全 文 :118 2013, Vol.34, No.23 食品科学 ※基础研究
蚕蛹源ACE抑制肽的分离纯化与结构研究
吴琼英1,杜金娟1,徐金玲1,贾俊强2,颜 辉1,桂仲争2
(1.江苏科技大学生物与化学工程学院,江苏 镇江 212018;2.中国农业科学院蚕业研究所,江苏科技大学,江苏 镇江 212018)
摘 要:目的:研究蚕蛹蛋白血管紧张素转换酶(ACE)抑制肽的结构特征。方法:采用超滤、DEAE-52离子交换色
谱和Sephadex G-50凝胶色谱对蚕蛹蛋白酶解产物进行分离纯化,并利用液质联用对蚕蛹蛋白ACE抑制肽的结构特
征进行初步分析。结果:分离得到的组分2(IC50 0.072mg/mL)对ACE抑制活性较高,是分离纯化前的2.95倍,为蚕蛹
蛋白ACE抑制肽的主要组分。结论:组分2中ACE抑制肽的分子质量为226.34~983.61u,主要由2~8肽组成。
关键词:蚕蛹蛋白;ACE抑制肽;分离纯化;液质联用
Separation, Purification and Structural Analysis of Angiotensin-converting Enzyme (ACE) Inhibitory
Peptides from Hydrolysate of Silkworm Pupae Protein
WU Qiong-ying1,DU Jin-juan1,XU Jin-ling1,JIA Jun-qiang2,YAN Hui1,GUI Zhong-zheng2
(1. School of Biotechnology and Chemical Engineering, Jiangsu University of Science and Technology, Zhenjiang 212018, China;
2. Sericultural Research Institute, Chinese Academy of Agricultural Sciences, Jiangsu University of Science and Technology,
Zhenjiang 212018, China)
Abstract:Objective: In order to investigate the structural characteristics of angiotensin-converting enzyme (ACE)
inhibitory peptides from silkworm pupae protein. Methods: The ACE-inhibitory peptides from hydrolysate of silkworm
pupae protein were separated and purified by ultrafiltration, DEAE-52 ion exchange chromatography and Sephadex G-50 gel
filtration chromatography. Then, the structural characteristics of purified ACE-inhibitory peptides were analyzed by liquid
chromatography-mass spectrometry (LC-MS). Results: Fraction 2 (IC50 0.072 mg/mL) with higher ACE-inhibitory activity
was obtained from silkworm pupae protein hydrolysate. This fraction was the major component of ACE-inhibitory peptides,
and its ACE-inhibitory activity was increased by 2.95 times over that of silkworm pupae protein hydrolysate. Conclusion: In
fraction 2, ACE-inhibitory peptides were mainly composed of the peptide fragments from dipeptide to octapeptide, and their
relative molecular weights were 226.34 to 983.61 u.
Key words:silkworm pupae protein;angiotensin-converting enzyme (ACE) inhibitory peptide;separation and
purification;liquid chromatography-mass spectrometry
中图分类号:TS201. 1 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2013)23-0118-05
