全 文 :第26卷 第8期
2014年8月
生命科学
Chinese Bulletin of Life Sciences
Vol. 26, No. 8
Aug., 2014
文章编号:1004-0374(2014)08-0852-06
DOI: 10.13376/j.cbls/2014122
收稿日期:2014-04-01; 修回日期:2014-05-06
基金项目:国家重点基础研究发展计划(“973”项目)
(2012CB910300);国家自然科学基金项目(30970644)
*通信作者:E-mail: lianwen@nankai.edu.cn;Tel: 022-
23507880
O-GlcNAc修饰对蛋白质泛素化降解途径的影响
周 丰1,刘晓燕2,王玉秋2,张连文2*
(1 天津大学药物科学与技术学院,天津 300072;2 南开大学药学院,天津 300071)
摘 要:O-GlcNAc修饰是一种特殊的糖基化修饰,几乎参与生物体内所有细胞过程的调控。该修饰与泛
素化作为两种重要的蛋白质翻译后修饰形式,都与 2型糖尿病、神经退行性疾病、癌症等疾病密切相关。
O-GlcNAc修饰对蛋白质泛素化降解途径的影响主要体现在 4个方面:(1) O-GlcNAc修饰能够抑制 26S蛋
白酶体的 ATPase活性;(2) O-GlcNAc修饰会减少某些底物蛋白的泛素化降解;(3) O-GlcNAc修饰泛素化
相关酶并调节其功能;(4) 某些蛋白质 (包括调控因子 )发生 O-GlcNAc修饰后间接影响蛋白质泛素化。
关键词:O-GlcNAc糖基化;泛素化;蛋白酶体途径;蛋白质间相互作用
中图分类号:Q55 文献标志码:A
O-GlcNAcylation influences ubiquitin proteasome degradation of protein
ZHOU Feng1, LIU Xiao-Yan2, WANG Yu-Qiu2, ZHANG Lian-Wen2*
(1 School of Pharmaceutical Science and Technology, Tianjin Universtiy, Tianjin 300072, China;
2 College of Pharmacy, Nankai University, Tianjin 300071, China)
Abstract: O-GlcNAcylation is a special protein glycosylation, which plays crucial roles in various cellular events.
Both O-GlcNAcylation and ubiquitination are important post-translational modification. They are closely related to
type 2 diabetes, neurodegenerative diseases, cancer and other diseases. The cross-talk between O-GlcNAcylation
and ubiquitination could be divided into four categories: (1) O-GlcNAcylaion of the 26S proteasome regulatory
subunit inhibits its ATPase activity; (2) O-GlcNAcylaion on some proteins could decrease their ubiquitin proteasome
degradation; (3) O-GlcNAcylation of ubiquitination enzymes regulates their functions; (4) O-GlcNAcylation on
some protein (including regulatory factors) affects ubiquitination process indirectly.
Key words: O-GlcNAcylation; ubiquitination; UPP; cross-talk
翻译后修饰 (post-translational modification)是
蛋白质生物合成过程中的重要步骤,蛋白质在核糖
体由 mRNA翻译成多肽链,多肽链经过翻译后修
饰继而成为成熟的蛋白质产物。对于真核生物的大
