全 文 ：研究与探讨
2015年第14期
Vol . 36 , No . 14 , 2015
不同生育期紫苏叶中β-胡萝卜素和
总黄酮的动态积累
向 福1，2，江安娜1，项 俊1，2，*，方元平1，2，付建强1，王书珍1，2
（1.经济林木种质改良与资源综合利用湖北省重点实验室，黄冈师范学院，湖北黄州 438000；
2.大别山特色资源开发湖北省协同创新中心，湖北黄州 438000）
摘 要：为了探讨紫苏品种和生育期对紫苏叶中β-胡萝卜素和总黄酮含量的影响，指导紫苏的合理采收和资源化利
用，采用高效液相和紫外分光光度法分别测定四种紫苏叶在营养生长期、开花期和落叶期的β-胡萝卜素和总黄酮含
量。结果表明：四种紫苏叶中β-胡萝卜素均在开花期达到最大含量，以河北保定栽培种P11-3紫苏叶中β-胡萝卜素含
量最高，为4.32mg/g；不同紫苏叶中总黄酮分别在开花期和落叶期有最大含量，以湖北英山野生种P11-7开花期紫苏
叶中总黄酮含量最高，达83.9mg/g。因此，开花期是利用湖北英山野生紫苏叶中β-胡萝卜素和总黄酮的最佳采收期，
从而为大别山紫苏的合理采收和资源化利用提供了理论依据。
关键词：紫苏叶，β-胡萝卜素，总黄酮，动态积累，开花期
Dynamic accumulation of flavonoids and β-carotene in leaves of
Perilla frutescens at different stages of development
XIANG Fu1，2，JIANG An-na1，XIANG Jun1，2，*，FANG Yuan-ping1，2，FU Jian-qiang1，WANG Shu-zhen1，2
（1.Hubei Key Laboratory of Economic Forest Germplasm Improvement and Resources Comprehensive Utilization，
Huanggang Normal University，Huangzhou 438000，China；
2.Hubei Collaborative Innovation Center for the Characteristic Resources Exploitation of Dabie Mountains，
Huangzhou 438000，China）
Abstract：In order to investigate the accumulation of flavonoids and β-carotene in leaves of Perilla frutescens，
the contents of flavonoids and β-carotene in four kinds of perilla leaves at different stages of development，
namely vegetation，blossom，and defoliation phases，were determined by UV spectrophotometry and HPLC，
respectively. Results showed that β-carotene in perilla leaf were greatly accumulated at blossom phase and
the highest content of β-carotene was in the leaf of Baoding-cultivar P11-3 with 4.32mg/g and flavonoids
contents reached the maximum at blossom or defoliation phases with the highest content of total flavonoids
being in leaf of Yingshan-wild-specie P11-7 with 83.9mg/g. Consequently，the best harvest period of perilla
leaf for the development and utilization of flavonoids and β-carotene in Yingshan-wild-specie P11-7 was
blossom phase，which provided theoretical basis for the reasonable harvest and utilization of perilla resources