doi:10.7506/spkx1002-6630-201323025
收稿日期:2012-11-23
基金项目:江苏省自然科学基金面上项目(BK2012693);江苏省科技支撑计划项目(BE2011389);
江苏科技大学青年骨干教师支持计划项目(37210901)
作者简介:吴琼英(1975-),女,副教授,博士,研究方向为生物资源开发与利用。E-mail:wuqy1@163.com
血管紧张素转换酶(angiotensin-Ⅰconverting
enzyme,ACE)抑制肽是一种生物活性肽,具有安全性高
和降血压平稳等优点[1]。ACE抑制肽通常在母体蛋白中没
有活性,只有通过酶解从母体蛋白中释放出来才能表现
出活性[2]。利用酶解法现已从不同食源蛋白中获得了具有
高活性的ACE抑制肽,如:草鱼蛋白[3]、鱿鱼明胶[4]、乳
清蛋白[5]、甘薯蛋白[6]、海蜇蛋白[7]和豇豆蛋白[8]等。因
此,酶解法已被广泛用于制备ACE抑制肽。
蚕蛹蛋白是蚕茧缫丝后的主要副产物之一,蛋白含
量约为65%左右[9],主要被用于动物饲料[10-11],经济价值
较低。本课题组采用Alcalase已成功从蚕蛹蛋白中水
解得到具有高活性的ACE抑制肽 [12],这为蚕蛹蛋白的
进一步深加工和再利用提供了可能。本实验在前期实
验的基础上,采用超滤、DEAE-52离子交换色谱以及
Sephadex G-50凝胶色谱对蚕蛹蛋白ACE抑制肽进行分
离纯化,并通过液质联用对纯化的ACE抑制肽的结构
特征进行初步研究,为蚕蛹蛋白的高效利用和深度开
发提供资料支持。
※基础研究 食品科学 2013, Vol.34, No.23 119
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
马尿酰组氨酰亮氨酸 (HHL)、血管紧张素转换酶
(ACE) 德国Sigma公司;Alcalase 诺维信(中国)生
物技术有限公司;DEAE-52纤维素树脂、Sephadex G-50
上海奥宇生物科技有限公司;其余试剂为国产分析纯。
1.2 仪器与设备
Pellicon小型超滤系统 美国Millipore公司;UV-
2100型分光光度计 美国尤尼柯(上海)仪器有限公司;
HL-2S恒流泵 上海沪西分析仪器厂;Thermo Scientific LXQ
线性离子阱质谱仪 美国Thermo Fisher Scientific公司。
1.3 方法
1.3.1 蚕蛹蛋白的制备
将鲜蚕蛹于120℃烘干,用80目粉碎机粉碎,经乙醚
脱脂后于60℃真空干燥,研碎得蚕蛹粉。取蚕蛹粉,用
蒸馏水配制成100g/L的悬浮液,调节pH值至8.0后持续搅
拌1h,在5000r/min离心10min,取上清液,然后将其pH
值调节至4.0,静置30min,5000r/min离心10min,收集沉
淀,透析后冷冻干燥备用。
1.3.2 具有ACE抑制活性的蚕蛹蛋白酶解产物的制备
采用Alcalase酶解蚕蛹蛋白制备具有ACE抑制活性
的酶解产物,酶解条件:底物质量浓度10g/L、酶解时间
120min、酶解温度50.8℃、酶解pH9.0、加酶量3500U/g。
1.3.3 蚕蛹源ACE抑制肽的分离纯化
1.3.3.1 超滤分离
分别依次采用截留分子质量10ku和5ku超滤膜对蚕蛹
蛋白酶解产物进行初步分离,分别收集分子质量>10ku,
5~10ku和<5ku组分,对所得组分进行冷冻干燥,然后取
样测定各组分的体外ACE抑制活性。超滤条件:进膜压力
1.30MPa,出膜压力0.30MPa,工作温度25℃。
1.3.3.2 DEAE-52离子交换分离
将超滤后的蚕蛹蛋白酶解产物用DEAE-52树脂进行分
离,分别收集各峰组分,冷冻干燥,取样测定各组分的体
外ACE抑制活性。分离条件:上样量2mL(5.50mg/mL),洗
脱液为0.3mol/L NaCl溶液,洗脱液流速1mL/min,检测波
长280nm。
1.3.3.3 Sephadex G-50凝胶分离
将经DEAE-52柱层析分离的组分用Sephadex G-50凝
胶进行分离,分别收集各洗脱峰组分,进行冷冻干燥,
取样测定各组分的体外ACE抑制活性。分离条件:上样
量200μL,洗脱液为蒸馏水,洗脱液流速0.50mL/min,检
测波长为280nm,
1.3.4 液质联用分析
1.3.4.1 液相色谱条件
分析柱Zorbax反相柱(4.6mm×150mm,3μm);流
动相为乙腈-水(20:80,V/V)(各含0.5mL/L TFA);柱温
30℃;流速1.0mL/min;进样量20μL。
1.3.4.2 质谱条件
离子方式为EIS-和ESI+,鞘气流速35arb,辅助气流
速5arb,吹扫气流速0arb,毛细管温度300℃,毛细管电
压30V,透镜电压120V,喷雾电压4.5kV。
1.3.5 体外ACE抑制活性的测定
根据Muguerza等[13]报道的方法测定体外ACE抑制活
性,按下式计算抑制率。
AˉA1
A-A2Ι/% = h100
式中:I为ACE抑制率/%;A为空白组的吸光度;A1
为反应体系中没有加入ACE时的吸光度;A2为反应体系
中有ACE和酶解产物时的吸光度。
