免费文献传递   相关文献

葡萄病毒B的RT-PCR检测技术研究



全 文 :研究报告
生物技术通报
BIOTECHNOLOGY BULLETIN 2010年第 5期
葡萄病毒 B的 RTPCR检测技术研究
杨相昆1, 2, 3 田海燕 2, 3 牛建新 1, 2 王林1, 2 代永欣 1, 2
( 1石河子大学农学院园艺系,石河子 832003; 2新疆兵团绿洲生态农业重点实验室,石河子 832003; 3新疆农垦科学院,石河子 832003 )
  摘  要:  旨在建立适合葡萄的葡萄病毒 B的 RTPCR检测技术。从感染葡萄病毒 B的葡萄皮层中提取总 RNA, 以其为
模板合成 cDNA第一链, 并利用两对引物分别进行 PCR扩增; 回收 PCR特异扩增产物,与 pUCmT载体连接,并进行转化、重
组克隆的筛选、重组质粒的酶切鉴定和序列测定。结果显示, 两对引物均能获得与预期片段大小一致长约 460 bp和 470 bp的
扩增产物扩增片段序列与已报道 GVB序列 (序列号: X75448)的核苷酸同源性均为 81% , 经反复多次试验证实,利用总 RNA
为模板合成 cDNA并进行 PCR扩增检测 GVB是准确、可靠的。
关键词:  葡萄病毒 B 检测 重组质粒 序列 同源性
Study on the Detection ofGrapevine Virus B by RTPCR
Yang X iangkun
1, 2, 3
T ianH a iyan
2, 3
N iu Jianx in
1, 2
W ang L in
1, 2  Da iYongx in1, 2
(
1
D epartm ent of H orticulture, Agronomy Co llege of Shihez i University, Shihezi 832003;
2
K ey Laboratory of OasisEcology Agriculture of X injiang B ingtuan, Shihezi 832003;
3
X injiang A cademy of Farm land Reclamation, Shihez i 832003)
  Abstrac:t  The study w as to estab lish a RTPCR system adaptive to the grapev ine v irus B( GVB) o f g rapev ine. The tota lRNA, ex
tracted from grapev ine v irus B ( GVB) infected G rapev ine phloem tissue, was used as temp la te to synthesize the first stra in cDNAs. The
cDNAs w ere used fo r the amp lifica tion o f GVB by PCR. The PCR products we re exc ised from the gel and purified using the UNIQ10
Ge l Pur ification k it. The pu rified RTPCR products w ere then cloned into the pUCmT Vec to r, and DNA sequencing w as carried out by
deoxynuc leo tide cha in term ination prim ed w ith T7 andM 13+ / - pr im ers from the vecto r. Result show ed tha t about 460 bp and 470 bp
fragm en ts o fGVB were obta ined based on optim ized sy stem. The nuc leo tide sequences w ere ana ly sed using the DNAMAN and BLAST
softw are. Com pared w ith GVB iso late reported on GenBank( Access ion No. X75448), it show ed that bo th of the isolates obta ined here
represen ted 81% identityw ith it a t the sequence leve l o f nuc leotide. The study proved that a ll o f these ind icated that the PCR m ethod is
re liable fo r detecting GVB.