部分蛋白质,翻译后修饰是蛋白质生物合成过程中
比较靠后的步骤,对蛋白质的活性的调节起着重要
作用。翻译后修饰主要有糖基化、泛素化、磷酸化、
乙酰化、烷基化等,不同形式的翻译后修饰之间存
在相互影响。
O-连接 β-N-乙酰葡萄糖胺修饰 (O-GlcNAc修
饰 )是一种特殊的 O糖基化,与其他翻译后修饰之
间有很多联系,如 O-GlcNAc修饰与磷酸化有相互
作用关系,这种作用体现在信号转导、转录、慢性
疾病方面 [1];Sakabe和 Hart [2]证实,O-GlcNAc修
饰影响组蛋白的甲基化和乙酰化以及精氨酸甲基转
移酶 (CARM1)的活性;Allison等 [3]发现 RelA在
T305位点的 O-GlcNAc修饰会促进 K310位点的乙
酰化;Fujiki等 [4]证实,组蛋白赖氨酸甲基转移酶
(MLL5)的 O-GlcNAc修饰能够促进 H3K4甲基化
从而实现其功能。
泛素化与其他翻译后修饰之间也有很多联系,
周 丰,等:O-GlcNAc修饰对蛋白质泛素化降解途径的影响第8期 853
如磷酸化和泛素化之间的相互作用 [5];赖氨酸残基
乙酰化和泛素化之间的相互作用对控制蛋白质稳定
性起到重要作用 [6];组蛋白的甲基化和泛素化之间
的相互作用会影响基因表达和蛋白质稳定性 [7]。
本文关注 O-GlcNAc修饰对蛋白质泛素化降解
途径的影响。O-GlcNAc修饰与泛素化作为两种重
要的蛋白质翻译后修饰形式,都与 2型糖尿病、神
经退行性疾病、癌症等疾病密切相关。近年来越来
越多的报道集中于两者的关系,对两者关系的研究
是十分重要的,为阐明一些分子机制以及治疗相关
慢性疾病起到重要作用。
1 O-GlcNAc修饰概述
O-连接 β-N-乙酰葡萄糖胺修饰称为O-GlcNAc
修饰 (O-GlcNAcylation),它是最早由 Torres和 Hart[8]
发现的一种以 O-糖苷键将单个 N-乙酰葡糖胺
(GlcNAc)连接到蛋白质的丝氨酸、苏氨酸羟基上的
一种蛋白质翻译后修饰。随着质谱技术的发展,已
知的 O-GlcNAc修饰蛋白质的数量日趋增长,根据
Ma 和 Hart [9]2014年的最新报道,O-GlcNAc修饰
蛋白质已达 4 000种之多。它们几乎参与生物体内
所有细胞过程的调控,包括基因转录、信号转导、
细胞周期调控、蛋白质酶解等 [10-11]。O-GlcNAC修
饰与 2型糖尿病、神经退行性疾病、癌症、心血管
疾病等密切相关 [12]。
与磷酸化拥有大量的蛋白激酶和磷酸酶不同的
是,O-GlcNAc糖基化的调控过程只需要两个酶的
参与:β-N-乙酰氨基葡萄糖转移酶 (N-acetylglucosaminyl
transferase, OGT)和 β-N-乙酰氨基葡萄糖苷酶 (β-N-
acetylglucosamindase, OGA)。其中,OGT负责O-GlcNAc
的添加,而 OGA则负责 O-GlcNAc的移除。
人体内主要存在 3种类型的 β-N-乙酰氨基葡
萄糖转移酶 (OGT):ncOGT (nuclear cytoplasmic,主
要存在于核质 )、mOGT (mitochondrial,主要存在于
线粒体 )以及 sOGT (short isoform,截短型 OGT),
三者的 C端催化结构域完全相同,而区别在于 N
端结构域 34肽重复序列 (tetratricopeptide repeats,
TPR)的数量,其中以 ncOGT TPR数量最多,而
sOGT 最少 ( 图 1) [13]。2011 年,Sakaidani 等 [14] 在
果蝇体内发现了一种全新的 OGT——EOGT (主要
存在于内质网 ),它主要负责细胞外的 O-GlcNAc
修饰,通过对细胞外分泌蛋白和细胞膜糖蛋白的修
饰来介导细胞间或细胞与胞外基质的相互作用。在
小鼠体内也发现了 EOGT的同源基因 [15]。Cohen
等 [16]在 2014年发现亚当奥利弗综合征 (Adams-Oliver
syndrome,常染色体隐性遗传病 )与 EOGT的突变
有关,但机制尚不清楚。
ncOGT和 sOGT是细胞内两种主要的 OGT类
型,但两者修饰的底物蛋白有很大差异。Feng等 [17]
通过瞬时过表达 OGT和 western blot检测,发现表
达 ncOGT和 sOGT的 HEK-293细胞中 O-GlcNAc修
饰蛋白存在明显差异,推测不同亚型 OGT可能修
饰不同的底物蛋白,特别是一些转录因子。
OGT 也会发生自身糖基化,这与一些磷酸
激酶能够发生自身磷酸化现象类似。Lubas 和
