免费文献传递   相关文献

干燥条件对青花椒色泽的影响



全 文 :※基础研究 食品科学 2014, Vol.35, No.05 23
干燥条件对青花椒色泽的影响
张 艺,张甫生,宋莹莹,陈光静,吴金松,罗东升,阚建全*
(西南大学食品科学学院,重庆市农产品加工与贮藏重点实验室,农业部农产品贮藏保鲜质量安全风险评估
实验室(重庆),重庆 400715)
摘 要:为了解不同的干燥条件与青花椒果皮表面油胞的完整性对鲜青花椒干燥后色泽的影响,以鲜青花椒为原
料,研究破油胞组、未破油胞组、阴干组这3种干燥条件对青花椒色泽和叶绿素降解情况的影响。结果表明:不同
的干燥条件对干燥后青花椒的色泽均有一定程度的影响,破油胞组干青花椒变色最为严重,阴干组干青花椒变色次
之,未破油胞组干青花椒青绿色泽最好;不同干燥条件下,叶绿素的降解产物不完全相同;脱镁叶绿酸等褐色叶绿
素降解产物的产生可能是破油胞组与阴干组干青花椒变色的原因之一;干燥过程中,青花椒的色泽参数值与叶绿素
a、b含量的变化呈极显著(P<0.01)正相关关系。
关键词:青花椒;色泽;干燥;叶绿素降解
Effects of Different Drying Conditions on Color Change of Green Prickleyashes (Zanthoxylum schinifolium Zucc.)
ZHANG Yi, ZHANG Fu-sheng, SONG Ying-ying, CHEN Guang-jing, WU Jin-song, LUO Dong-sheng, KAN Jian-quan*
(Chongqing Key Laboratory of Product Processing and Storage, Laboratory of Quality and Safety Risk Assessment for
Agro-products on Storage and Preservation (Chongqing), Ministry of Agriculture, College of Food Science, Southwest University,
Chongqing 400715, China)
Abstract: In this study, fresh green prickleyashes were employed as experimental materials. Investigations were carried out
to explore the effect of different drying conditions (oil vacuoles were damaged or intact after drying at 45 ℃; drying at 25 ℃
in the shade) and the integrity of oil vacuoles on the color of green prickleyashes during drying process. The results showed
that all the drying conditions had some effects on the color of green prickleyashes. Samples with damaged oil vacuoles
showed the severest browning, followed by those dried in the shade, and the integral oil vacuoles could help protect the color
to some degree. The black-brown color of dried green prickleyashes with damaged oil vacuoles and those dried in the shade
may attributed to the abundant generation of pheophorbide a and pyropheophorbide a. The color of dried green prickleyashes
was highly significantly positively correlated with the contents of Chl a and Chl b (P < 0.01).