Key words:  G rapev ine v irus B ( GVB) De tection Recomb ined plasm id Sequence H om o logy
收稿日期: 20091206
基金项目:国家自然科学基金资助项目 ( 30060053, 30360066) ,兵团科委项目 (NKB02SDXNK01SW )
作者简介:杨相昆,男,硕士,从事果树生物技术研究; Em a i:l s tarryyang@ sina. com
通讯作者:牛建新,男,博士,教授,博士生导师,从事果树生物技术研究; Em ai:l n jx105@ 163. com
葡萄栓皮病 ( grapevine corky bark, GCB)属于粗
皮综合症 ( rugose w ood complex, RW )的一种, 1997
年第 12届国际葡萄病毒类病毒研究大会 ( In terna
t iona l Council for the Study o f V irus and V iruslike
D isease of the G rapev ine, ICVG )将葡萄栓皮病的病
原确定为葡萄病毒 B ( grapev ine v irus B, GVB ) [ 1 ] ,
GVB于 1999年在澳大利亚第一次被检出,随后在澳
大利亚其它葡萄栽培种及砧木上被检出 [ 2]。Ryo ji
[ 3]等也相继利用 RTPCR对 GVB进行了检测,但该
病毒在国内的研究尚属空白, 本试验成功的对葡萄
( Vitis vin if era L. )上的 GVB进行了 RTPCR检测,
并对扩增出的目的片段进行回收、克隆、测序, 以期
为对此病毒进行进一步的分子生物学研究奠定
基础。
生物技术通报 B iotechnology  Bulletin 2010年第 5期
1 材料与方法
11 植株、试剂及仪器
供试材料葡萄枝条采自石河子大学校园内, 4
保存备用。TaqDNA聚合酶 ( 5 U /L)购自北京华美
生物工程有限公司;核糖核酸酶抑制剂 (R ibonuclease
inh ib itor, 40 U /L, MB I)、逆转录酶 ( ReverA idTM M
MuLV Reverse T ranscriptase, 200 U /L, FB I)、dNTPs
( 10mmo l/L )、Puc19 DNA /M sp (H ap) M arker( 05
g /L)、GeneRu lerTM DNA LaderM ix ( 05 g /L )、
GeneRuler
TM
100 bpDNA Lader( 05 g /L)、UN IQ10
柱式 DNA胶回收试剂盒、PCR产物克隆试剂盒
( PCR Product C lon ing K it)均购于上海生工生物工
程技术服务有限公司;限制性内切酶 P st I购于大连
宝生物公司。大肠杆菌菌株 XL1b lue感受态由石
河子大学农学院果树生物技术实验室自备; 其余常
规试剂均为国产分析纯。
PCR 仪 为 BIORAD MYCyc ler Thermal Cycler,
GPS8000DPC凝胶成像系统, E ppendorf 5417R台式
高速冷冻离心机。
12 总 RNA的提取
利用皮层为材料, 方法参照文献 [ 4] , 取 5 L
总 RNA在含溴化乙锭 ( EB)的 10%的琼脂糖凝胶
中进行电泳鉴定,电泳缓冲液为 1 TAE, 泳动速率
为 14V /cm,紫外灯下观察试验结果。
13 GVB的 RTPCR扩增
根据 NCBI中已发表的 GVB序列 ( GenBank登
录号: X75448) ,并参照相关文献 [ 5, 6]设计而成,同
源引物 ( P1 ) : 69805 GTGCTAAGAACGTCTTCA
CAGC 37001; 互补引物 ( P2 ) : 74395 ATCAG
CAAACACGCTTGAACCG 37418。引物位置位于
ORF5内,预计扩增片段大小为 460 bp。同源引物
( P3 ) : 43975 ACACTGATCTTGACAAATGG 3
4420; 互补引物 ( P4 ) : 48675 TCGGATCCTTCA
CAATGCCATA 34847。引物位置位于 ORF1内,预
计扩增片段大小为 470 bp。以上引物均由上海生工
生物工程技术服务有限公司合成。
采用 FB I公司生产的 ReverA idTM M MuLV Re
verse T ranscriptase,反应体系为 25 L, 其中总 RNA
2 L、引物 P2 1 L、DEPC处理水 125 L、M MuLV
5  bu ffer 5 L、dNTPsM ix ture( 10mmol /L ) 25 L,
R ibonuc lease inhibitor 1 L, R everA idTMM MuLV R e
verse Transcriptase 1 L。放入 PCR仪 ( PTC100TM
Programmab le Therma l Contro ller )进行以下反应:
25 引物退火 10 m in, 42 反应 45 m in, 99 灭活 5
m in, 即获得 cDNA第一链, 可即用于 PCR反应或保