Hanover [18]的体外实验发现,sOGT不仅能够糖基
化其底物蛋白或多肽,而且它能够进行自身糖基化
修饰。许多研究表明,O-GlcNAc修饰会使蛋白质
的结构和功能发生变化,进而对许多细胞途径起到
调控作用 [19],但是 O-GlcNAc修饰对 OGT功能的
影响还不清楚。
人体内 OGA有长、短两种亚型,长亚型 C端
与乙酰转移酶 (histone acetyltransferase)有同源性,
被称为 HAT结构域;短亚型无此结构。OGA的 N
端与线虫的透明质酸酶有高度同源性 [20]。长亚型
主要分布于细胞质,短亚型主要分布于细胞核。至
今已开发多种 OGA特异性小分子抑制剂用于
O-GlcNAc修饰的研究,如 PUGNAc、LOGNAc、
Thiamet-G。这些分子工具已广泛用于 O-GlcNAc修
饰的功能研究。
O-GlcNAc修饰的糖供体 UDP-GlcNAc是通过
氨基已糖合成途径 (hexosamine biosynthetic pathway,
HBP)合成的 [21],所以葡萄糖的浓度,特别是氨基
葡萄糖 (glucosamine, GlcN)的浓度会影响蛋白质的
O-GlcNAc修饰水平 [17]。这种调节方式的运用为
O-GlcNAc 修饰调控提供了另一种途径 [22]。
从以上可以看出,sOGT、ncOGT的过表达以
及 GlcN和 OGA抑制剂 PUGNAc的加入都会使
O-GlcNAc修饰增加,但体外研究表明,这 4种方
式对泛素化相关基因的影响也存在差异 [17]。
图1 不同亚型OGT示意图
生命科学 第26卷854
2 泛素化修饰概述
泛素化在通过蛋白质的合成降解以及调节一
些蛋白质的功能来维持细胞内的内在平衡。泛素化
是一个三步酶级联反应,其中包括泛素活化酶
(ubiquitin-activating enzyme, E1)、泛素结合酶 (ubiquitin-
conjugating enzyme, E2)、泛素连接酶 (ubiquitin-ligase,
E3)参与催化的多步反应,最终将泛素分子连接至
靶蛋白的赖氨酸残基上。蛋白酶体系统可以识别已
泛素化的蛋白质并将其降解,这就是泛素 -蛋白酶
体 (ubiquitin proteasome pathway, UPP)降解途径。值
得一提的是,编码人源的两个 E1亚型是单一保守
基因,而编码 E2的有 50个基因,编码 E3的则更多,
有 500多个基因参与编码 [23]。泛素连接酶 E3能识
别泛素化底物,是决定泛素化特异性的关键因素。
泛素化连接酶 E3有 3种结构域,即环指型结构域、
HECT (homologous to E6-AP carboxyl terminus)型结
构域和 SCF (skp1-cullin-F-box)复合型结构域。
F-box蛋白是泛素化中一类重要蛋白质,SCF
中的 F-box蛋白决定了连接酶的底物特异性。已知
的人源 F-box蛋白有 69种,根据其 C端二级结构
的不同,可分为 3类,分别为 FBXL、FBXW和
FBXO。其中,FBXL是指 C端富含亮氨酸重复序
列的 F-box蛋白;FBXW是指 C端含WD重复序
列的 F-box蛋白;FBXO中的“O”代表其他,是
指 C端含其他二级结构,如亮氨酸拉链、锌指结构、
环指结构、TPR和脯氨酸富集区等。Feng等 [17]对
HEK293细胞O-GlcNAc修饰的研究表明,O-GlcNAc
修饰会调节某些泛素化相关的基因特别是会下调某
些 F-box基因,如 FBXW10、FBXO4。
泛素也可以通过特定的酶,将其从泛素化蛋
白质上移除,这种酶被称作去泛素化酶 (deubi-
quitinating enzymes, DUB)[24],主要有两大类:泛素
特异性修饰酶和泛素羧基端水解酶 (ubiquitin COOH-
terminal hydrolase, UCH),其原理都是催化水解泛
素 C端多肽链的连接,从而去泛素化。
3 O-GlcNAc修饰蛋白质泛素化降解途径的影响
根据文献报道,O-GlcNAc修饰对泛素化降解
途径的影响主要体现在 4个层次:(1)蛋白酶体活性;
(2)底物蛋白的翻译后修饰;(3)泛素化相关酶;(4)
转录因子及某些其他蛋白质。
3.1 O-GlcNAc修饰抑制26S蛋白酶体的ATPase活性
最普遍的蛋白酶体形式是 26S蛋白酶体,其包
含有一个 20S核心颗粒和两个 19S调节颗粒,其中
19S调节颗粒与 O-GlcNAc之间的关系最为密切。
2003年,Zhang 等 [25]提出 O-GlcNAc修饰对蛋白