in Dabie Mountains.
Key words：folium perillae；β-carotene；total flavonoids；dynamic accumulation；blossom phase
中图分类号：TS255.1 文献标识码：A 文 章 编 号：1002-0306（2015）14-0143-05
doi：10.13386/j.issn1002-0306.2015.14.021
收稿日期：2015－01－30
作者简介：向福（1977－），男，博士，副教授，主要从事生物资源利用方面的研究。
* 通讯作者：项俊（1963-），男，教授，主要从事天然植物资源利用方面的研究。
基金项目：生物资源保护与利用湖北省重点实验室开放基金（PKLHB1103）。
紫苏（Perilla frutescens L. Britt）为一年生草本植
物，具有特异芳香味，栽培历史悠久，既是我国传统
的油料作物，也是卫生部首批颁布的药食兼用植物
品种。紫苏叶富含β-胡萝卜素、黄酮等多种生物活性
物质[1-2]，具有抗肿瘤、抗氧化、抗菌、抗病毒、降血脂、
止血镇痛等功效[2-3]，可用于开发改善免疫功能、延缓
衰老、抗癌、抗过敏以及心血管疾病相关药物和功能
产品[4]，应用前景广阔。
近年来，人们探讨植物中总黄酮含量的动态变
化的研究较多。研究发现，不同居群不同部位紫苏总
黄酮含量存在明显差异[5]，不同品种桑叶中黄酮含量
差异较大[6]，不同属间和品种间豆科牧草总黄酮的动
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Science and Technology of Food Industry 研究与探讨
2015年第14期
态变化和不同组织中的分布存在明显差异[7]。通过黄
酮含量的积累变化研究，确定了银杏叶、射干、荷叶
等资源利用的最佳采收期[8-10]。就紫苏而言，相关研
究目前主要集中在化学成分分析、提取工艺优化以
及药理作用方面[3-4]，通过探讨紫苏主要活性成分的
积累与转化规律，进而为紫苏资源的科学利用和合
理采收提供依据的研究较少。大别山地区紫苏资源
丰富，区域紫苏产业正在形成。本文拟通过研究四种
不同紫苏叶中β-胡萝卜素和总黄酮在植株营养生长
期、开花期和落叶期的含量变化，探讨紫苏品种和采
收期对紫苏叶资源利用的影响，从而为紫苏的合理
采收和资源化利用提供理论依据，促进大别山地区
紫苏产业的科学发展。
1 材料与方法
1.1 材料与仪器
重庆丰都紫苏栽培种P11-1、甘肃庆阳紫苏栽培
种P11-2、河北保定紫苏栽培种P11-3 重庆阿尔康
生物工程有限公司；湖北英山紫苏野生种P11-7 湖
北李时珍生物科技有限公司；石油醚（30~60℃沸
程）、无水乙醇、三氯甲烷、丙酮、二氯甲烷、无水硫酸
钠、亚硝酸钠、硝酸铝、氢氧化钠 天津市凯通化学
试剂有限公司，分析纯；甲醇 天津市凯通化学试
剂有限公司，色谱纯；芦丁 上海阿拉丁试剂公司，
标准品；β-胡萝卜素 中国药品生物制品检定所，标
准品。
TD5自动平衡离心机 长沙平凡仪器仪表有限
公司；Waters2695高效液相色谱仪 美国Waters公
司；Cary-100紫外可见分光光度计 美国Varian公
司；FA2014电子天平 上海精细天平有限公司；
SZF-06脂肪测定仪 上海精隆科学仪器有限公司；
HH-6型数显恒温水浴锅 国华电器有限公司；KQ-
250DB型数控超声波清洗器 昆山市超声仪器有限
公司；RE-S2AA旋转蒸发仪 上海亚荣生化仪器厂。
1.2 实验方法
播种长至有2对叶片的幼苗时进行移栽，采用
完全随机区组设计，每小区面积大约23m2，行间距
60cm×45cm。移栽实验田20d后，开始每隔20d采摘一
次叶片，每次按离实验区边界相同距离随机选择5个
点取样，采摘方法为全株采摘。根据紫苏生长情况，
叶片采摘分为营养生长期、开花期和落叶期。将新鲜
叶片用清水漂洗除去泥砂后拭干表面水分，自然阴
干，粉碎过40目，得紫苏叶粉，备用。
1.2.1 β-胡萝卜素含量的测定
1.2.1.1 色谱条件 β-胡萝卜素标准品样液扫描，
在455nm和481nm处有两个吸收峰，由于455nm处吸
收强度最大，故将其作为检测波长。色谱条件为：色
谱柱Symmetry C18，流动相乙腈-二氯甲烷（体积比
80∶20），检测波长455nm，柱温30℃，流速1.0mL/min；
进样体积20μL。
1.2.1.2 β-胡萝卜素标准曲线的制作 精确配制浓
度为500μg/mL的标品母液，分别稀释成高、低两种不
同浓度范围的系列标准溶液：10、20、30、40和50μg/mL