存于 - 20 备用。以互补引物 P4作为特异性引物
进行反转录时,体系同引物 P2,方法参考 ReverA idTM
M MuLV Reverse T ranscriptase操作说明书。
参考 Taq聚合酶使用说明, PCR反应体系为 20
L, 其中 cDNA 20 L, 10  PCR Bu ffer (不含
Mg
2+
) 20 L, P1 ( 20 mo l/L )、P2 ( 20 mol/L )各
10 L, M gCL2 ( 20 mmo l/L ) 12 L, dNTPsM ixture
( 10 mmo l/L ) 06 L, TaqDNA聚合酶 ( 5 U /L) 04
L, ddH2O补足至 20 L,上面覆盖一层石蜡油, 放
入 PCR仪进行扩增, 扩增程序: 94 预变性 5 m in;
94 30 s, 56 45 s, 72o 60 s, 共 35个循环; 最后
72 延伸 7 m in。引物 P3、P4组合 MgCL2 ( 20 mmo l/
L )用量为 13 L,退火温度降为 53 ,其余同引物
P1、P2。
取 5 L上述 PCR产物在含溴化乙锭 ( EB )的
15%的琼脂糖凝胶中进行电泳鉴定,电泳缓冲液为
1 TAE, 泳动速率为 7 V /cm, 紫外灯下观察试验
结果。
14 GVB特异性扩增片段的克隆与测序
将 PCR产物在含溴化乙锭 ( EB )的 10%的琼
脂糖凝胶中进行电泳, 参照 Puc19 DNA /M sp (H ap
 )M arker以及 GeneRulerTM 100 bpDNA Lader,分别
切取约 460 bp与 470 bp的目的条带,应用 UN IQ 10
柱式 DNA胶回收试剂盒 ( Sangon)回收目的片段, 操
作按照产品使用说明进行。按 PCR Product C loning
K it( Sangon)操作说明, 16 连接 pUCmT V ector 16
h。转化大肠杆菌菌株 XL1blue感受态细胞, 于含
有 XGal、IPTG、氨苄青霉素的 LB固体培养基上进
行蓝白斑筛选,碱裂解法提取质粒,并对此质粒进行
PCR鉴定与 P st I单酶切鉴定。质粒 PCR反应体系
同前, 第一步变性时间延长至 60 s。酶切体系包括
提纯质粒 5 L、P st I限制性内切酶 1 L; 适宜的反
应缓冲液 1 L、ddH2O 3 L。37 保温 60m in。
将鉴定出含阳性重组质粒的大肠杆菌菌液送上
海生工生物工程技术服务有限公司测序。测序结果
98
2010年第 5期 杨相昆等:葡萄病毒 B的 RTPCR检测技术研究
提交 NCBI网站中 BLAST, 进行在线序列比较分析。
2 结果与分析
21 总 RNA检测和 RTPCR扩增
试验表明,本试验所提取的总 RNA完整性较好
(图 1) ,可用于 cDNA第一链的合成以及 PCR扩增。
利用 PCR扩增, 分别获得了 460 bp与 470 bp左右
的特异性条带, 与预期设计的扩增片段大小相符
(图 2)。
22 GVB特异性扩增片段克隆及序列分析
提取质粒 DNA, 进行 P st I单酶切鉴定与 PCR
鉴定,都能得到与目标片段大小一致的目标条带
(图 3, 图 4), 说明目的片段已成功克隆到 pUCmT
载体中。
图 1 总 RNA完整性凝胶电泳分析 A: M. Pu c19 DNA /M sp (H ap )M arker; 1. PCR产物
B: M. G eneRu lerTM 100bp DNA Lad er; 1. PCR产物
图 3 重组质粒的 PCR鉴定
A : M. Pu c19 DNA /M sp (H ap )M arker; 1. PCR产物
B: M . G eneRu lerTM 100 bp DNA Lader; 1: PCR产物
图 2 GVB RTPCR产物凝胶电泳
图 4 重组质粒的酶切鉴定
  将鉴定出含阳性重组质粒的大肠杆菌菌液送上
海生工生物工程技术服务有限公司测序。所测得序
列见图 5。将 GVB特异性扩增片段的测序结果提
交 NCB I网站中 BLAST,进行比对分析。结果表明,
GVB用特异性引物成功地扩增出特异性片段, 扩增
片段分别有 460 bp与 470 bp, 与 GenBank中的 GVB
序列 (登录号: X75448)进行比对, 同源性均达 81%
(序列中阴影部分为与 X75448不同的序列 )。从而
进一步验证了利用总 RNA为模板合成 cDNA并进
行 PCR扩增检测 GVB的准确性,可靠性。
3 讨论
以病毒核酸为基础的分子生物学检测方法,因其
具有灵敏度高、适用范围广,不受时间限制和操作简
便快速等优势而逐步成为最受欢迎的果树病毒检测
方法。其中 RTPCR方法在果树病毒检测中应用最
为广泛,技术最为成熟。GVB于 1999年在澳大利亚
99
生物技术通报 B iotechnology  Bulletin 2010年第 5期
图 5 测序结果
第一次被检出后 [ 2]。N assuth[ 7]、N akaune[ 8 ]等相继
利用 RTPCR对 GVB进行了检测, 但由于 RNA极
易降解, 而空气中 RNA酶普遍存在,因此在具体的