2 结果与分析
2.1 超滤分离蚕蛹源ACE抑制肽
蚕蛹蛋白酶解产物经超滤分离后得到3个组分(分子
质量>10ku、5~10ku和<5ku),它们的ACE抑制活性如
图1所示。
0
20
40
60
80
ᵚ䎵└ >10ku 5̚10ku <5ku
䎵└࠶㓴࠶
A
C
Eᣁ
ࡦ
⦷
/%
图 1 超滤对0.085g/L蚕蛹蛋白酶解产物ACE抑制活性的影响
Fig.1 Effect of ultrafiltration on the ACE-inhibitory activity of
hydrolysate from silkworm pupae protein
由图1可知,分子质量<5ku和5~10ku组分的ACE
抑制活性均明显高于对照(未超滤),其中,<5ku组分的
ACE抑制活性最高。这主要是因为ACE抑制肽多由2~12
个氨基酸残基组成,分子质量多小于1.5ku[14-15]。因此,
选择<5ku组分进行下一步分离纯化。
2.2 DEAE-52离子交换分离蚕蛹源ACE抑制肽
DEAE-52是一种阴离子交换树脂,常被用于分离生
物活性肽[16-17],采用DEAE-52柱层析分离<5ku组分,其
分离色谱图见图2,分子质量<5ku组分被分离成3个组
分,其中,组分a为穿透部分,组分b和c为洗脱部分,且
组分b含量最高。各分离组分对ACE的抑制活性见图3,
与其他组分相比,组分b的ACE抑制活性最高。因此,选
择组分b进行下一步分离。
120 2013, Vol.34, No.23 食品科学 ※基础研究
0
200
400
600
0 20 40 60 80 100
ᰦ䰤/min
m
A
U
㓴࠶a
㓴࠶b
㓴࠶c
图 2 蚕蛹蛋白酶解产物分子质量<5ku组分的DEAE-52色谱
Fig.2 DEAE-52 Chromatogram of fractions of less than 5 ku from the
hydrolysate of silkworm pupae protein
0
20
40
60
80
a b c
DEAE-52࠶㓴࠶
A
C
Eᣁ
ࡦ
⦷
/%
图 3 0.085g/L组分a、b和c的ACE抑制活性
Fig.3 ACE-inhibitory activities of 0.085 g/L fractions a, b and c
2.3 Sephadex G-50凝胶分离蚕蛹源ACE抑制肽
0.00
0.05
0.10
0.15
0.20
0 30 60 90 120 150 180
⍇㝡ᰦ䰤/min
A 2
80
nm 组分1
组分2
组分3
图 4 组分b的Sephadex G-50凝胶色谱
Fig.4 Sephadex G-50 gel chromatogram of fraction b
0
20
40
60
80
100
1 2 3
Sephadex G-50࠶㓴࠶
A
C
Eᣁ
ࡦ
⦷
/%
图 5 0.085g/L组分1、2 和3的ACE抑制活性
Fig.5 ACE-inhibitory activities of 0.085g/L fractions 1, 2 and 3
Sephadex G-50凝胶进一步分离组分b的色谱见图4,
组分b被主要分成组分1、2和3。根据组分1、2和3的出峰
时间可以看出,各组分的分子质量分布大小依次为组分
1>组分2>组分3。各组分的ACE抑制活性(图5)可以看
出,组分2的ACE抑制活性明显高于组分1,这可能是由
于组分2的分子质量要小于组分1,因而包含了更多高活
性的ACE抑制肽。然而,尽管组分3的分子质量要小于组
分2,但其ACE抑制活性却明显比组分2的低,这可能是
因为ACE抑制肽的活性不仅与分子质量有关,而且与肽
链的空间结构和氨基酸组成有关[18-19]。经超滤、DEAE-52
离子交换和Sephadex G-50凝胶依次分离后得到的组分
2(质量浓度0.085g/L)的ACE抑制活性为85.2%,比未分
离(未超滤)的ACE抑制活性提高了194.8%,得到组分2的
IC50值为0.072mg/mL,因而选择组分2进行下一步纯化。
2.4 蚕蛹源ACE抑制肽的液质联用分析及结构预测
3.09
2.18
2.31
1.65
0.65
8.326.565.233.76
ጠĉ
ጠĊ
ጠċ22000
20000
18000
16000
14000
12000
10000
8000
6000
4000
2000
0
m
A
U
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10
ᰦ䰤/min
图 6 组分2的反相高效液相色谱
Fig.6 Reverse-phase high performance liquid chromatogram of fraction 2
组分2经反相高效液相色谱分离后共得到3个峰(图6),
其中,峰Ⅲ为组分2的主要组分。利用一级质谱分析酶
解产物肽的分子质量分布已被报道,孙爱梅等[20]利用高
效液相色谱/质谱联用技术分析了胶原蛋白经变性和酶
解处理得到的多肽混合物,利用液相色谱质谱联用技术
识别出了特征肽段,得到的肽片段分子质量也主要集中
