免费文献传递   相关文献

Stability of xanthine oxidase from Arthrobacte

细菌黄嘌呤氧化酶的稳定性



全 文 :第7卷第2期
2009年3月
生 物 加 工 过 程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
Vol.7No.2
Mar.2009
收稿日期:2008-04-16
基金项目:工业微生物教育部重点实验基金资助项目(KLIBKF200502)
作者简介:孙 艳(1979—),女,江苏连云港人,博士研究生,研究方向:酶工程;王 武(联系人),教授,博士生导师,Email:wangwu@jiangna.edu.cn
细菌黄嘌呤氧化酶的稳定性
孙 艳,王 静,杨海麟,王 武
(江南大学 工业生物技术教育部重点实验室,无锡 214122)
摘 要:研究pH、温度、金属离子和一些添加剂对黄嘌呤氧化酶稳定性的影响。结果表明:黄嘌呤氧化酶在
pH45~75的范围内较稳定;反应最适温度为37℃。在常温25~35℃该酶比较稳定,经45℃处理2h,可保持
50%左右,不同种类、不同浓度的金属离子对黄嘌呤氧化酶活性表现出程度不同的激活或抑制作用;添加谷氨酸和
天门冬氨酸,能有效提高黄嘌呤氧化酶的存放稳定性。
关键词:黄嘌呤氧化酶;稳定性;谷氨酸;天冬氨酸
中图分类号:Q554    文献标志码:A    文章编号:1672-3678(2009)02-0053-04
StabilityofxanthineoxidasefromArthrobacter
SUNYan,WANGJing,YANGHailin,WANGWu
(TheKeyLaboratoryofIndustrialBiotechnologyofMinistryofEducation,JiangnanUniversity,Wuxi214122,China)
Abstract:ThefactorsafectingtheenzymestabilityofxanthineoxidasefromArthrobacterg1984arestud
ied.TheenzymewasstableinpH45~75andtheoptimumtemperaturewas37℃.Theactivityof
xanthineoxidaseremainedaround50% whenhandled2hoursat45℃.Diferentionsorthesameionat
diferentconcentrationsactivatedorinhibitedthexanthineoxidase.Theadditionofglutamicacidoras
particacidsignificantlyimprovedtheshelfstabilityoftheenzyme.Theaddingappropriateadditivesim
provedthepreservationstabilityofxanthineoxidase.
Keywords:xanthineoxidase;stability;glutamicacid;asparticacid
  黄嘌呤氧化酶(xanthineoxidase,简称 XOD,
EC1.2.3.22)是一类胞质复合酶,属钼酶家族[1],
在O2存在下,以分子氧为直接电子受体,无需辅酶
就能催化氧化反应[2]。在催化多种底物的氧化时,
除了生成产物尿酸之外,还形成超氧自由基和过氧
化氢。这些氧化物与缺血性再灌注损伤、痛风、高
尿酸血症、风湿性关节炎、心肌梗塞、肝炎等疾病密
切相关[3-11]。
为了保持液体酶的活力,需要在浓缩液中加入
不同种类的金属离子、氨基酸、多元醇、多糖类化合
物等。当酶的活性中心含有离子作为配位体时,盐
离子就能稳定酶的构象。另外盐可作为水分子的
替代物占据水的位置,排除自由水对酶造成的不稳
定影响。多元醇化合物可通过氢键与酶蛋白表面
分子相连,使酶蛋白分子稳定。本文对黄嘌呤氧化
酶的酶学性质及稳定性进行了初步研究。
1 材料与方法
1.1 实验材料
1.1.1 菌种来源
本实验室保藏菌株Arthrobacterg1984。
1.1.2 培养基
种子培养基(g/L):NaCl5,蛋白胨10,牛肉膏