及1.0、2.5、5.0、7.5和10μg/mL。取各浓度标准溶液，进
样量20μL，平行进样三次，测得其峰面积值。
1.2.1.3 样品制备及含量测定 精确称取四种紫苏
粉1.25g于离心管中，并加0.1g VC，分次加入石油醚-
丙酮（体积比8∶2）混合液24mL，在振荡器上避光振摇
提取15min，无水硫酸钠脱水，离心后吸取上清液，合
并提取液，定容于25mL棕色容量瓶。取该提取液
10mL在45℃旋蒸至干得样品，用10mL甲醇溶解，稀
释100倍后，经0.45μm的微孔滤膜过滤，按色谱条件
在455nm波长处测定峰面积。
β-胡萝卜素标液保留时间为10.975min，样品保
留时间为10.934min，出峰较一致。将样品色谱图中
相应的色谱峰面积代入回归方程，利用式（1）计算β-
胡萝卜素含量：
C=100XV/1000M 式（1）
式（1）中，C为样品中β-胡萝卜素含量，mg/g；X
为进样液中β-胡萝卜素浓度，μg/mL；V为定容体积，
mL；100为样品稀释倍数；M为样品质量，g。
1.2.1.4 精密度实验 将四种开花期紫苏粉按上述
方法重复提取5份，以相同方法测定β-胡萝卜素。
1.2.1.5 回收率实验 取已测定β-胡萝卜素含量的
P11-3紫苏粉5份，每份1.25g，分别加入一定量的β-
胡萝卜素标液，按上述方法提取定容，测β-胡萝卜素
回收率。
1.2.2 总黄酮含量的测定
1.2.2.1 标品液和样品液制备 精确称取在120℃烘
至恒重的芦丁标准品11.5mg，用50%的乙醇溶液定容
至25mL，摇匀，即得浓度为0.46mg/mL的标品液。
根据文献方法 [11]，分别精确称取四种紫苏粉
2.5g，先用石油醚脱脂6h，石油醚挥发干净后，加入
60%乙醇溶液40mL，60℃超声30min（100W），再恒温
提取1.5h，渣重提一次，合并提取液，旋蒸至干，用
50%乙醇溶液溶解过滤后，定容到50mL，摇匀，即得
样品液。
1.2.2.2 波长扫描 精密量取芦丁标品液和四种样
品液各0.5mL，置25mL容量瓶中，加50%乙醇溶液
5.5mL，加5% NaNO2试液1.0mL，摇匀，放置6min，加
10% Al（NO3）3试液 1.0mL，摇匀，放置 6min，加 4%
NaOH试液10mL，加50%乙醇溶液至刻度，摇匀，放置
15min，以相应试剂作空白，于紫外可见分光光度计
上，在波长400~700nm进行波长扫描。
1.2.2.3 芦丁标准曲线的制作 精确吸取0.0、0.5、
1.0、2.0、3.0、4.0、5.0mL标品液分别置于25mL容量瓶
中，加50%乙醇溶液5.5mL，其余操作同上。
1.2.2.4 总黄酮含量的测定 取样品液0.5mL，置
25mL容量瓶中，加50%乙醇溶液5.5mL，其余操作同
上。在506nm处测定吸光值，由回归方程计算得样品
液总黄酮浓度，由式（2）计算得样品中总黄酮含量：
D=50BV/M 式（2）
式（2）中，D为样品中总黄酮含量，mg/g；B为样品
液中总黄酮浓度，mg/mL；V为定容的体积，mL；50为
样品稀释倍数；M为样品质量，g。
1.2.2.5 精密度实验 将四种开花期紫苏粉按上述
方法重复提取5份，以相同方法测定总黄酮。
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研究与探讨
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Vol . 36 , No . 14 , 2015
1.2.2.6 重现性实验 取开花期河北保定的栽培种
P11-3紫苏粉按上述方法重复提取5份，以相同方法
平行测定总黄酮含量。
1.2.2.7 回收率实验 取开花期河北保定的栽培种
P11-3紫苏粉5份，各加入芦丁对照品适量按上述方
法制备5份样品液，每份吸取0.5mL，置于25mL容量
瓶中，按上述方法分别测定总黄酮含量。
2 结果与讨论
2.1 β-胡萝卜素的含量变化
2.1.1 β-胡萝卜素含量测定 β-胡萝卜素在1.0~
10μg/mL范围内线性关系良好，回归方程为：Y=
9678.1X-5936.9，R2=0.9988。其中，Y为色谱峰面积，
X为进样液中β-胡萝卜素浓度（μg/mL）。根据式（1）
计算四种紫苏在不同生育期其叶中β-胡萝卜素的含
量，结果如表1所示。方差分析表明，在不同生育期各
品种紫苏叶中β-胡萝卜素含量差异极显著（p＜0.01）。
表1中精密度实验RSD在1.81%~5.87%，表明测定方
法精密度较高。回收率实验所得β-胡萝卜素平均回
收率为93.66%，RSD为6.48%。