于1000u以下。本实验中峰Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ的一级质谱见图
7,峰Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ分别由多种ACE抑制肽组成,均为混
合物,峰Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ中含量最多的肽段分子质量分别为
474.58、284.94、474.63u,其中分子质量为474.63u的肽
链在组分2中含量最高。由于除了亮氨酸和异亮氨酸具
有相同分子质量外,其他氨基酸的分子质量互不相同。
因此,根据一级质谱提供的活性肽的分子质量能够推测
出它的氨基酸组成。组分2中ACE抑制肽的氨基酸组成
分析见表1,组分2主要由2~8肽组成,分子质量范围为
226.34~983.61u,这与目前公开发表的ACE抑制肽的分
子质量在300~1600u基本一致[21-24]。表1中,ACE抑制肽
主要含有Ala、Cys、His、Lys、Pro、Leu、Ile、Val、
Phe、Glu和Gln。其中,Ala、Cys、His、Lys、Pro、
Leu、Ile、Val均为疏水性氨基酸,而Phe为芳香族氨基
酸。Cushman等[25]认为当Trp、Tyr、Phe和Pro在肽链羧基
端时该肽的降血压活性较好;贾俊强等[12]研究发现,在高
活性的ACE抑制肽中,C端氨基酸残基主要为Pro、Tyr、
Ile、Phe、Leu和Trp,而且C端氨基酸特征对ACE抑制活性
影响比N端氨基酸特征更为重要。因此,根据ACE抑制肽
构效关系,推测出组分2中ACE抑制肽的C端可能为Ala、
Cys、His、Lys、Pro、Leu、Ile、Val和Phe等氨基酸。
总之,蚕蛹蛋白ACE抑制肽的结构特征基本符合公
※基础研究 食品科学 2013, Vol.34, No.23 121
认的ACE抑制肽构效关系,因而呈现出较强的体外ACE
抑制活性。
表 1 组分2中ACE抑制肽的相对分子质量分布及氨基酸组成预测
Table 1 Molecular weight distribution and predicted amino acid
composition of ACE-inhibitory peptides in fraction 2
实测分子质量/u 理论分子质量/u 肽链的预测氨基酸组成 备注
226.34~226.40 226.07 A,H 二肽
233.96~233.99 233.21 G,S,A 三肽
274.86
274.26 N,A,A
二肽或三肽274.30 Q,K
274.33 K,K
284.94~284.99 285.33 V,A,P 三肽
339.43~339.53 339.40 A,C,F 三肽
361.51~361.54 361.34 N,A,A,S;Q,K,S 三肽或四肽
361.41 K,K,S
452.62~452.67 452.54 A,H,I,I;A,H,L,L;A,H,I,L 四肽
474.58~474.64 474.58
K,K,S,I;N,A,A,S,I;
K,K,S,L;N,A,A,S,L;
Q,K,S,I;Q,K,S,L
三肽、四肽或五肽
550.75
550.60 K,H,V,A,P 五肽
550.64 H,Q,V,A,P
604.57~604.58 604.67 A,C,F,Q,H 五肽
604.71 A,C,F,K,H
781.93
781.92 K,H,V,A,P,Q,C;H,Q,V,A,P,Q,C 七肽
781.96 K,H,V,A,P,K,C;H,Q,V,A,P,K,C
854.48~854.49
854.97 A,C,F,Q,H,H,I;A,C,F,Q,H,H,L 七肽
855.01 A,C,F,K,H,H,I;A,C,F,K,H,H,L
967.59~967.60
968.13
A,C,F,Q,H,H,I,I;
A,C,F,Q,H,H,L,L;
A,C,F,Q,H,H,I,L
八肽
968.17
A,C,F,K,H,H,I,I;
A,C,F,K,H,H,L,L;
A,C,F,K,H,H,I,L
983.53~983.61
984.09 A,C,F,Q,H,H,I,E;A,C,F,Q,H,H,L,E 八肽
984.13 A,C,F,K,H,H,I,E;A,C,F,K,H,H,L,E
100 200 300 400 500 600 700 800 900 1000
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
m/z
ሩ
Ѡ
ᓖ
/%
135.05
174.25
227.31
310.53
239.03
475.58
605.55
923.50
931.53
855.43
713.74
653.93
588.30
783.52
A
100 200 300 400 500 600 700 800 900 1000
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