酶体有内源性抑制作用的观点,其机理是 26S蛋白
酶体活性可以被 O-GlcNAc修饰抑制。O-GlcNAc
修饰是通过抑制 26S蛋白酶体的 ATPase活性来抑
制转录因子 Sp1和疏水肽的蛋白质水解。哺乳动物
蛋白酶体19S帽子的RPT2 ATPase可以被O-GlcNAc
修饰,随其修饰的增加,蛋白酶体功能降低。
桥粒斑珠蛋白 (plakoglobin)是钙黏素和肌动蛋
白的连接部分,也是一个重要的桥粒,参与由 E-
钙黏素 (E-cadherin)介导的细胞间黏附与信号转导
两大功能。Hu等 [26]对小鼠的角质细胞的研究表明,
O-GlcNAc修饰水平升高 (过表达 OGT)会调节
plakoglobin翻译后的稳定性和角质形成细胞间的
黏附作用,使 plakoglobin的半衰期延长,其机理是
26S蛋白酶体受 O-GlcNAc修饰,从而抑制大鼠肾
细胞中某些蛋白质降解,延长 plakoglobin的半衰
期 [25]。
3.2 O-GlcNAc修饰能够减少某些底物蛋白的泛素
化降解
很多基因同时受 O-GlcNAc修饰、磷酸化以
及泛素化的调控。O-GlcNAc修饰和磷酸化之间的
关系相对明显,两者具有相同的修饰位点,在翻
译后修饰的过程中存在竞争和相互抑制的关系。
O-GlcNAc修饰位点常定位在与蛋白质降解相关的
PEST序列 [序列富含脯氨酸 (P)、谷氨酸 (E)、丝
氨酸 (S)和苏氨酸 (T)],PEST序列是泛素蛋白酶体
通路中瞄准的靶蛋白质的信号 [27]。PEST序列的激
活通常发生在磷酸化修饰后 [28],由于 O-GlcNAc和
磷酸化的竞争关系,可以假定 O-GlcNAc修饰抵消
磷酸化作用,从而保护蛋白质 [29]。另外,Dias等 [30]
在 2012年发现,O-GlcNAc修饰可以直接调节大量
的激酶,说明 O-GlcNAc修饰和磷酸化在细胞信号
转导中的复杂关系。
肿瘤抑制蛋白 P53的 O-GlcNAc修饰可抑制它
的泛素化降解,增加 P53的稳定性。Yang等 [31]发
现 P53蛋白的 S149位点能够发生 O-GlcNAc修饰,
修饰后 P53蛋白与泛素连接酶的相互作用显著减
弱,泛素化修饰减少,从而减少了 P53蛋白被蛋白
酶体途径降解,提高了 P53蛋白的稳定性。通过定
点突变的方法,发现P53的S149位点上的O-GlcNAc
糖基化与 T155位点上的磷酸化相竞争,削弱了磷
酸化修饰对蛋白质降解的促进作用 [32-34]。
周 丰,等:O-GlcNAc修饰对蛋白质泛素化降解途径的影响第8期 855
组蛋白 H2B是核小体的基本结构单位。Fujiki
等 [35]通过体外和细胞实验证明,组蛋白 H2B的
S112是 O-GlcNAc修饰位点,O-GlcNAc修饰部分
可以作为组蛋白 H2B泛素连接酶识别的锚点,组
蛋白 H2B的 S112位点 O-GlcNAc修饰促进了 H2B
K120的单点泛素化,推测为转录激活作用。Chen
等 [36]在 2013年用蛋白质亲和纯化的方法发现,
TET2 (ten eleven translocation enzymes 2)能直接与
OGT作用,虽然这种特殊的相互作用不能调节
TET2的酶活性,但有利于 OGT依赖性组蛋白
O-GlcNAc糖基化。此外,OGT与 TET2的转录起
始位点相关。TET2的下调会减少组蛋白 H2B S112
位点的 O-GlcNAc标记,从而影响 H2B K120的单
点泛素化。
β-淀粉样肽 (amyloid-β)是阿尔兹海默症的关
键因素,其前体淀粉样前体蛋白 (amyloid precursor
protein, APP)既可以被 O-GlcNAc修饰,也可以被
SUMO修饰,这两种修饰的增加都会降低 β-淀粉
样肽的集聚水平 [37]。
热休克蛋白 70 (70-kDa heat-shock protein family,
Hsc70)是热休克蛋白家族中重要成员,其在正常细
胞中表达水平较低,而在应激状态下会明显升高。
Guinez等 [29]在 HepG2细胞热应激实验中发现,细
胞受到热应激之后,O-GlcNAc修饰和泛素化都会
增加,其机理可能是 OGT和 Hsp70在阻止蛋白质
聚集和降解中发挥协同作用,这种协同作用可通过
结合 Hsp70中 GlcNAc暴露的部分抑制蛋白酶体活
性从而保护靶蛋白质。
Guinez等 [29]提出一个假说:O-GlcNAc修饰
起保护信号作用。一些蛋白质符合这一假说,如
Han和 Kudlow [38]的研究发现,Sp1的 O-GlcNAc
