频率４０ｋＨｚ）提取２０ｍｉｎ，滤
过，滤液蒸干，残渣加水２０ｍＬ使溶解，用石油醚
（６０～９０℃）振摇萃取２次，每次２０ｍＬ，弃去石
油醚层，再用乙酸乙酯振摇萃取 ２ 次，每次
２０ｍＬ，合并乙酸乙酯液，蒸干，残渣加甲醇
０．４ｍＬ使溶解，作为供试品溶液。另取金丝桃苷
对照品，加甲醇制成每１ｍＬ含１ｍｇ的溶液，作
为对照品溶液。照薄层色谱法（《中华人民共和国
药典》２０１０年版附录ⅥＢ）试验，吸取上述两种溶
液各５．０、２．５μＬ，分别点于同一硅胶 ＧＦ２５４薄层
板上，以氯仿－甲醇－水－冰醋酸 （体积比为６５∶
３５∶４∶１）为展开剂，展开，取出，晾干，置紫外光灯
（２５４ｎｍ）检视。供试品色谱中，在与对照品色谱
相应的位置上，显相同颜色的斑点，结果见图２。
１—Ｈｙｐｅｒｉｎ；２—１２—Ａ．ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ　ｆｒｕｉｔｓ
Ｆｉｇ．２　ＴＬＣ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍ　ｏｆ　ｈｙｐｅｒｉｎ　ｉｎ　Ａ．ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓｆｒｕｉｔｓ
图２　刺五加果中金丝桃苷的薄层色谱图
２．２　含量测定
２．２．１　色谱条件
色 谱 柱：Ｈｙｐｅｒｓｉｌ　ＯＤＳ２ 柱 （１５０ ｍｍ ×
４．６ｍｍ，５μｍ）；流动相：Ａ相为体积分数为１％
的冰醋酸水溶液，Ｂ相为体积分数为５０％的甲醇
乙腈溶液，线性梯度洗脱，洗脱程序为０～１３ｍｉｎ：
２％ ～１５％ Ｂ，１３～３５ ｍｉｎ：１５％ ～２６％ Ｂ，
３５～４０ｍｉｎ：２６％～５０％Ｂ，４０～４５ｍｉｎ：５０％～
２％Ｂ，４５～５０ｍｉｎ：２％～２％Ｂ；流速：１．０ｍＬ·ｍｉｎ－１；
柱温：４０℃；检测波长：２５４ｎｍ；进样体积：１０μＬ。
２．２．２　对照品溶液制备
取经五氧化二磷减压干燥２４ｈ的原儿茶酸、
绿原酸、金丝桃苷对照品适量，精密称定，加甲醇
溶解并定容，摇匀，制成每１ｍＬ 含原儿茶酸
５０μｇ、绿原酸２００μｇ、金丝桃苷５０μｇ的混合溶
液，作为对照品储备液。
２．２．３　供试品溶液制备
取各刺五加果干燥品粉末约０．２ｇ，精密称
定，置具塞锥形瓶中，精密加入体积分数为５０％
的甲醇溶液１０ｍＬ，密塞，称定重量，超声处理
３０ｍｉｎ，放冷，用体积分数为５０％甲醇溶液补足
减失的重量，摇匀。取上清液用０．４５μｍ微孔滤
膜滤过，取续滤液，作为供试品溶液。
２．２．４　色谱系统适用性试验
在上述色谱条件下，理论塔板数以原儿茶酸、
绿原酸、金丝桃苷计均不小于１　７００，供试品溶液
中原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷峰形良好，与相邻
色谱峰均达到基线分离。典型色谱图见图３。
２．２．５　线性关系考察
精密吸取对照品储备溶液０．２、０．５、１．０、
２．５、５．０ｍＬ，分别置５ｍＬ量瓶中，加甲醇定容，
摇匀。分别精密吸取上述溶液各１０μＬ，按上述
色谱条件进样分析，以对照品质量浓度 ［ρ／
（ｍｇ·Ｌ－１）］为横坐标，峰面积（Ａ）为纵坐标，绘制
标准曲线。回归方程分别为原儿茶酸：Ａ＝
４．３５１　９×１０４ρ＋６．６３１×１０
３（ｒ＝０．９９９　８）；绿原
酸：Ａ＝２．２４４　１×１０４ρ ＋ ４．１８２×１０
３ （ｒ＝
０．９９９　６）；金 丝 桃 苷：Ａ ＝３．４８３　２×１０４ρ ＋
１．０１２　７×１０４（ｒ＝０．９９９　５）。结果表明原儿茶酸、
绿原酸、金丝桃苷质量浓度分别在２．００～５０．０、
８．００～２００和２．００～５０．０ｍｇ·Ｌ－１内与峰面积呈
良好线性关系。