Key words: green prickleyash; color; dry; chlorophyll breakdown
中图分类号:TS201.2 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2014)05-0023-05
doi:10.7506/spkx1002-6630-201405005
收稿日期:2013-02-26
基金项目:国家自然科学基金面上项目(31071599);重庆市科委攻关计划项目(CSTC,2010AC1009)
作者简介:张艺(1989—),女,硕士研究生,研究方向为食品化学与营养学。E-mail:yiyiin163@163.com
*通信作者:阚建全(1965—),男,教授,博士,研究方向为食品化学与营养学、食品生物技术和食品质量与安全。
E-mail:ganjq1965@163.com
花椒,又名蜀椒、川椒等,是芸香科落叶灌木或
小乔木的成熟果皮,主要包括青花椒(Zmnthoxylum
schinifolium Sieb.et Zucc.)和红花椒(Zanthoxylum
bungeanum Maxim.),是中国传统的香料,有“中国八
大调料”之称[1]。青花椒简称青椒,因其果实成熟后仍呈
青绿色而得名。青花椒麻味纯正浓烈,气味清香,深受
消费者喜爱,广泛用于食品的烹调和加工之中,现已形
成重庆江津、四川金阳等著名的青花椒生产基地[2-3]。
由于青花椒的生产具有季节性,因此干青花椒是青
花椒产业中最主要的初级产品,正常的干青花椒呈翠绿
色,其色泽是干青花椒最重要的质量指标之一[4]。目前青
花椒主要的干制方式仍然是自然晾晒。采收后的鲜青花
椒在太阳能的自然干燥过程中,很容易变成黑色而失去
青绿色,就是在最佳的自然干燥条件下和鲜青花椒的油
胞保持完整时,青花椒的变色率也在20%以上;如遇天
气不好(阴湿)和鲜青花椒的油胞在采收和转运时破损
较大时,青花椒的变色率将达到80%以上。青绿色的干
青花椒与变色的干青花椒,市场售价相差2~5倍,种植
24 2014, Vol.35, No.05 食品科学 ※基础研究
农户仅这一环节的损失就很大。解决这一环节的变色问
题,已迫在眉捷。但目前国内外关于青花椒的研究主要
集中在香气成分分析[5-6]、活性物质(如酰胺类物质[7-8]和
生物碱[9-10])等方面,关于青花椒自然干燥时色泽变化的
报道几乎没有。本研究为在尽量接近青花椒自然干燥的
情况下,通过对在各种干燥条件下青花椒色泽变化和叶
绿素降解情况的研究,旨在为寻求一种青花椒的最佳干
燥条件提供实验数据。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
鲜青花椒,采摘于重庆市江津区先锋镇青花椒生产
基地。
叶绿素及其衍生物标准品 实验室自制[11];丙酮
(色谱纯) 成都科龙化工试剂厂;正己烷、甲醇、
N,N-二甲基甲酰胺(N,N-dimethyl formamide,DMF)、
四丁基溴化铵、乙酸铵(均为分析纯) 成都科龙化工
试剂厂。
1.2 仪器与设备
LC -20A分析型液相色谱仪 日本岛津公司;
UltroScan PRO测色仪 美国Hunter Lab公司;MAP-
500D电子天平 上海一恒科学仪器有限公司;101-3-S
电热恒温鼓风干燥箱 重庆慧达实验仪器有限公司;
FSH-Ⅱ型匀浆机 江苏环宇科学仪器厂;RE52-98旋
转蒸发仪 上海亚荣生化仪器厂;DF8517超低温冰箱
韩国Ilshin公司。
1.3 方法
1.3.1 样品处理
实验模仿夏季自然干燥条件,夏季晴天正午地面
温度在45 ℃左右,如遇连续阴雨天气,室内温度约为
25 ℃。取鲜青花椒分别放置在45 ℃(当时室外晒制的平
均温度,鼓风干燥)与25 ℃(当时室内8 d的平均温度,
相应的相对湿度变化范围为55%~75%,平均相对湿度为
60%,室内阴干)的温度下干燥,干燥时间分别为12 h和
144 h(两种温度下的干燥时间是由青花椒干燥结束时水
分含量是否达到成品干青花椒水分含量确定的),45 ℃
条件下干燥的样品每隔2 h取一次样,25 ℃条件下干燥
的样品每隔24 h取一次样,取得的样品立即用UltroScan
PRO测色仪测定其颜色,其余样品用于测定叶绿素及其
降解衍生物的含量与种类。由于阴干组是在室内自然阴
干的,其相对湿度有一定的波动,因此为避免由环境变
化所引起的差异,本实验共处理3个批次的样品,每一批