修饰降低会使其易被蛋白酶体降解;Cheng和Hart [39]
发现 β-雌激素受体 (β-estrogen receptor, β-ER)的糖
基化形式比非糖基化形式更不易被蛋白酶体降解。
3.3 O-GlcNAc修饰泛素化相关酶并调节其功能
O-GlcNAc修饰调节泛素化相关酶的功能,如
泛素活化酶 E1[40]、NEDD4-1[41]、RBP2[42]、RING1、
RNF2[43]和一些去泛素化酶 [44-45] (UCHL1)。
Guinez等 [29]在实验中发现,细胞受到热击胁
迫时,细胞总的 O-GlcNAc 修饰水平升高,但
O-GlcNAc修饰的蛋白质并没有通过抑制蛋白酶体
的活性增加蛋白质稳定性,由于泛素激活酶 E1被
O-GlcNAc修饰,E1的 O-GlcNAc修饰水平的升高
对泛素化降解途径起到激活作用,促进了蛋白质的
降解。Guinez等 [29]最终推论:泛素与 O-GlcNAc
的比例可能是一个开关,能控制蛋白质进入降解路
径或修复路径,当 O-GlcNAc修饰不稳定时 (上调
或下调 ),泛素化也遵循同样的变化。
Zaro等 [41]利用 GlcNAlk (炔基修饰的葡萄糖
类似物,alkynyl-modified GlcNAc analog) 来标记
O-GlcNAc修饰,首次发现连接酶 NEDD4-1上的
O-GlcNAc修饰位点,这种修饰对 NEDD4-1的功能
影响还未见报道,但可以推测 O-GlcNAc修饰对
NEDD4-1的稳定性、定位,以及与底物的相互作
用有关。
Cole和 Hart[45]用蛋白质组学分析的方法,首
次证明泛素羧基端水解酶 L1 (ubiquitin COOH-
terminal hydrolase-L1, UCHL1)上的 O-GlcNAc修饰
位点。但 O-GlcNAc修饰对其功能的影响还未见
报道。
3.4 某些蛋白质受O-GlcNAc修饰后间接影响其他
蛋白质泛素化
某些蛋白质受 O-GlcNAc修饰后通过蛋白质间
的相互作用,从而影响了某些基因或蛋白质的表达
水平,也包括一些转录因子。
FBXW10是 F-box蛋白家族成员,参与核纤层
蛋白诱导的某些 HP1亚型的的蛋白酶体降解 [46]。
Feng等 [17]实验表明,sOGT、ncOGT的过表达以
及 GlcN和 OGA抑制剂 PUGNAc的加入等四种使
O-GlcNAc修饰增加的方式,都会使 FBXW10在转
录和翻译水平下调,但其机理并不清楚,可能是通
过某些转录因子发挥作用。
E-钙黏蛋白 (E-cadherin)是肿瘤发生和转移过
程中的重要因子。宓文义 [47]在研究 O-GlcNAc修
饰对肿瘤转移机制的影响时发现,O-GlcNAc修饰
促进了 E-cadherin的降解。其机理是 P120蛋白与
E-cadherin相互作用能够稳定 E-cadherin,而 P120
的 O-GlcNAc修饰增加抑制其与 E-cadherin的相互
作用,促进 E-cadherin的泛素化。O-GlcNAc修饰
通过 P120蛋白来影响 E-cadherin的泛素化从而使
E-cadherin走向泛素蛋白酶体途径的降解,进而影
响了 O-GlcNAc对肿瘤发生与转移的影响。
Dalta-乳铁蛋白 (Dalta-Lf)是 Skp1的转录因子,
它可以上调 DcpS、SKP1和 Bax基因,引起细胞周
期阻滞和凋亡。Hardiville等 [48]通过 Dalta-Lf的糖
基化突变体发现,S10位点的 O-GlcNAc修饰能够
阻断泛素化依赖性蛋白质的水解作用,从而增加
Dalta-Lf的稳定性和转录活性。他们还发现 (391)
生命科学 第26卷856
KSQQSSDPDPNCVD (404)的序列作为功能性 PEST
序列负责 Delta-Lf降解,L379位点作为多聚泛素的
修饰位点。
4 展望
O-GlcNAc修饰的研究与其他研究较成熟的翻
译后修饰 (例如:磷酸化、N-糖基化、乙酰化和泛
素化 )相比处于起步阶段 [9];但它对其他翻译后修
饰有重要的影响,其中 O-GlcNAc修饰与磷酸化之
间的关系研究地较多,而与泛素化修饰之间的关系
却研究相对较少,在本文中,O-GlcNAc修饰对泛
素化降解途径的影响主要体现在 4个层次:(1)蛋
白酶体活性;(2)底物蛋白翻译后修饰;(3)泛素化
相关酶;(4)转录因子及某些其他蛋白质。其中蛋
白酶体活性层次的影响是最直接的,而底物蛋白翻
译后修饰层次的影响,特别是与磷酸化相互作用而
产生的影响是最普遍的。随着证实的 O-GlcNAc修
饰蛋白质数量的增多,O-GlcNAc修饰的泛素化相