试验中快速操作,使用简化的试验步骤, 减少 RNA
暴露在空气中的时间, 成为试验成功与否的关键。
本试验所采用的反转录方法较传统的方法减少了水
浴、冰浴等繁琐的步骤,所有药品一次加完, 简化了
试验步骤,缩短了操作时间, 减少了污染的机会,大
大增加了试验成功的可能性。
植物病毒在长期的进化过程中, 经常与植物
RNA发生重组 ( RNARNA recomb ination) ,且在不同
的地理条件下存在株系分化,这就使得植物病毒的
变异非常广泛。 Shi[ 6] 等利用 GVB编码复制酶
( ORF1 )、外壳蛋白 ( ORF2 )、核苷酸结合蛋白
( ORF3)的基因序列设计引物, 对来自澳大利亚、意
大利、以色列的 20份葡萄样本进行了检测, 并将核
苷酸序列和氨基酸序列与 GenBank中 GVB序列
(登录号: X75448)的进行同源性比较,结果表明,基
因间隔区 ( intergenic reg ion)变异幅度最大 (同源性
为 732% - 976% ), 由 ORF4编码的外壳蛋白变
异幅度最小 (同源性为 813% - 996% )。ORF1变
异幅度从 803% - 998%, ORF5变异幅度从 76%
- 992% ,而且每个区域的变异幅度都是核苷酸序
列大于氨基酸序列。本试验所测序列位置分别位于
ORF1和 ORF5内,与 X75448相比较,核苷酸序列同
源性均为 81%,这与 Shi [ 6]的结果是一致的。检测
到的病毒是否属于不同的株系分化, 还有待于进一
步的考证。
国外对 GVB的研究已经相当深入,但目前该病
毒在国内的研究尚属空白,鲜见利用此技术对 GVB
进行检测的公开报道, 本试验成功地对葡萄 ( Vitis
vinif era L. )上的 GVB进行了 RTPCR检测, 并对扩
增出的目的片段进行回收,克隆, 测序。下一步对此
病毒研究的重点应是利用电镜观察、生物学测定和
免疫学鉴定对该病毒进行全面研究, 并完成该病毒
的全基因组序列分析,在此基础上明确该病毒在国
内的株系分化情况以及分布情况。
参 考 文 献
[ 1] Chou eiri E, Digiaro M, Savin o V, et a.l Fu rther ev idence that grape
v ine virus a is the agen t of kober stem grooving [ C ]12th m eeting
of ICVG, L isbon, 1997, 3940.
[ 2 ] H ab ili N, Sym ons RH. Austral ian Grapegrow er and W inem aker,
1999, 429: 5859.
[ 3] Ryo jiN, M asaak iN. E fficien tm ethod s for sam p le processing and cD
NA synthes is by RTPCR for the detection of grapev ine viru ses and
viroids. Jou rnal ofV irologicalM ethodes, 2006, 134: 244249.
[ 4] L iWH. Stud ies on one step RTPCR detection reagent k it of apple
stem grooving virus[ D] . Sh ih ez:i Sh ihez iUn iversity, 2006
(下转第 106页 )
100
生物技术通报 B iotechnology  Bulletin 2010年第 5期
研磨提取的甘蔗基因组 DNA产量和质量与加液氮
研磨没有差别。表明,在加液氮研磨是没有必要的,
这不仅简化了操作步骤,节约成本,还对难以购买到
液氮地区或提取样品数量很少的研究很有意义。
不过在试验过程中发现,对于叶龄长的成熟叶
片,加液氮更易磨碎叶片。所以,当研磨大批量叶龄
长的成熟叶片时, 加液氮可以提高效率。但对少量
样品, 多花点力气研磨,同样可以达到很好的提取效
果;而对于幼嫩叶片, 没必要加液氮研磨。
参 考 文 献
[ 1] M ing R, M oore PH, W u KK, DH on tA, G laszmann JC, T ew TL. Sug
arcane Im provem en t th rough Breed ing and B iotechnology. P lan t
Breed ing R eview s, 2006, 27: 15118.
[ 2] M anuur J and Doty P. A P rocedure for be isolat ion of deoxyribonucle
ic acid from m icroorgan ism s. JM ol B io, 1961, 3: 585941.
[ 3] Mu rray MG, Thom psonWF. Rapid isolation of h ighm olecu lar w eigh t
p lan t DNA. Nucleic A cids Res, 1980, 8 ( 19) : 43214325.