９１６第８期 郭晓璐等：刺五加果ＴＬＣ鉴别及原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷的含量测定
１—Ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ；２—Ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ；３—Ｈｙｐｅｒｉｎ
Ｆｉｇ．３　ＨＰＬＣ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍｓ　ｏｆ　ｓｔａｎｄａｒｄ（ａ）ａｎｄ　ｓａｍｐｌｅ（ｂ）
图３　对照品（ａ）及样品（ｂ）的ＨＰＬＣ色谱图
２．２．６　精密度试验
精密吸取对照品溶液１０μＬ，按上述色谱条
件连续进样６次，测定峰面积。原儿茶酸、绿原
酸、金丝桃苷峰面积的 ＲＳＤ 值分别为０．４％、
０．６％和０．５％。结果表明仪器精密度良好。
２．２．７　稳定性试验
取供试品溶液置室温下，分别于０、２、４、６、８、
１２、２４ｈ，精密吸取１０μＬ，按上述色谱条件测定
峰面积，计算原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷峰面积
的ＲＳＤ值分别为２．９％、０．９％、１．４％。结果表
明供试品溶液在室温下２４ｈ内稳定。
２．２．８　重复性试验
取同一批刺五加果粉末，按上述供试液制备
方法制得６份平行供试品溶液，依法测定，计算原
儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷含量的ＲＳＤ值分别为
２．５％、１．９％、２．５％。结果表明方法重复性良好。
２．２．９　回收率试验
取已知含量的刺五加果 （Ｎｏ．４）粉末约
０．１ｇ，精密称定，共６份，分别精密加入同一质量
浓度对照品适量，按上述供试液制备方法制备供
试品溶液，依法测定，计算原儿茶酸、绿原酸、金丝
桃苷的加样回收率，结果见表１。
Ｔａｂｌｅ　１　Ｔｈｅ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｏｆ　ｒｅｃｏｖｅｒｙ（ｎ＝６）
表１　回收率试验结果（ｎ＝６）
Ｍａｒｋｅｒ　ｃｏｍｐｏｎｅｎｔ　 ｍｏｒｉｇｉｎａｌ／ｍｇ　 ｍａｄｄｅｄ／ｍｇ　 ｍｏｂｓｅｒｖｅｄ／ｍｇ　Ｒｅｃｏｖｅｒｙ／％ 珚ｘ／％ ＲＳＤ／％
Ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ　 ０．０２７　０　 ０．０２８　０　 ０．０５５　９　 １０３．２　 ９９．４　 ２．７
０．０２７　０　 ０．０２８　０　 ０．０５４　８　 ９９．３
０．０２７　０　 ０．０２８　０　 ０．０５４　１　 ９６．８
０．０２７　０　 ０．０２８　０　 ０．０５４　１　 ９６．８
０．０２７　０　 ０．０２８　０　 ０．０５４　５　 ９８．２
０．０２７　０　 ０．０２８　０　 ０．０５５　５　 １０１．８
Ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　 ０．１２２　０　 ０．１２５　０　 ０．２４６　９　 ９９．９　 １００．９　 １．８
０．１２２　０　 ０．１２５　０　 ０．２４８　６　 １０１．３
０．１２２　０　 ０．１２５　０　 ０．２５０　６　 １０２．９
０．１２２　０　 ０．１２５　０　 ０．２４８　４　 １０１．１
０．１２２　０　 ０．１２５　０　 ０．２４９　７　 １０２．２
０．１２２　０　 ０．１２５　０　 ０．２４４　１　 ９７．７
Ｈｙｐｅｒｉｎ　 ０．０２３　０　 ０．０２２　０　 ０．０４４　０　 ９５．５　 ９８．１　 ２．４