关酶这类蛋白质会不断增多,其影响机理也会日益
明晰。转录因子及某些其他蛋白质这一层次的例证
较少,这是因为影响的复杂性以及很多分子机制未
阐明而导致的,但这种方式的影响将会是最广泛的。
相信随着 O-GlcNAc修饰相关研究的不断深入,新
的检测技术的不断发展,泛素化相关酶和转录因子
及其他某些蛋白质这两类将会成为研究的重点,实
例将会越来越多,其中的复杂机理也会更加明晰,
也将为阐明一些分子机制以及治疗与两者有密切联
系的疾病 (2型糖尿病、神经退行性疾病、癌症等 )
起到重要作用。
[参 考 文 献]
[1] Hart GW, Slawson C, Ramirez-Correa G, et al. Cross talk
between O-GlcNAcylation and phosphorylation: roles in
signaling, transcription, and chronic disease. Annu Rev
Biochem, 2011, 80: 825-58
[2] Sakabe K, Hart GW. O-GlcNAc transferase regulates
mitotic chromatin dynamics. J Biol Chem, 2010, 285(45):
34460-8
[3] Allison DF, Wamsley JJ, Kumar M, et al. Modification of
relA by O-linked N-acetylglucosamine links glucose
metabolism to NF-κB acetylation and transcription. Proc
Natl Acad Sci USA, 2012, 109(42): 16888-93
[4] Fujiki R, Chikanishi T, Hashiba W, et al. GlcNAcylation
of a histone methyltransferase in retinoic-acid-induced
granulopoiesis. Nature, 2009, 459(7245): 455-9
[5] Hunter T. The age of crosstalk: phosphorylation,
ubiquitination, and beyond. Mol Cell, 2007, 28(5): 730-8
[6] Caron C, Boyault C, Khochbin S. Regulatory cross-talk
between lysine acetylation and ubiquitination: role in the
control of protein stability. Bioessays, 2005, 27(4): 408-15
[7] Shukla A, Chaurasia P, Bhaumik SR. Histone methylation
and ubiquitination with their cross-talk and roles in gene
expression and stability. Cell Mol Life Sci, 2009, 66(8):
1419-33
[8] Torres CR, Hart GW. Topography and polypeptide distri-
bution of terminal N-acetylglucosamine residues on the
surfaces of intact lymphocytes. Evidence for O-linked
GlcNAc. J Biol Chem, 1984, 259(5): 3308-17
[9] Ma J, Hart GW. O-GlcNAc profiling: from proteins to
proteomes. Clin Proteomics, 2014, 11(1): 8
[10] Hwang JY, Mangala LS, Fok JY, et al. Clinical and
biological significance of tissue transglutaminase in
ovarian carcinoma. Cancer Res, 2008, 68(14): 5849-58
[11] Tapia MA, Gonzalez-Navarrete I, Dalmases A, et al.