[ 4] C saik lUM, B ast ian H, B rettschn eider R, et a.l Com parative analysis
of d ifferent DNA extraction protocols: a fast, un iversalm ax iprepara
tion of h igh quality p lantDNA for genet ic evaluation and phy logenet
ic stud ies. P lan tMo lecular B io logy Reporter, 1998, 16: 6986.
[ 5] 易庆平,罗正荣, 张青林. 植物总基因组 DNA提取纯化方法综
述.安徽农业科学, 2007, 35( 25 ) : 77897791.
[ 6 ] 游建华,何新民,李松,曾慧,刘红坚.甘蔗近缘植物 DNA的提取
及导入研究初报.广西农业科学, 1999, 6: 287288.
[ 7] 姚伟,耿广良,余爱丽,张木清,陈如凯. 一种改良的转基因甘蔗
基因组 DNA提取方法.热带亚热带植物学报, 2004, 12 ( 3 ):
257260.
[ 8] 王爱勤,杨丽涛, 王自章, 韦字拓, 何龙飞, 李杨瑞. 甘蔗基因组
DNA提取方法的比较.中国糖料, 2004, 3: 14.
[ 9] 王英,邱海燕,高和琼,黄东益,庄南生.甘蔗基因组 DNA提取方
法的研究.中国农学通报, 2008, 24 ( 12) : 4449.
[ 10] V arm a A, PadhH, Sh rivastava N. Plant genom ic DNA isolat ion: an
art or a science. B iotechnology Journa,l 2007, 2( 3) : 38692.
[ 11] 黄建安,黄意欢,罗军武,等. 茶树基因组 DNA的高效提取方
法.湖南农业大学学报 (自然科学版 ) 2003, 29( 5 ): 402405.
[ 12] Edw ardsK, Johnstone C, Thom pson C. A sim p le and rap id m ethod
for th e p reparation of genom ic p lan tDNA for PCR an alysis. Nu cleic
A cids Res, 1991, 19: 13491352.
[ 13] Thom son D, H enry R. U se of DNA from d ry leaves for PCR and
RAPD ana lysis. P lant M olecular B io logy Reporter, 1993, 11 ( 3 ):
202206.
[ 14] S tew art CN Jr, V ia LE. A rap id CTAB DNA isolation techn ique use
fu l for RAPD f ingerp rint ing and oth er PCR app licat ion s. B io T ech
n iques, 1993, 14: 748751.
[ 15] H ein ze B. RAPD react ion s from crude plant DNA. M ol B iotechnolo
gy, 1994, 1( 3 ): 307310.
[ 16 ] 王珍,方宣钧. 植物 DNA分离. 分子植物育种, 2003, 1 ( 2 ):
281288.
[ 17] 卢振宇,李明顺,谢传晓,等.玉米叶片 DNA快速提取方法改进
研究.玉米科学, 2008, 16 ( 2) : 5053, 55.
[ 18] 魏琦超,畅丽萍,周岩,宫俊丽,王慧娟.一种简便实用的玉米干
种子基因组 DNA提取方法.广东农业科学, 2009, 6: 165167.
[ 19 ] 黄冰雪,李唯,姜寒玉,等.抗旱型小麦基因组 DNA的提取及
RAPD反应体系优化.甘肃农业大学学报, 2009, 44( 1 ) : 5559.
(上接第 100页 )
[ 5 ] M inafra A, H adidi A. Sens itive d etect ion of grapev ine v iru s A, B, or
leafrollassociated III from viru liferou sm ealybugs and in fected t issue
by cDNA am pl if icat ion. V iro lM eth, 1994, 47: 175188.
[ 6 ] Sh iB J, Nured in, H ab il,i et a.l Extens ive variat ion of sequen ce w ith in
isolates of Grapevin e V iru s B. V irusG enes, 2004, 29 ( 2) : 279285.
[ 7] Nassu th A, PolariE, H elm eczy K, et a.l Im proved RNA extract ion and
on etub e RTPCR assay sim u ltaneou s detection of control p lan t RNA
p lus several viruses in p lan t extracts. Jou rnal ofV irolog icalM ethodes,
2000, 90: 3749.
[ 8] Nak aune R, Nak ano M. E ff icient m ethods for sam p le processing and
cDNA synthes is by RTPCR for th e detect ion of grapevin e v iru ses and
viroids. Journal ofV irologicalM ethodes, 2006, 134: 244249.
106