０．０２３　０　 ０．０２２　０　 ０．０４４　７　 ９８．６
０．０２３　０　 ０．０２２　０　 ０．０４４　２　 ９６．４
０．０２３　０　 ０．０２２　０　 ０．０４４　６　 ９８．２
０．０２３　０　 ０．０２２　０　 ０．０４５　５　 １０２．３
０．０２３　０　 ０．０２２　０　 ０．０４４　５　 ９７．７
０２６ 沈　阳　药　科　大　学　学　报 第３２卷　
２．２．１０　供试品含量测定
取各刺五加果样品，按上述供试液制备方法
制备供试品溶液，依法测定，计算各指标成分的含
量，结果见表２。
Ｔａｂｌｅ　２　Ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｍａｒｋｅｒ　ｃｏｍｐｏｕｎｄｓ　ｉｎ　Ａ．ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ　ｆｒｕｉｔｓ
表２　刺五加果中各指标成分的含量
Ｓａｍｐｌｅ　Ｎｏ ． Ｍａｒｋｅｔ／Ｃｕｌｔｉｖａｔｅｄ　ａｒｅａ
ｗ／％（×１０－２）
Ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ　 Ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　 Ｈｙｐｅｒｉｎ
１ Ｌｉａｏｎｉｎｇ　Ｓｈｅｎｙａｎｇ ２．２　 ８．７　 ２．９
２ Ｌｉａｏｎｉｎｇ　Ｓｈｅｎｙａｎｇ １．５　 １０．０　 ３．１
３ Ｊｉｌｉｎ　Ｃｈａｎｇｂａｉｓｈａｎ　 １．６　 ４．８　 ３．１
４ Ｌｉａｏｎｉｎｇ　Ｓｈｅｎｙａｎｇ ２．７　 １２．２　 ２．３
５ Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ｚｈａｎｇｇｕａｎｇｃａｉｌｉｎｇ　 ２．７　 １８．１　 ２．７
６ Ｊｉｌｉｎ　Ｃｈａｎｇｂａｉｓｈａｎ　 ２．１　 ７．３　 １．４
７ Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ｈａｉｌｉｎ　 ２．４　 ２３．６　 ３．３
８ Ｊｉｌｉｎ　Ｆｕｓｏｎｇ ２．６　 １０．３　 ２．２
９ Ｈｅｉｌｏｎｇｊｉａｎｇ　Ｈａｉｌｉｎ　 ２．０　 １０．４　 ３．１
１０ Ｊｉｌｉｎ　Ｃｈａｎｇｂａｉｓｈａｎ　 １．５　 ８．０　 ４．３
１１ Ｊｉｌｉｎ　Ｃｈａｎｇｂａｉｓｈａｎ　 １．０　 ３．５　 １．０
３　讨论
ａ．《中华人民共和国药典》２０１０年版收载的
刺五加为其干燥根和根茎或茎，其薄层色谱鉴别
以异嗪皮啶为对照品，三氯甲烷－甲醇（体积比为
１９∶１）为展开剂［１４］。然而，刺五加果药材提取液
中，异嗪皮啶含量较少，上述薄层色谱鉴别方法并
不适用。因此，以含量较高的金丝桃苷作对照品，
氯仿－甲醇－水－冰醋酸（体积比为６５∶３５∶４∶１）为展
开剂，１１批样品的薄层色谱中，金丝桃苷斑点明
显，重现性好。
ｂ．本文作者考察了不同提取方法（超声波、
热回流）、不同提取溶剂（体积分数分别为５０％、
７５％、１００％的甲醇溶液）和不同超声提取时间（１５、
３０、４５ｍｉｎ）等提取条件，结果表明用体积分数为
５０％的甲醇超声提取３０ｍｉｎ的提取效率最高。
ｃ．分析结果显示，不同批次的刺五加果中原
儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷的含量质量分数分别是
０．０１０％～０．０２７％、０．０３５％～０．２３６％和０．０１０％～
０．０４３％。其中绿原酸含量最大，但不同批次样品
中含量差别较大。金丝桃苷具有镇痛、解痉［６］、保
护心脑血管［１５］、增强免疫力［７］等多种药理学活