次处理方法相同,25 ℃与相对湿度为60%分别为3个批
次处理时间内的平均温度和平均相对湿度。
在45 ℃条件下干燥的青花椒设定了鲜青花椒破油胞
组与不破油胞组,即把鲜青花椒表面油胞的完整性也纳
入考察条件之一。破坏油胞处理:每50 g新鲜青花椒分装
于500 mL锥形瓶中于振荡器上200 r/min振荡60 s,以获得
破坏油胞的样品。即设定3组实验:破油胞组(鲜青花椒
经破油胞处理后放置在45 ℃条件下干燥)、未破油胞组
(鲜青花椒直接放置在45 ℃条件下干燥)、阴干组(鲜
青花椒放置在室内阴干,室内平均温度为25 ℃)。
1.3.2 青花椒色泽的测定方法
采用色度仪-电子眼检测(Hunter Lab),观察面积
0.18 mm,选用RSIN-包括镜面反射模式,滤光片位置:
微量的。采用国际CIE Lab色度空间表示颜色,仪器校正
完成后开始测量样品花椒的L*、a*、b*值,L*为亮度,
在0~100之间,0表示绝对黑色,100表示绝对白色;
a*为红绿轴(-a*代表绿,+a*代表红,a*值变化范围
为-100~+100);b*为蓝黄轴(-b*代表蓝,+b*代
表黄,b*值变化范围为-100~+100)[12-13]。每个样品测
量20颗青花椒,每颗测1次。测量完成后由CIE Lab模式
转换为CIE LCh模式即可得到所测颜色的C值和h值,分别
代表所测颜色的彩度和色相。总色差E*的计算以新鲜
青花椒的L*、a*、b*值作为标准对照,根据国际ASTM
E308-99标准,相应的计算公式为:
∆E* = ∆L*2 + ∆a*2 + ∆b*2 (1)
L*=L*样品-L*对照 (2)
a*=a*样品-a*对照 (3)
b*=b*样品-b*对照 (4)
1.3.3 叶绿素及其降解衍生物含量的测定
参考Fraser[14]、Arkus[15]等的方法。将制备好的叶绿
素a、叶绿素b、脱植基叶绿素a、脱植基叶绿素b和脱镁
叶绿酸a用80%丙酮配制成不同浓度的溶液,用高效液相
色谱仪进行测定,绘制的标准曲线见表1,对于不常见且
不易制备的叶绿素衍生物均采用与其具有相似吸收光谱
的物质的标准曲线进行定量。
表 1 叶绿素及其降解衍生物的标准曲线
Table 1 Standard curves of chlorophylls and their derivatives
名称 标准曲线 R2
叶绿素a、C132-OH-叶绿素a Y=0.14+2.59×10-5X 0.999 7
叶绿素b、C15-OH-内酯脱镁叶绿素a Y=0.01+6.70×10-5X 0.999 4
脱植基叶绿素a、焦脱植基叶绿素a Y=-0.05+1.72×10-5X 0.998 5
脱植基叶绿素b Y=0.07+3.76×10-5X 0.998 1
脱镁叶绿酸a、焦脱镁叶绿酸a、C132-OH-脱镁叶绿酸a Y=6.28×10-16+1.25×10-5X 0.997 9
脱镁叶绿素a、C132-OH-脱镁叶绿素a Y= 1.10×10-1+2.39×10-5X 0.996 4
注 :Y 为浓度 /(mol/L);X 为峰面积。
样品前处理的方法:参考Roca等[16]的方法。称取青
花椒样品5.0 g,加入到用MgCO3饱和过的50 mL DMF
溶液中,匀浆后过滤,滤渣再用50 mL DMF提取,
※基础研究 食品科学 2014, Vol.35, No.05 25
过滤。合并、收集滤液于分液漏斗中,加入正己烷
(50 mL×3)用以除去油脂和部分类胡萝卜素,叶绿素
类色素保留在DMF相中。将富含叶绿素的DMF溶液低压
旋转蒸发(低于30 ℃)去掉DMF溶剂后,残余物溶于
5 mL丙酮中,此样品溶液过0.45 �m有机滤膜后用于高效
液相色谱分析。
液相色谱分析条件:色谱柱为GL Sciences Column
(ODS-SP,4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相A相
组成体积比为1∶1∶8的离子对-水-甲醇(离子对为含有
四丁基溴化铵(0.05 mol/L)和醋酸铵(1.0 mol/L)的
水溶液),B相组成体积比为1∶1的甲醇-丙酮;洗脱程
序为:B相在35 min内由0%线性增加到100%,并维持
100% B相15 min,在下次进样之前需用A相平衡柱子
10 min;0~30 min的流速为1 mL/min,30~50 min的流
速为0.6 mL/min;进样量为10 �L;脱植基叶绿素类色
素的检测波长为432 nm,脱镁叶绿酸类色素检测波长为