Inhibition of the canonical IKK/NF-κB pathway sensitizes
human cancer cells to doxorubicin. Cell Cycle, 2007,
6(18): 2284-92
[12] Liu F, Shi J, Tanimukai H, et al. Reduced O-GlcNA-
cylation links lower brain glucose metabolism and tau
pathology in Alzheimers disease. Brain, 2009, 132(Pt 7):
1820-32
[13] Lazarus BD, Love DC, Hanover JA. Recombinant O-Glc-
NAc transferase isoforms: identification of O-GlcNAcase,
yes tyrosine kinase, and tau as isoform-specific substrates.
Glycobiology, 2006, 16(5): 415-21
[14] Sakaidani Y, Nomura T, Matsuura A, et al. O-linked-N-
acetylglucosamine on extracellular protein domains mediates
epithelial cell-matrix interactions. Nat Commun, 2011, 2:
583
[15] Sakaidani Y, Ichiyanagi N, Saito C, et al. O-linked-N-
acetylglucosamine modification of mammalian notch
receptors by an atypical O-GlcNAc transferase Eogt1.
Biochem Biophys Res Commun, 2012, 419(1): 14-9
[16] Cohen I, Silberstein E, Perez Y, et al. Autosomal recessive
adams-oliver syndrome caused by homozygous mutation
in EOGT, encoding an EGF domain-specific O-GlcNAc
transferase. Eur J Hum Genet, 2014, 22(3): 374-8
[17] Feng Z, Hui Y, Ling L, et al. FBXW10 is negatively
regulated in transcription and expression level by protein
O-GlcNAcylation. Biochem Biophys Res Commun, 2013,
438(2): 427-32
[18] Lubas WA, Hanover JA. Functional expression of
O-linked GlcNAc transferase. Domain structure and
substrate specificity. J Biol Chem, 2000, 275(15): 10983-8
[19] Riu IH, Shin IS, Do SI. Sp1 modulates ncOGT activity to
alter target recognition and enhanced thermotolerance in E.
coli. Biochem Biophys Res Commun, 2008, 372(1): 203-9
[20] Heckel D, Comtesse N, Brass N, et al. Novel immunogenic
antigen homologous to hyaluronidase in meningioma.
Hum Mol Genet, 1998, 7(12): 1859-72
[21] Kreppel LK, Hart GW. Regulation of a cytosolic and
nuclear O-GlcNAc transferase. Role of the tetratricopep-
tide repeats. J Biol Chem, 1999, 274(45): 32015-22
[22] Federici M, Menghini R, Mauriello A, et al. Insulin-
周 丰,等:O-GlcNAc修饰对蛋白质泛素化降解途径的影响第8期 857
dependent activation of endothelial nitric oxide synthase
is impaired by O-linked glycosylation modification of
signaling proteins in human coronary endothelial cells.
Circulation, 2002, 106(4): 466-72
[23] Bhat KP, Greer SF. Proteolytic and non-proteolytic roles
of ubiquitin and the ubiquitin proteasome system in tran-
scriptional regulation. Biochim Biophys Acta, 2011,
1809(2): 150-5
[24] Nakayama K. Growth and progression of melanoma and
non-melanoma skin cancers regulated by ubiquitination.
Pigment Cell Melanoma Res, 2010, 23(3): 338-51
[25] Zhang F, Su K, Yang X, et al. O-GlcNAc modification is
an endogenous inhibitor of the proteasome. Cell, 2003,
115(6): 715-25
[26] Hu P, Berkowitz P, Madden VJ, et al. Stabilization of
plakoglobin and enhanced keratinocyte cell-cell adhesion
by intracellular O-glycosylation. J Biol Chem, 2006,
281(18): 12786-91
[27] Rechsteiner M, Rogers SW. PEST sequences and regula-
tion by proteolysis. Trends Biochem Sci, 1996, 21(7):
267-71
[28] Martinez LO, Agerholm-Larsen B, Wang N, et al.