m/z
ሩ
Ѡ
ᓖ
/%
135.00
174.31
234.05
285.04
302.53
475.54
421.72
981.01
855.40
952.83
705.24
551.75
605.57
782.03
B
135.06
174.16
234.99
227.40
218.91
249.35
285.99
315.37 385.35
362.51
340.43 453.67
475.63
298.45
556.31
605.60
654.04
702.87
718.81
759.73
782.89
839.71
854.73
871.47
953.79
942.55
968.60
984.58
100
100 200 300 400 500 600 700 800 900 1000
90
80
70
60
50
40
30
20
10
0
C
m/z
ሩ
Ѡ
ᓖ
/%
A. 组分Ⅰ;B.组分Ⅱ;C.组分Ⅲ。
图 7 组分Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ的质谱图
Fig.7 Mass spectra of fractions Ⅰ, Ⅱ and Ⅲ
3 结 论
蚕蛹蛋白酶解产物经超滤得到3个不同分子质量组
分,其中,分子质量<5ku的组分经DEAE-52离子交换再
次分离为3个不同组分,对其中ACE抑制肽活性高的b组分
采用Sephadex G-50凝胶进一步分离纯化后,得到的组分2
的IC50值为0.072mg/mL,其ACE抑制活性比分离纯化前提
高了194.8%;液质联用分析表明,蚕蛹源ACE抑制肽的分
子质量范围为226.34~983.61u,主要由2~8肽组成。
参考文献:
[1] 何荣海, 马海乐. 条斑紫菜ACEI 肽结构鉴定与性能试验[J]. 江苏大
学学报: 自然科学版, 2012, 33(4): 430-434.
[2] JIA Junqiang, MA Haile, ZHAO Weirui, et al. The use of ultrasound
for enzymatic preparation of ACE inhibitory peptides from wheat
germ protein[J]. Food Chemistry, 2010, 119(1): 336-342.
[3] CHEN Jiwang, WANG Yimei, ZHONG Qixin, et al. Purification and
characterization of a novel angiotensin-I converting enzyme (ACE)
inhibitory peptide derived from enzymatic hydrolysate of grass carp
protein[J]. Peptides, 2012, 33(1): 52-58.
[4] ALEM�N A, GIM�NEZ B, P�REZ-SANTIN E, et al. Contribution
of Leu and Hyp residues to antioxidant and ACE-inhibitory activities
of peptide sequences isolated from squid gelatin hydrolysate[J]. Food
Chemistry, 2011, 125(2): 334-341.
[5] PAN Daodong, CAO Jinxuan, GUO Huiqing, et al. Studies on
purification and the molecular mechanism of a novel ACE inhibitory
peptide from whey protein hydrolysate[J]. Food Chemistry, 2012,
130(1): 121-126.
[6] ISHIGURO K, SAMESHIMA Y, KUME T, et al. Hypotensive effect
of a sweetpotato protein digest in spontaneously hypertensive rats and
purification of angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides[J].
Food Chemistry, 2012, 131(3): 774-779.
[7] LIU Xin, ZHANG Miansong, JIA Airong, et al. Purification and
characterization of angiotensin I converting enzyme inhibitory peptides
from jellyfish Rhopilema esculentum[J]. Food Research International,
2013, 50(1): 339-343.