409 nm,叶绿素和脱镁叶绿素类色素采用荧光检测器进
行检测,其激发波长为440 nm,发射波长为660 nm。
1.4 数据分析
所有实验重复3 次,实验数据处理和分析在Excel
(2003)中进行。所有结果均为3 批次处理样品,数
值为 ±s。
2 结果与分析
2.1 在干燥过程中鲜青花椒色泽的变化研究
50 A
45
40
35
30
25
20
0 2˄24˅ 4˄48˅6˄72˅8˄96 1˅0˄120˅ 12˄144˅
L*
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
6 B
4
2
0
-4
-2
-6
-8
a*
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72˅ 8˄96˅10˄120˅12˄144˅
30 C
25
20
15
10
5
b*
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72˅ 8˄96˅ 10˄120˅12˄144˅
30 D
25
20
15
10
5
C
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72˅8˄96˅10˄120 1˅2˄144˅
110 E
100
90
80
70
60
50
h
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72 8˅˄96 1˅0˄120 1˅2˄144˅
35 F
30
25
20
15
10
0
5
ΔE
*
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72˅8˄96˅10˄120˅ 12˄144˅
2(24)中2表示未破油胞组与破油胞组干燥2 h,24
表示阴干组干燥24 h,其他时间与此类似。下同。
图 1 青花椒干燥过程中色泽参数的变化(x±s,n =3)
Fig.1 Variations in color parameters during drying of green
prickleyashes (x±s, n = 3)
由图1可知,在不同干燥条件下青花椒的亮度值L*、
黄蓝值b*、彩度值C、色相值h均随干燥时间的延长而逐
渐减小,红绿值a*则随干燥时间的延长而逐渐增大,说
明任意一种干燥条件均对青花椒的色泽有一定的影响。
红绿值a*是评价青花椒干燥后是否仍为绿色的一个重要
指标,只有未破油胞青花椒在干燥结束后其a*值仍为负
值(-1.15±0.04),说明干燥结束后只有未破油胞青花
椒的色泽仍为绿色。
表 2 青花椒干燥过程中色泽变化的感官评价(x±s,n =3)
Table 2 Sensory evaluation of the color changes during drying of green
prickleyashes (x±s, n = 3)
组别 干燥时间/h
0 2(24) 4(48) 6(72) 8(96) 10(120) 12(144)
未破油胞组 青绿色 青绿色略带黄色 青绿色略带黄色 绿色略带黄色 绿色略带黄色 翠绿色 翠绿色
破油胞组 青绿色 黄褐色 黑褐色 黑褐色 黑褐色 黑褐色 黑褐色
阴干组 青绿色 青绿色略带黄色 青绿色略带黄色 黄褐色带绿色 黄褐色带绿色 黄褐色略带绿色 黄褐色
由表2可知,青花椒干燥前均为青绿色,而干燥结束
后只有未破油胞组的青花椒为绿色,而阴干组与破油胞
组青花椒分别为黄褐色和黑褐色。
26 2014, Vol.35, No.05 食品科学 ※基础研究
总色差E*是指未干燥鲜青花椒与干燥后青花椒色
泽变化差异的指标,E*值越大表示色泽差异越大[17]。
未破油胞青花椒在45 ℃干燥6 h后其E*值基本保持不
变,且干燥结束时其E*值也最小,说明未破油胞青花
椒的色泽变化主要发生在干燥前期且干燥前后色泽变化
最小;破油胞青花椒在45 ℃干燥2 h后其E*值就达到了
21.85±1.47,干燥结束时其E*值与未破油胞组相比差
异极显著(P<0.01),说明破油胞青花椒干燥时变色迅
速且干燥后变色严重;阴干青花椒的E*值在整个干燥
过程中逐渐增加,干燥结束时其E*值与破油胞组差异
不显著(P>0.05),说明阴干青花椒是缓慢变色直至干
燥结束时变色也很严重。
表 3 青花椒干燥过程中色泽参数值与叶绿素主要成分变化的相关性