Phosphorylation of a pest sequence in ABCA1 promotes
calpain degradation and is reversed by ApoA-I. J Biol
Chem, 2003, 278(39): 37368-74
[29] Guinez C, Mir AM, Dehennaut V, et al . Protein
ubiquitination is modulated by O-GlcNAc glycosylation.
FASEB J, 2008, 22(8): 2901-11
[30] Dias WB, Cheung WD, Hart GW. O-GlcNAcylation of
kinases. Biochem Biophys Res Commun, 2012, 422(2):
224-8
[31] Yang WH, Kim JE, Nam HW, et al. Modification of p53
with O-linked N-acetylglucosamine regulates p53 activity
and stability. Nat Cell Biol, 2006, 8(10): 1074-83
[32] Lim K, Chang HI. O-GlcNAc modification of Sp1 inhibits
the functional interaction between Sp1 and Oct1. FEBS
Lett, 2009, 583(3): 512-20
[33] Zachara NE. Detection and analysis of (O-linked β-N-
acetylglucosamine)-modified proteins. Methods Mol Biol,
2009, 464: 227-54
[34] Wang Z, Udeshi ND, OMalley M, et al. Enrichment and
site mapping of O-linked N-acetylglucosamine by a
combination of chemical/enzymatic tagging, photochemical
cleavage, and electron transfer dissociation mass
spectrometry. Mol Cell Proteomics, 2010, 9(1): 153-60
[35] Fujiki R, Hashiba W, Sekine H, et al. GlcNAcylation of
histone H2B facilitates its monoubiquitination. Nature,
2011, 480(7378): 557-60
[36] Chen Q, Chen Y, Bian C, et al. TET2 promotes histone
O-GlcNAcylation during gene transcription. Nature, 2013,
493(7433): 561-4
[37] Zhang YQ, Sarge KD. Sumoylation of amyloid precursor
protein negatively regulates Aβ aggregate levels. Biochem
Biophys Res Commun, 2008, 374(4): 673-8
[38] Han I, Kudlow JE. Reduced O-glycosylation of Sp1 is
associated with increased proteasome susceptibility. Mol
Cell Biol, 1997, 17(5): 2550-8
[39] Cheng X, Hart GW. Alternative O-glycosylation/O-phos-
phorylation of serine-16 in murine estrogen receptor β:
post-translational regulation of turnover and transactiva-
tion activity. J Biol Chem, 2001, 276(13): 10570-5
[40] Guinez C, Mir AM, Dehennaut V, et al. Protein ubiquitina-
tion is modulated by O-GlcNAc glycosylation. FASEB J,
2008, 22(8): 2901-11
[41] Zaro BW, Yang YY, Hang HC, et al. Chemical reporters
for fluorescent detection and identification of O-GlcNAc-
modified proteins reveal glycosylation of the ubiquitin li-
gase NEDD4-1. Proc Natl Acad Sci USA, 2011, 108(20):
8146-51
[42] Wang ZI, Udeshi ND, Slawson C, et al. Extensive cross
talk between O-GlcNAcylation and phosphorylation regu-
lates cytokinesis. Sci Signal, 2010, 3(104): Ra2
[43] Teo CF, Ingale S, Wolfert MA, et al. Glycopeptide-specific
monoclonal antibodies suggest new roles for O-GlcNAc.
Nat Chem Biol, 2010, 6(5): 338-43
[44] Klement E, Lipinszki Z, Kupihar Z, et al. Enrichment of
O-GlcNAc modified proteins by the periodate oxidation-
hydrazide resin capture approach. J Proteome Res, 2010,
9(5): 2200-6
[45] Cole RN, Hart GW. Cytosolic O-glycosylation is abundant
in nerve terminals. J Neurochem, 2001, 79(5): 1080-9
[46] Chaturvedi P, Parnaik VK. Lamin A rod domain mutants
target heterochromatin protein 1alpha and beta for protea-
somal degradation by activation of F-box protein,
FBXW10. PLoS One, 2010, 5(5): e10620
[47] 宓文义. O-GlcNAc糖基化修饰在肿瘤发生与转移过程
中的作用及其机制研究[D]. 青岛: 中国海洋大学, 2011
[48] Hardiville S, Hoedt E, Mariller C, et al. O-GlcNAcylation/
phosphorylation cycling at Ser10 controls both transcrip-
tional activity and stability of δ-lactoferrin. J Biol Chem,
2010, 285(25): 19205-18