[8] SEGURA-CAMPOS M R, CHEL-GUERRERO L A, BETANCUR-
ANCONA D A. Purification of angiotensin I-converting enzyme
inhibitory peptides from a cowpea (Vigna unguiculata) enzymatic
hydrolysate[J]. Process Biochemistry, 2011, 46(4): 864-872.
[9] YANG Yunan, TANG Liman, TONG Ling, et al. Silkworms culture
122 2013, Vol.34, No.23 食品科学 ※基础研究
as a source of protein for humans in space[J]. Advances in Space
Research, 2009, 43(8): 1236 -1242.
[10] RANGACHARYULU P V, GIRI S S, PAUL B N, et al. Utilization
of fermented silkworm pupae silage in feed for carps[J]. Bioresource
Technology, 2003, 86(1): 29-32.
[11] 贾俊强, 桂仲争, 吴琼英, 等. 同时蒸馏萃取与气相色谱-质谱联用分
析蚕蛹挥发性成分[J]. 蚕业科学, 2011, 37(6): 1111-1116.
[12] 贾俊强, 徐金玲, 吴琼英, 等. 酶解蚕蛹蛋白制备血管紧张素转换酶
抑制肽的工艺优化[J]. 蚕业科学, 2011, 37(5): 872-877.
[13] MUGUERZA B, RAMOS M, S�NCHEZ E, et al. Antihypertensive
activity of milk fermented by Enterococcus faecalis strains isolated
from raw milk[J]. International Dairy Journal, 2006, 16(1): 61-69.
[14] LI Guanhong, LE Guowei, SHI Yonghui, et al. Angiotensin
I-converting enzyme inhibitory peptides derived from food proteins
and their physiological and pharmacological effects[J]. Nutrition
Research, 2004, 24(7): 469-486.
[15] LEE D H, KIM J H, PARK J S, et al. Isolation and characterization
of a novel angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptide derived
from the edible mushroom Tricholoma giganteum[J]. Peptides, 2004,
25(4) : 621-627.
[16] 赵艳景,张岩. 葛根抗氧化肽的分离及清除自由基活性研究[J]. 食
品科学, 2012, 33(13): 112-115.
[17] DU Lei, FANG Ming, WU Hongxi, et al. A novel angiotensin
I-converting enzyme inhibitory peptide from Phascolosoma esculenta
water-soluble protein hydrolysate[J]. Journal of Functional Foods,
2013, 5(1): 475-483.
[18] 贾俊强, 马海乐, 王振斌, 等. 降血压肽的构效关系研究[J]. 中国粮
油学报, 2009, 24(5): 110-114.
[19] CHI Chengwu, WANG Shouzhen, XU Laigen, et al. Structure-function
studies on the bradykinin potentiating peptide from Chinese snake venom
(Agkistrodon halys Pallas)[J]. Peptides, 1985, 6(Suppl 3) : 339-342.
[20] 孙爱梅, 张贵锋, 倪文, 等. 胶原蛋白降解物高效液相色谱/质谱联用
分析[J]. 中国生物工程杂志, 2005, 25(2): 66-72.
[21] 王立晖, 袁永俊, 孙勇民, 等. 水解酪蛋白制备生物活性肽的粗分离
[J]. 食品研究与开发, 2007, 28(11): 6-10.
[22] BALTI R, NEDJAR -ARROUME N, BOUGATEF A, et al. Three
novel angiotensin I-converting enzyme (ACE) inhibitory peptides
from cuttlefish (Sepia offi cinalis) using digestive proteases[J]. Food
Research International, 2010, 43(4): 1136-1143.
[23] LIU Jingbo, YU Zhipeng, ZHAO Wenzhu, et al. Isolation and
identification of angiotensin-converting enzyme inhibitory peptides
from egg white protein hydrolysates[J]. Food Chemistry, 2010, 122(4):
1159-1163.
[24] WANG Jiapei, HU Jianen, CUI Jinzhe, et al. Purification and
identification of a ACE inhibitory peptide from oyster proteins
hydrolysate and the antihypertensive effect of hydrolysate in
spontaneously hypertensive rats[J]. Food Chemistry, 2008, 111(2):
302-308.
[25] CUSHMAN D W, CHEUNG H S, SABO E F, et al. Development and
design of specific inhibitors of angiotensin-converting enzyme[J]. The
American Journal of Cardiology, 1982, 49(6): 1390-1394.