Table 3 Correlation between color parameters and chlorophyll
contents during drying of green prickleyashes
组别 指标 L* a* b* C h E* 叶绿素a 叶绿素b
未破油
胞组
L* 1
a* -0.94** 1
b* 0.97** -0.99** 1
C 0.97** -0.99** 0.99** 1
h 0.79** -0.95** 0.91** 0.91** 1
E* -0.99** 0.97** -0.99** -0.99** -0.86** 1
叶绿素a 0.79** -0.93** 0.90** 0.90** 0.97** -0.85** 1
叶绿素b 0.78** -0.93** 0.89** 0.89** 0.97** -0.85** 0.99** 1
破油胞组
L* 1
a* -0.96** 1
b* 0.99** -0.99** 1
C 0.99** -0.99** 0.99** 1
h 0.99** -0.97** 0.99** 0.99** 1
E* -0.99** 0.98** -0.99** -0.99** -0.99** 1
叶绿素a 0.99** -0.98** 0.99** 0.99** 0.99** -0.99** 1
叶绿素b 0.99** -0.97** 0.99** 0.98** 0.99** -0.99** 0.99** 1
阴干组
L* 1
a* -0.99** 1
b* 0.99** -0.99** 1
C 0.99** -0.99** 0.99** 1
h 0.97** -0.97** 0.98** 0.98** 1
E* -0.99** 0.99** -0.99** -0.99** -0.98** 1
叶绿素a 0.92** -0.94** 0.91** 0.91** 0.89** -0.92** 1
叶绿素b 0.82** -0.84** 0.80** 0.81** 0.75** -0.81** 0.96** 1
注:*.显著相关(P < 0.05);**.极显著相关(P < 0.01)。
由表3可知,任意一种干燥条件下青花椒各色泽参数之
间均存在密切的相关性,且任一干燥条件下的L*、a*、b*、
C、h、E*值两两之间的相关性均为极显著(P<0.01)。
2.2 青花椒干燥前后叶绿素及其衍生物含量和种类的变化
由表4可知,新鲜青花椒中主要的叶绿素是叶绿素a
和叶绿素b(占色素总量的97.93%);未破油胞组干青
花椒仍以叶绿素a和叶绿素b(占色素总量的91.75%)为
主,说明未破油胞组干青花椒叶绿素降解少;破油胞组
干青花椒中绝大多数为脱镁叶绿酸a、焦脱镁叶绿酸a和
脱镁叶绿素a(共占总色素含量的50.10%),而其叶绿素
a、b仅占色素总量的35.91%;分析其原因可能是因为破
油胞处理增加了酶与底物之间的接触机会,使叶绿素短
时间内发生酶降解,而酶降解途径的下游降解反应(生
成脱镁叶绿酸a之后)受到一定程度的抑制,从而造成了
脱镁叶绿酸a、焦脱镁叶绿酸a和脱镁叶绿素a等叶绿素降
解产物的积累[18]。阴干组干青花椒中虽仍以叶绿素a、b
为主(共占有总色素含量的74.58%),但与未破油胞组
干青花椒相比,其叶绿素已发生较大程度的降解,且降解
产物与破油胞组干青花椒相似。说明破油胞组和阴干组
干青花椒颜色为黑褐色有可能是由于生成了脱镁叶绿酸a、
焦脱镁叶绿酸a和脱镁叶绿素a等褐色叶绿素降解衍生物
所致[19-20]。
表 4 新鲜青花椒和干青花椒中叶绿素及其衍生物的含量对比
Table 4 Comparison of contents of chlorophylls and their derivatives
in fresh and dried green prickleyashes
叶绿素及其衍生物
新鲜青花椒 未破油胞组 破油胞组 阴干组
含量/(μg/g) 百分比/% 含量/(μg/g) 百分比/% 含量/(μg/g) 百分比/% 含量/(μg/g)百分比/%
脱植基叶绿素b 0.20±0.01 0.25
脱植基叶绿素a 2.89±0.61 1.27 1.23±0.49 1.25 1.16±0.16 1.44 0.02±0.00 0.01
焦脱植基叶绿素a 2.67±0.47 3.31
C132-OH-脱镁叶绿酸a 1.05±0.09 1.30 1.26±0.05 1.02