2.1.2 β-胡萝卜素含量变化规律 从表1可知，除重
庆丰都的栽培种P11-1外，P11-2、P11-3、P11-7三种
紫苏叶中β-胡萝卜素含量从营养生长期到开花期均
有所增加，特别是河北保定的栽培种P11-3，其叶中
β-胡萝卜素积累效应最为显著，从营养生长期到开
花期增加了35%，β-胡萝卜素含量高达4.32mg/g，含
量和增量均远高于其他品种。到了落叶期，除湖北
英山的野生种P11-7紫苏叶中β-胡萝卜素含量由
3.18mg/g降为2.9mg/g外，P11-1、P11-2、P11-3三种紫
苏叶中均检测不到β-胡萝卜素。
光合作用是植物生理代谢的基础，为植物的生
长发育提供物质能量。β-胡萝卜素作为光合作用过
程中的光保护色素和天线色素，在保护光和器官、防
止光氧化损伤等方面具有重要作用[12-13]。表1中结果
表明，紫苏叶中含有丰富的β-胡萝卜素（四种紫苏叶
中最低也达到2.44mg/g），其主要营养生长期和开花
期大量积累和转化，在落叶期β-胡萝卜素则迅速减
少。这可能是由于紫苏在营养生长期处于不断生长
新叶阶段，紫苏叶不断发育，β-胡萝卜素的含量逐渐
增加，为光合作用提供支持，到开花期紫苏叶完全发
育，β-胡萝卜素含量达到最大；落叶期时，由于叶片
衰老、纤维化以及营养物质转移等原因[14]，紫苏叶片
生理活动减弱、β-胡萝卜素合成能力降低，含量急剧
下降。食叶红紫苏叶中β-胡萝卜素含量在不同生育
期也有相同的变化规律[15]。
另外，不同品种紫苏叶中β-胡萝卜素含量变化
较大。在相同种植背景下，河北保定的栽培种P11-3
紫苏叶中β-胡萝卜素含量最高，分别是重庆丰都栽
培种P11-1的1.6倍，甘肃庆阳栽培种P11-2的1.5倍和
湖北英山野生种P11-7的1.4倍。在四种紫苏中，又以
湖北英山野生种P11-7较为独特，紫苏叶在落叶期仍
有高达2.9mg/g的β-胡萝卜素含量。
尽管不同采收期、不同品种紫苏叶中β-胡萝卜
素含量存在较大差异，但都在开花期接近最大值，以
河北保定栽培种P11-3紫苏叶中β-胡萝卜素含量最
高，其次为湖北英山野生种P11-7。
2.2 总黄酮的含量变化
2.2.1 总黄酮含量测定 芦丁标品液和各样品溶液
均在506nm处有最大吸收，故选506nm为测定波长。
同时，在显色反应结束10min后，取同一样品在506nm
波长进行稳定性考察发现，在30min内吸光度稳定。
本实验选择在加NaOH后20min测吸光度，得吸光值（A）
与芦丁浓度（B）的回归方程为：A=10.084B-0.0003，
R2=0.9998，线性关系良好。
根据式（2）计算不同生育期四种紫苏叶中总黄
酮含量，结果如表2所示。方差分析表明，在不同生育
期各品种紫苏叶中总黄酮含量均差异显著（p＜0.1）。
表2中精密度实验RSD在1.11%~3.40%范围，表明测
定方法精密度较高。
回收率实验所得总黄酮平均回收率为97.87%，
RSD为0.70%，说明测定方法准确可靠。重现性实验
测定总黄酮平均含量为52mg/g，RSD为1.81%，表明
重现性良好。
2.2.2 总黄酮含量变化规律 从表2可知，四种紫苏
叶中总黄酮含量在营养生长期均较低，其中以甘肃
庆阳的栽培种P11-2最低，总黄酮含量14.7mg/g；含
量较高的为河北保定的栽培种P11-3和湖北英山
野生种P11-7，其叶中总黄酮含量分别有19.4mg/g和
19.1mg/g。
植株生长到开花期，四种紫苏叶中总黄酮含量
急剧增加，其中湖北英山野生种P11-7增量最大，由
品种
β-胡萝卜素含量（mg/g） 精密度实验
营养生长期 开花期 落叶期
平均值
（mg/g）
RSD
（%）
P11-1 2.94 2.68 - 2.65 3.64
P11-7 2.70 3.18 2.9 3.18 2.47
P11-3 3.20 4.32 - 4.31 1.81
P11-2 2.44 2.98 - 3.01 5.87
表1 不同生育期不同品种紫苏叶中β-胡萝卜素含量及精密
度实验分析
Table 1 The β-carotene contents in leaves of Perilla frutescens
at different development stages and precision test
注：“-”表示未检测到；表2同。
品种
总黄酮含量（mg/g） 精密度试验
营养生长期 开花期 落叶期
平均值
（mg/g）
RSD
（%）
P11-1 17.1 67.1 70.1 67.1 1.42
P11-7 19.1 83.9 74.2 83.7 1.11