5。调节pH至72。
发酵培养基:NaCl5g/L、(NH4)2SO42g/L、CaCl2
(10g/L)01mL、MgSO4·7H2O02g/L、葡萄糖
10g/L、酵母膏1g/L、黄嘌呤(702mmol/L)025mL。
调节pH至80。
1.2 实验方法
1.2.1 培养条件
接一环斜面培养基上的菌体于装液量为50mL
的250mL三角瓶内,32℃、200r/min培养24h,再
以5%接种量接于发酵培养基(500mL三角瓶装液
量100mL),32℃、200r/min摇瓶发酵。
1.2.2 XOD活力测定
XOD活力的测定方法参照文献[12]。
1.2.3 酶活保留率
酶活保留率 =样品酶液残余酶活/试样酶液初
始酶活×100%。
2 结果与讨论
2.1 酶反应的最适pH和pH稳定性
为了测定酶的最适反应 pH,在不同 pH条件下
测定酶活力。
选用不同pH的005mol/L的缓冲液,pH40~
100,分别在4℃静置7d,然后恢复pH为75,用常
规方法测定酶活,以未作处理的试样酶活作为100%,
考察XOD的pH稳定范围(图1)。
图1 pH对XOD活力和稳定性的影响
Fig.1 EfectsofpHonXODactivityandXODstability
由图1可知,酶作用最适pH范围为60~75,
最适反应pH为65。具有较宽的pH稳定性,在pH
45~70放置7d酶活损失不大,剩余相对酶活均
在80%左右,在 pH45~70范围之外,比酶活急
剧下降。
2.2 酶反应的最适温度及温度稳定性
反应温度是影响酶反应活性的重要因素。反
应温度的提高可以大幅加快反应速率,提高反应的
效率,可以扩展酶的应用范围。
2.2.1 酶反应的最适温度
将酶液分别在25~55℃不同温度、pH75条
件下测定酶反应活力,测定酶反应最适温度,结果
见图2。
图2 温度对XOD酶活力的影响
Fig.2 EfectsoftemperatureonXODactivity
图2显示,在pH7.5的条件下,XOD活力的最
适温度为37℃。
2.2.2 酶的热稳定性
将酶液在水浴中保温一定时间,立即冰浴降
温,然后按常规条件测定酶活,以未作处理的试样
酶活作为100%,结果见图 3。
图3 温度对XOD稳定性的影响
Fig.3 EfectsoftemperatureonXODstability
  从图3可以看出,在25~35℃该酶比较稳定,经
40、45℃处理05h,比酶活下降幅度增大,处理2h,
仍保持50%左右。总体来说,该酶比较稳定。
2.3 金属离子对XOD活力的影响
在酶液中加入一定量的金属离子 K+、Fe3+、
Mg2+、Mn2+、Ni+、Zn2+、Al3+、Fe2+、Ca2+,使各反应
体系中金属离子浓度分别为1、5和10mmol/L,以
未加金属离子的酶液作对照,测定各金属离子对
XOD活力的影响(图4)。
45 生 物 加 工 过 程   第7卷 
图4 金属离子对XOD活力的影响
Fig.4 EfectsofmetalionsonXODactivity
由图4可知,不同的金属离子对黄嘌呤氧化酶
活力的影响是不同的。除了Mn2+,其余几种金属离
子对黄嘌呤氧化酶均有不同程度的抑制作用且随
着金属离子的浓度增大,抑制作用越强烈。其中
Zn2+的抑制作用最大,在1mmol/L时黄嘌呤氧化酶
的残余酶活仅为885%。Mn2+对黄嘌呤氧化酶有
激活作用,在 10mmol/L时其激活作用反而比 5
mmol/L时减弱。
2.4 EDTA对XOD活力的影响
EDTA能去除酶中的重金属离子,解除其对酶
的抑制作用,为了考察酶中是否存在抑制酶活力的
金属离子,在酶液中添加 EDTA,浓度分别为10、50
mmol/L,以未加EDTA的酶液为对照,测定酶活,结
果见表1。
表1 EDTA对酶活的影响
Table1 EfectsofEDTAontheactivity
ofxanthineoxidase
c(EDTA)/(mmol·L-1) 酶活保留率/%
10 11322
50 13436
0 100
结果表明,XOD中含有可以被 EDTA螯合的金
属离子,该离子可影响XOD。
2.5 一些化学物质对黄嘌呤氧化酶稳定性的影响
取4份5mL酶液,分别加入牛血清蛋白(BSA)