脱镁叶绿酸 a 1.51±0.14 1.54 21.81±2.11 27.01 5.83±0.05 4.73
焦脱镁叶绿酸a 5.77±0.53 7.14 4.37±1.03 3.55
叶绿素b 64.33±2.59 28.23 28.05±1.53 28.62 13.49±1.50 16.70 37.05±0.42 30.06
C132-OH-叶绿素a 1.77±0.00 1.81 1.96±0.11 2.43 2.54±0.07 2.06
叶绿素a 158.81±4.23 69.70 61.88±2.81 63.13 15.51±1.88 19.21 54.87±0.14 44.52
C15-OH-内酯脱镁叶绿素a 1.81±0.08 2.24 2.91±0.01 2.36
C132-OH-脱镁叶绿素a 1.64±0.02 2.03 2.54±0.05 2.06
脱镁叶绿素a 1.81±0.06 0.79 3.58±0.23 3.65 13.69±1.64 16.95 11.86±0.12 9.62
总叶绿素类色素 227.84±7.53 98.02±4.28 80.76±3.46 123.25±3.11
注 :干青花椒的质量均折合为其鲜质量。
2.3 叶绿素a、叶绿素b含量与青花椒色泽变化的关系
180 A
160
140
120
100
80
60
40
20
0ਦ


aਜ਼

/ ˄
μg
/ g
˅
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72˅8˄96 1˅0˄120 1˅2˄144˅
70 B
60
50
40
30
20
10ਦ


bਜ਼

/ ˄
μg
/ g
˅
ᰦ䰤/h
ᵚ⹤⋩㜎㓴
⹤⋩㜎㓴
䱤ᒢ㓴
0 2˄24˅ 4˄48˅ 6˄72˅ 8˄96˅ 10˄120˅12˄144˅
图 2 青花椒干燥过程中叶绿素a和叶绿素b含量的变化
Fig.2 Variations in chlorophyll a and chlorophyll b contents during
drying of green prickleyashes
※基础研究 食品科学 2014, Vol.35, No.05 27
表3相关性分析表明干燥过程中青花椒色泽参数L*、
a*、b*、C、h值的变化与叶绿素a、叶绿素b的变化呈极
显著相关关系(P<0.01),推测青花椒色泽的变化也可
能与其叶绿素a、b含量的变化有关,图2为青花椒干燥过
程中叶绿素a、叶绿素b含量的变化情况。3种干燥条件
下叶绿素a、叶绿素b的含量均随干燥时间的延长而逐渐
降低。干燥结束后,未破油胞组干青花椒中叶绿素a、b
含量高于破油胞组干青花椒,两者差异均达极显著水平
(P<0.01),说明青花椒果皮油胞的完整性对叶绿素
a、b降解的影响极显著,可能是因为破油胞处理引起了
细胞结构的破坏,使得原本相互分离的酶与底物能接
触进而发生反应[21-22],加速了叶绿素a、b的降解;未破
油胞组干青花椒与阴干组干青花椒相比,干燥结束时
其叶绿素a含量差异不显著,而叶绿素b含量差异显著
(P<0.05),说明这两组实验中干青花椒色泽的差异并
不是由叶绿素a含量的减少所引起的,而其与叶绿素b含
量的关系还有待进一步的研究。
3 结 论
通过对破油胞组、未破油胞组、阴干组这3种干燥
条件对青花椒色泽和叶绿素降解情况影响的研究结果表
明:油胞的破裂会导致青花椒严重变色,使干燥后的青
花椒呈黑褐色,且其叶绿素降解产生了大量不常见的叶
绿素降解衍生物;而温度对青花椒色泽的影响略低于油
胞的完整性,阴干干燥后的青花椒虽也变色严重,呈黄
褐色,但其叶绿素降解产生的不常见叶绿素衍生物的量
较少;而其中脱镁叶绿素a等褐色叶绿素降解产物的产生
可能是破油胞组与阴干组干青花椒变色的原因之一。因
此青花椒在采摘、运输以及干燥过程中应特别注意保护
其表面油胞不受破坏,同时遇阴雨天气时青花椒应尽量
集中在较高温度下人工干燥,虽然在一定程度上提高了
成本,但缩短了干燥时间且有利于青花椒的护色。
参考文献:
[1] 黄德民, 赵国华, 陈宗道, 等. 我国花椒的饮食文化探源[J]. 中国调
味品, 2006(1): 75-81.
[2] 张华, 叶萌. 青花椒的分类地位及成分研究现状[J]. 北方园艺,
2010(14): 199-203.
[3] 姚佳, 蒲彪. 青花椒的研究进展[J]. 中国调味品, 2010, 30(6): 35-39.
[4] 余晓琴. 花椒品质评价方法及其应用研究[D]. 重庆: 西南大学, 2010.