P11-3 19.4 52.0 - 52.0 1.81
P11-2 14.7 37.6 49.0 37.6 3.40
表2 不同生育期不同品种紫苏叶中总黄酮含量及精密度实
验分析
Table 2 The total flavonoids contents in leaves of Perilla
frutescens at different development stages and precision test
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Science and Technology of Food Industry 研究与探讨
2015年第14期
生长期的19.1mg/g剧增到开花期的83.9mg/g，总黄
酮含量增加了3.4倍；重庆丰都的栽培种P11-1也由
17.1mg/g剧增到67.1mg/g，开花期总黄酮含量是生长
期的3.9倍；河北保定的栽培种P11-3次之，开花期总
黄酮含量52.0mg/g，是生长期的2.7倍；总黄酮含量增
长最低的是甘肃庆阳的栽培种P11-2，开花期总黄酮
含量是生长期的2.6倍。
落叶期时，各品种紫苏叶中总黄酮含量无明显
的整体变化趋势。如表2所示，河北保定栽培种P11-3
和湖北英山野生种P11-7紫苏叶总黄酮含量呈下降
趋势，从开花期到落叶期P11-3紫苏叶则在落叶期未
检测出黄酮，P11-7紫苏叶总黄酮含量降低了11.6%；
相反，重庆丰都栽培种P11-1和甘肃庆阳栽培种P11-
2紫苏叶总黄酮则在落叶期继续合成积累，含量分别
增加了4.5%和30.3%。上述结果表明，紫苏叶中含有
丰富的黄酮类化合物，且在开花期大量合成和积累。
作为次生代谢产物，总黄酮的合成积累是以叶
片成熟为前提，以光合产物为基础[16]。随着植物从幼
苗生长到开花期，紫苏叶片渐为成熟，光合作用能力
增强，初生和次生代谢活动旺盛，从而在开花期形成
黄酮合成高峰，积累了较多的黄酮类物质成分，总黄
酮含量急剧增加。在落叶期，由于紫苏籽的充分生长
和成熟，需要紫苏叶提供大量营养物质，使得紫苏叶
中的黄酮类物质大量转移至紫苏籽中，同时由于代
谢机能变缓，紫苏叶的次生代谢逐渐降低，而紫苏叶
中原有黄酮类物质也因持续参与代谢而消耗，导致
P11-7紫苏叶在落叶期的总黄酮含量呈下降趋势，甚
至在落叶期的P11-3紫苏叶中未检测到总黄酮。
早期人们研究桂叶岩蔷薇叶中黄酮的积累规律
发现，叶片活跃生长时，叶中黄酮类物质合成较快，
会产生一个黄酮合成高峰，在植物叶片停止生长而
接近衰老时又会出现一个黄酮合成高峰 [17]。P11-1
和P11-2紫苏在落叶期紫苏籽已趋于成熟，对总黄
酮需求量减少，且可能再次出现黄酮合成高峰，从而
导致P11-1和P11-2紫苏叶总黄酮含量在落叶期反常
增加。
紫苏叶总黄酮含量的变化还与品种种质不同有
关。在营养生长期，不同品种紫苏叶中总黄酮含量较
为一致，差别较小。在开花期和落叶期，紫苏品种对
叶中总黄酮含量的影响特别显著。开花期时，湖北英
山野生种P11-7紫苏叶中总黄酮含量高达83.9mg/g，
甘肃庆阳栽培种P11-2紫苏叶中总黄酮含量只有
37.6mg/g，前者是后者的2.2倍。落叶期时，P11-1和
P11-7紫苏叶中总黄酮含量均超过70mg/g，在四种紫
苏中含量最高，而河北保定栽培种P11-3紫苏叶中甚
至检测不到总黄酮。表2结果说明，不同紫苏品种间
紫苏叶黄酮含量存在巨大差异，而部分品种间紫苏
叶总黄酮含量又趋一致。紫苏叶总黄酮含量在不同
品种间变化的这种二重性与人们报道的银杏叶黄酮
含量变化的二重性一致[16，18]。
因此，不同采收期、不同品种紫苏叶中黄酮含量
存在较大差别，P11-3和P11-7紫苏叶在开花期采收
总黄酮含量较高，P11-1和P11-2在落叶期采收总黄
酮含量较高；就品种而言，以湖北英山野生种P11-7
紫苏叶中总黄酮含量最高。在开发利用紫苏叶中黄
酮时，应注意不同品种和不同采收期的影响。
3 结论
为科学利用紫苏叶中总黄酮和β-胡萝卜素等活
性成分，应注意不同紫苏品种和不同采收期对其含
量变化的影响。开花期是利用紫苏叶β-胡萝卜素的
最佳采收期，而利用紫苏叶总黄酮的最佳采收期则
应视具体品种而确定为开花期或落叶期。就大别山
紫苏资源利用而言，开花期则是利用湖北英山野生
紫苏叶中总黄酮和β-胡萝卜素的最佳采收期。不同
生育期紫苏叶中β-胡萝卜素和总黄酮的积累变化
研究为紫苏资源的合理采收和资源化利用提供了
理论依据，有利于促进大别山地区紫苏产业的科学
发展。
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