(质量分数017%),半胱氨酸(5mmol/L),天门冬
氨酸(55mmol/L),谷氨酸(80mmol/L),对照样不
加稳定剂,以硅胶塞封口。置于4℃冰箱中,每隔
5d测定一次酶活。以初始酶活力为100%。
由图5可知,与对照组的酶活保持率相比,添
加谷氨酸和天门冬氨酸,能有效提高黄嘌呤氧化
酶的存放稳定性。在4℃保存30d后,对照组的
酶活保持率的酶活保留率为53%,添加天门冬氨
酸的酶液酶活保留率为66%,添加谷氨酸的酶液
酶活保留率接近为72%,添加 BSA的酶液酶活保
留率为66%。推测谷氨酸和天门冬氨酸都是多羟
基化合物,有助于形成亲水保护层,使得 XOD在
水相中相对稳定。
图5 几种化学物质对酶活力的影响
Fig.5 Efectsofmetalionsonxanthineoxidaseactivity
3 结 论
国内外未曾对节杆菌的 XOD基本性质详细报
道,本实验对细菌XOD稳定性进行了初步研究。结
果表明,XOD最适反应 pH为65,在 pH45~75
较稳定;pH大于8和小于45都有较大程度的不可
逆失活;最适反应温度为37℃,在25~35℃酶较稳
定;常见金属离子 K+、Fe3+、Mg2+、Mn2+、Ni+、
Zn2+、Al3+、Fe2+、Ca2+中,除了Mn2+,其余几种金属
离子对黄嘌呤氧化酶均有抑制作用且随着金属离
子的浓度增大,抑制作用越强烈。其中 Zn2+的抑制
作用最大。深入研究其机理有利于开发 XOD抑制
剂药物;EDTA对酶有明显的激活作用。添加谷氨
酸和天门冬氨酸,能有效提高黄嘌呤氧化酶的存放
稳定性。
参考文献:
[1] HileR.Themononuclearmolybdenumenzymes[J].ChemRev,
1996,96:27572816.
[2] WoolfolkCA,DownardJS.Distributionofxanthineoxidaseand
xanthinedehydrogenasespecificitytypesamongbacteria[J].Jour
nalofBacteriology,1977,130:11751191.
[3] PfeferKD,HuecksteadtTP,HoidalJR.Xanthinedehydrogen
aseandxanthineoxidaseactivityandgeneexpressioninrenalepi
thelialcels:cytokineandsteroidregulation[J].Immunol,1994,
55 第2期 孙 艳等:细菌黄嘌呤氧化酶的稳定性
153:17891795.
[4] NakamuraM,KurebayashiH,YamazakiI.Oneelectronandtwoe
lectronreductionsofacceptorsbyxanthineoxidaseandxanthinede
hydrogenase[J].JBiochem(Tokyo),1978,83:917.
[5] TomokoN,KenO,YukoK,etal.Mechanismoftheconversion
ofxanthinedehydrogenasetoxanthineoxidase:identificationofthe
twocysteinedisulfidebondsandcrystalstructureofanonconverti
bleratliverxanthinedehydrogenasemutant[J].JBiolChem,
2005,280:2488824894.
[6] PossWB,HuecksteadtTP,PanusPC,etal.Regulationofxan
thinedehydrogenaseandxanthineoxidaseactivitybyhypoxia[J].
AmJPhysiolLungCelMolPhysiol,1996,270:941950.
[7] TakeshiN.TheConversionofxanthinedehydrogenasetoxanthine
oxidaseandtheroleoftheenzymeinreperfusioninjury[J].JBio
chem(Tokyo),1994,116:16.