[5] WEI Shigang, HANG Huihui, WANG Yeqiang, et al. Ultrasonic
nebulization extraction-heating gas flow transfer-headspace singledrop
microextraction of essential oil from pericarp of Zanthoxylum bungeanum
Maxim[J]. Chromatography A, 2011, 1218(79): 4599-4605.
[6] CHARNG-CHERNG C, JENG-LEUN M, CHUNG-MAY W.
Characteristics of the steam-distilled oil and carbon dioxide extract
of Zanthoxylum simulans fruits[J]. Journal of Agricultural and Food
Chemistry, 2011, 44(4): 1096-1099.
[7] TSUTOMU H, KAZUTOSHI I, TOMO-OMI O, et al. Aliphatic acid
amides of the fruits of Zanthoxylum piperitum[J]. Phytochemistry,
2004, 65(18): 2599-2604.
[8] QUANBO X, DAWEN S, HIROFUMI Y, et al. Alkyamids from
pericarps of Zanthoxylum bungeanum[J]. Phytochemistry, 1997, 46(6):
1123-1126.
[9] TARUS P K, COOMBES P H, CROUCH N R, et al. Benzo[c]
phenanthridine alkaloids from stem bark of the forest knobwood,
Zanthoxylum davyi(Rutaceae)[J]. South African Journal of Botany,
2006, 72(4): 555-558.
[10] AHMAD M U, RAHMAN M A, HUQ E, et al. Alkaloids of
Zanthoxylum budrunga[J]. Fitoterapia, 2003, 74(1): 191-193.
[11] CHEN Kewei, ZHANG Fusheng, KAN Jiqnquan. Characterization
of chlorophyll breakdown in green prickleyashes (Zanthoxylum
schinifolium Zucc.) during slow drying [J]. European Food Research
and Technology, 2012, 234(6): 1023-1031.
[12] NURIA C A, VILBETT B, PILAR B, et al. Microstructure affects the
rate of chemical, physical and color changes during storage of dried
apple discs[J]. Journal of Food Engineering, 2008, 85(2): 222-231.
[13] AYSUM M, SEVIM K, MEDENI M. Effect of concentration and
drying processes on color change of grape juice and leather (pestil)[J].
Journal of Food Engineering, 2002, 54(1): 75-80.
[14] FRASER M S, FRANKL G. Detection of chlorophyll derivatives
in soybean oi l by HPLC[J] . Journal of the American Oil
Chemists’Society, 1985, 62(1): 113-121.
[15] ARKUS K A J, CAHOON E B, JEZ J M. Mechanistic analysis of
wheat chlorophyllase[J]. Archives Biochemistry and Biophysics, 2005,
438(2): 146-155.
[16] ROCA M, JAMES C, PRUZINSKA A. Analysis of the chlorophyll
catabolism pathway in leaves of an introgression senescence mutant of
Lolium temulentum[J]. Phytochemistry, 2004, 65(9): 1231-1238.
[17] 韩燕, 吴厚久, 窦华亭. 鲜橙汁冷藏期间色泽变化研究[J]. 食品科学,
2010, 31(2): 269-272.
[18] HORNERO-MÉNDEZ D, GANDUL-ROJAS B, MÍNGUEZ-
MOSQUERA M I. Routine and sensitive SPE-HPLC method for
quantitative determination of pheophytin a and pyropheophytin a in
olive oils[J]. Food Research International, 2005, 38(8): 1067-1072.
[19] VERGARA-DOMÍNGUEZ H, GANDUL-ROJAS B, ROCA M.
Formation of oxidised chlorophyll catabolites in olives[J]. Journal of
Food Composition and Analysis, 2011, 24(6): 851-857.
[20] ULRICH E, BERNHARD G, STEFAN H. Recent advances in
chlorophyll biosynthesis and breakdown in higher plants[J].Plant
Molecular Biology, 2004, 56(1): 1-14.
[21] BIBHUTI B M, SATYENDRA G, ARUN S. Browning of fresh-cut
eggplant: impact of cutting and storage[J]. Postharvest Biology and
Technology, 2012, 67: 44-51.
[22] GEMMA O O, ALEJANDRA ROJAS-GRAU M, LAURA A G, et al.
Recent approaches using chemical treatments to preserve quality of
fresh-cut fruit: a review[J]. Postharvest Biology and Technology, 2010,
57(3): 139-148.