性，是刺五加果的主要活性成分之一。因此，绿原
酸和金丝桃苷应作为刺五加果品质评价的主要指
标成分。
ｄ．近年来，刺五加果的食用和药用价值得到
了较广泛的开发，但对其定性定量分析方法的研
究较少。本文作者建立了刺五加果的ＴＬＣ定性
鉴别法，并采用 ＨＰＬＣ法，建立了同时测定刺五
加果中原儿茶酸、绿原酸、金丝桃苷等３种成分的
定量分析方法。本研究结果对国产刺五加果药材
的质量评价具有一定的参考价值，也为其综合质量
评价及质量标准化的研究提供了详实的实验数据。
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ＴＬＣ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　Ａｃａｎｔｈｏｐａｎａｘ　ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ
ｆｒｕｉｔｓ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｐｒｏｔｏｃａｔｅ－
ｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ，ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ａｎｄ　ｈｙｐｅｒｉｎ
ＧＵＯ　Ｘｉａｏ－ｌｕ，ＳＨＩ　Ｚｉ－ｍｉｎｇ，ＱＩ　Ｗｅｎ，ＺＨＡＮＧ　Ｇｕｏ－ｚｈｅ，ＹＵＡＮ　Ｄａｎ＊
（Ｓｃｈｏｏｌ　ｏｆ　Ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ　Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｍｅｔｅｒｉａ　Ｍｅｄｉｃａ，Ｓｈｅｎｙａｎｇ　Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｓｈｅｎｙａｎｇ
１１００１６，Ｃｈｉｎａ）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ　Ｔｏ　ｄｅｖｅｌｏｐ　ＴＬＣ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ｆｏｒ　Ａｃａｎｔｈｏｐａｎａｘｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓｆｒｕｉｔｓ　ａｎｄ
ｔｈｅ　ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｆ　ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ，ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ａｎｄ　ｈｙｐｅｒｉｎ　ｂｙ　ＨＰＬＣ．Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ａ．
ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ　ｆｒｕｉｔｓ　ｗｅｒｅ　ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ　ｂｙ　ＴＬＣ，ｕｓｉｎｇ　ｈｙｐｅｒｉｎ　ａｓ　ａ　ｒｅｆｅｒｅｎｃｅ　ｓｕｂｓｔａｎｃｅ，ａｎｄ　ｃｈｌｏｒｏｆｏｒｍ－
ｍｅｔｈａｎｏｌ－ｗａｔｅｒ－ｇｌａｃｉａｌ　ａｃｅｔｉｃ　ａｃｉｄ（Ｖ∶Ｖ∶Ｖ∶Ｖ＝６５∶３５∶４∶１）ａｓ　ａ　ｄｅｖｅｌｏｐｉｎｇ　ｓｏｌｖｅｎｔ．Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ
ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ，ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ａｎｄ　ｈｙｐｅｒｉｎ　ｗｅｒｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｂｙ　ＨＰＬＣ　ｕｓｉｎｇ　ａ　Ｈｙｐｅｒｓｉｌ　ＯＤＳ２
（１５０　ｍｍ×４．６　ｍｍ，５μｍ）ｃｏｌｕｍｎ，ｔｈｅ　ｍｏｂｉｌｅ　ｐｈａｓｅ　ｗａｓ　ａ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｌａｃｉａｌ　ａｃｅｔｉｃ　ａｃｉｄ－ｗａｔｅｒ
（Ｖ∶Ｖ＝１∶９９）ａｎｄ　ｍｅｔｈａｎｏｌ－ａｃｅｔｏｎｉｔｒｉｌｅ（Ｖ∶Ｖ＝１∶１）ａｔ　ｔｈｅ　ｆｌｏｗ　ｒａｔｅ　ｏｆ　１．０ｍＬ·ｍｉｎ－１，ａｎｄ　ｔｈｅ　ｅｌｕ－
ａｔｅ　ｗａｓ　ｍｏｎｉｔｏｒｅｄ　ｗｉｔｈ　ＵＶ　ａｂｓｏｒｐｔｉｏｎ　ａｔ　２５４　ｎｍ．Ｒｅｓｕｌｔｓ　Ｔｈｅ　ＴＬＣ　ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｍ　ｏｆ　ｈｙｐｅｒｉｎ　ｗａｓ　ｏｆ
ｃｌｅａｒｎｅｓｓ　ａｎｄ　ｇｏｏｄ　ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ．Ｔｈｅ　ｃｏｎｔｅｎｔｓ　ｏｆ　ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ，ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ　ａｎｄ　ｈｙｐｅｒｉｎ　ｉｎ
Ａ．ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ　ｆｒｕｉｔｓ　ｗｅｒｅ　ｄｅｔｅｒｍｉｎｅｄ　ｂｙ　ＨＰＬＣ，ｔｈｅ　ｌｉｎｅａｒ　ｒａｎｇｅｓ　ｗｅｒｅ　２．０－５０．０　ｍｇ·Ｌ－１（ｒ＝０．９９９
８），８．０－２００　ｍｇ·Ｌ－１（ｒ＝０．９９９　６）ａｎｄ　２．０－５０．０　ｍｇ·Ｌ－１（ｒ＝０．９９９　５），ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ，ａｎｄ　ｔｈｅ　ａｖｅｒ－
ａｇｅ　ｒｅｃｏｖｅｒｉｅｓ　ｗｅｒｅ　９９．４％（ＲＳＤ＝２．７％），１００．９％（ＲＳＤ＝１．８％）ａｎｄ　９８．１％（ＲＳＤ＝２．４％），ｒｅｓｐｅｃ－
ｔｉｖｅｌｙ．Ｔｈｅ　ＨＰＬＣ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｗａｓ　ｏｆ　ｇｏｏｄ　ａｃｃｕｒａｃｙ，ｒｅｐｒｏｄｕｃｉｂｉｌｉｔｙ　ａｎｄ　ｐｒａｃｔｉｃｅ．Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎｓ　Ｔｈｅ　ｓｉｍ－
ｐｌｅ，ｒａｐｉｄ　ａｎｄ　ｒｅｌｉａｂｌｅ　ｍｅｔｈｏｄｓ　ａｒｅ　ｈｅｌｐｆｕｌ　ｆｏｒ　ｔｈｅ　ｑｕａｌｉｔｙ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｏｆ　Ａ．ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ　ｆｒｕｉｔｓ．
Ｋｅｙ　ｗｏｒｄｓ：Ａｃａｎｔｈｏｐａｎａｘ　ｓｅｎｔｉｃｏｓｕｓ　ｆｒｕｉｔｓ；ｈｙｐｅｒｉｎ；ｃｈｌｏｒｏｇｅｎｉｃ　ａｃｉｄ；ｐｒｏｔｏｃａｔｅｃｈｕｉｃ　ａｃｉｄ；ＨＰＬＣ；
ＴＬＣ
２２６ 沈　阳　药　科　大　学　学　报 第３２卷