[8] McKelveyTG,HolwarthME,GrangerDN,etal.Mechanisms
ofconversionofxanthinedehydrogenasetoxanthineoxidaseinis
chemicratliverandkidney[J].AmJPhysiolGastrointestLiver
Physiol,1988,254:753761.
[9] LindsayS,LiuTH,XuJA,etal.Roleofxanthinedehydrogen
aseandoxidaseinfocalcerebralischemicinjurytorat[J].AmJ
PhysiolHeartCircPhysiol,1991,261:2051.
[10]SchimplG,PabstMA,GFeierl,etal.Atungstensupplemented
dietatenuatesbacterialtranslocationinchronicportalhypertensive
andcholestaticrats:roleofxanthinedehydrogenaseandxanthine
oxidase[J].Gut,1999,45:904910.
[11]MaiaL,ValaA,MiraL.NADHoxidaseactivityofratliverxan
thinedehydrogenaseandxanthineoxidasecontributionfordamage
mechanisms[J].FreeRadicRes,2005,39(9):979986.
[12]李忠琴,许小平,杨海麟,等.辣根过氧化物酶分光光度法测定
黄嘌呤氧化酶的活性[J].分析化学,2006,34(6):821824.
LiZhongqin,XuXiaoping,YangHailin,etal.Spectrophotomet
ricdeterminationofactivityofxanthinexxidasebyhorseradish
peroxidas[J].ChineseJournalofAnalyticalChemistry,2006,
34(6):
櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒櫒
821824.
国外动态
印度开发椰壳纤维生物提取技术
印度国立多学科科学技术研究所(NIST)开发了椰壳纤维分离的创新性环保技术,比传统的脱胶方法
更具优势,并己提出了国际专利申请。NIST环境技术部的VBManila介绍,新方法得到的纤维可纺性更好。
在试验装置中,经清洁和粉碎的椰壳将进入一个厌氧反应器,椰壳的纤维和胶质会因厌氧反应而分离,
同时,在传统的脱胶过程中产生的污染性酚类化合物在厌氧反应的作用下会被转化为乙酸等挥发性脂肪
酸,并可进一步由细菌作用转化成甲烷。这种新型生物工艺全过程仅需1个月的时间,而传统工艺则需要6
个月。该工艺成功将污染物转化为沼气,每千克椰壳能够产生50L沼气,其效率大大高于利用粪肥生产沼
气。同时,通过这种工艺得到的纤维是表面光滑、弹性增强的优质生物提取纤维,可用于制造专供国际市场
的高端纺织品。该生物提取工艺也可以用于菠萝、黄麻甚至香蕉纤维的提取。此外,该工艺还具有节水、零
排放等优点。目前,研究人员规划每年处理150万t椰壳,获得12万t白色纤维。
爱荷华州立大学新建生物基工业中心
近日,美国爱荷华大学新建了生物基工业中心,并正在发起4个生物燃料工业研究项目。中心的临时负
责人、爱荷华州工业研究与服务中心主任RonCox介绍,该中心将致力于解决生物燃料工业中较少得到关注
的问题,主要包括商业和经济方面的问题,而不是技术方面的问题。
该中心是爱荷华州生物经济研究所的一部分,是经过了几年筹备后最终建成的。中心的目的是支持生
物可持续工业领域的跨学科研究,以及相关的经济、政策、商业、社会和劳动力问题研究。
该中心首批资助的研究项目(经费从4万~5万美元不等)包括:1)开发一个经济模型,评估在减少碳排
放和分析不同的生物燃料工艺方面的成本耗费;2)建立一个碳模型,估计生物燃料的温室气体排放量,评估
不同政策情景下可能发生的改变;3)开发一个经济框架,评估土地用途改变情况对生物燃料温室气体排放
量的影响;4)针对玉米秸秆的生产、收割、贮存和运输等环节,进行一项技术经济分析。
(文伟河)
65 生 物 加 工 过 程   第7卷