全 文 :第7卷第3期
2009年5月
生 物 加 工 过 程
ChineseJournalofBioprocessEngineering
Vol.7No.3
May2009
收稿日期:2008-09-11
基金项目:国家重点基础研究发展计划(973计划)资助项目(2007CB707804);国家高技术研究发展计划(863计划)资助项目
(2006AA020103);国家自然科学基金资助项目(20676053);教育部新世纪优秀人才支持计划资助项目(NCET-07-0380);江苏省
青年科技创新人才(学术带头人)基金资助项目 (BK2006504)。
作者简介:钟传圣(1985—),男,江西永丰人,硕士研究生,研究方向:微生物学;饶志明(联系人),教授,Email:raozm@yahoo.com.cn
Mycobacteriumsp高效转化植物甾醇为
雄甾 1,4 二烯 3,17 二酮的诱变选育
钟传圣1,饶志明1,夏海锋1,许正宏2,方慧英1,诸葛健1
(1.江南大学 工业生物技术教育部重点实验室,无锡 214122;2.江南大学 医药学院,无锡 214122)
摘 要:采用紫外线、亚硝基胍复合诱变雄甾 4烯 3,17二酮(AD)和雄甾 1,4 二烯 3,17 二酮(ADD)的转
化产生菌Mycobacteriumsp,结合平板筛选,获得一株遗传性状稳定单产 ADD的突变菌株 Mycobacteriumsp 11,
其ADD质量浓度达到1246mg/L,比原始菌株(484mg/L)提高了150%,经初步优化后发酵液中 ADD最高达到
1430mg/L,发酵液中ADD质量占ADD、AD两产物质量总和的比例由70%提高到991%。
关键词:紫外诱变;植物甾醇;微生物转化;雄甾 1,4二烯 3,17二酮
中图分类号:Q815 文献标志码:A 文章编号:1672-3678(2009)03-0043-04
MutationbreedingofMycobacteriumsp.fortransformationof
phytosterolintoandrost1,4diene3,17dione
ZHONGChuansheng1,RAOZhiming1,XIAHaifeng1,XUZhenghong2,
FANGHuiying1,ZHUGEJian1
(1.KeyLaboratoryofIndustrialBiotechnologyoftheMinistryofEducation,JiangnanUniversity,Wuxi214122,China;
2.SchoolofMedicineandPharmaceutics,JiangnanUniversity,Wuxi214122,China)
Abstract:AmutantMycobacteriumsp.11wasobtainedbyUVNTGmutationandplatescreeningfroma
parentstrainMycobacteriumsp.anditcouldtransformsterolintoandrost1,4diene3,17dione(ADD)
asthemainproduct.TheproductivityofADDwassuperiortothatoftheparentalstrain,theconcentra
tionofADDincreasedfrom484mg/Lto1246mg/L.ThehighestconcentrationofADDreached1430
mg/Lbypreliminaryoptimization.TheconversionrateofADDonsumofADDandADproductivitywas
increasedfrom70% to991%.
Keywords:UVmutation;phytosterol;bioconversion;androst1,4diene3,17dione
类固醇生产方式一般通过以下3个途径:1)从自
然界中直接分离;2)非甾体起始原料合成;3)从植物
和动物中分离出的类固醇中间体原料合成[1]。其中
类固醇的生产方式主要采取第3种,这种方式需消耗
大量的起始原料薯蓣皂素,造成甾体激素资源的紧
缺,因此以廉价的甾醇为原料生物转化生产激素中间
体产品,如雄甾 4 烯 3,17 二酮(AD)和雄甾 1,
4二烯 3,17二酮(ADD)已受到广泛关注[2-4]。
我国是一个农业大国,大豆来源丰富,精炼大
豆油和菜籽油的脱臭馏出物中可分离得到大量的
植物甾醇,为了有效利用这一资源,国内已开展了
相关研究[5-8]。通过微生物转化植物甾醇生产
ADD时通常同时生成 AD,而 ADD与 AD的理化性
状非常相似,分离纯化困难,所以筛选一株单产
ADD的菌株尤为重要。本研究从实验室能转化植
物甾醇生成 ADD、AD的菌株出发,经紫外线 亚硝
基胍(UVNTG)复合诱变获得一株单产 ADD的菌
株,对其生产性能进行初步优化。
1 材料与方法
11 菌种
Mycobacteriumsp.由江南大学工业微生物研究
中心筛选提供。
12 培养基
固体培养基(g/L):蛋白胨 5,牛肉膏 3,NaCl
15,琼脂20。pH70。
种子培养基(g/L):葡萄糖5,蛋白胨5,牛肉膏
3。pH70。
选择(SM)培养基(g/L)[9]:CH3COONH415,
MgSO4·7H2O02,K2HPO404,KH2PO408,FeSO4·7H2O
0005,ZnSO4·7H2O0002,MnCl2·4H2O00005。
发酵培养基(1L):在选择培养基上添加,植物
甾醇5g,葡萄糖10g,蛋白胨10g,助溶剂Tween80
3mLpH70。
发酵条件:体积分数12%接种量,100mL/500mL
三角瓶装液量,220r/min培养7d[10]。
13 诱变选育
131 菌悬液制备
新鲜斜面菌种接种于种子摇瓶,30℃培养至对
数生长前期,制备成108 个/mL的菌悬液。
132 紫外诱变
菌悬液转入灭菌培养皿(直径9cm)中,置于磁
力搅拌器上,25W紫外灯下30cm处分别照射0、
15、30、45、60、75和90s后取出,照射前后的菌液各
01mL进行适当梯度稀释后涂布于至固体培养基
上,30℃暗培养72h后计数,计算致死率。
133 亚硝基胍诱变
取一定量的菌悬液,加入适当的 NTG溶液,使
其质量浓度为03mg/mL,振荡混匀后反应不同的
时间,快速离心终止反应,用01mol/LpH70的磷
酸盐缓冲液洗涤离心3~5次,取01mL菌悬液适
当稀释涂布至固体培养基上,30℃下培养72h后计
数,计算致死率。
134 UVNTG复合诱变
取一定量的菌悬液紫外线照射后,再用 03
mg/mL的NTG作用(根据致死率曲线分别确定时
间),诱变结束后离心终止反应,取01mL的菌悬
液适当稀释后涂布于平板固体培养基上,30℃下培
养72h后计数。
135 菌株筛选[10]
从菌落生长状况差异较大的平板中挑取单菌
落克隆接种到 SM1(SM+植物甾醇)、SM2(SM+
AD)、SM3(SM+ADD)3种固体培养基中,30℃培
养48h,进行初筛。选择在 SM1、SM2上长势良好、
SM3上不长或长势缓慢的菌落进行摇瓶发酵复筛,
挑选转化率较高、ADD所占产物比例较高的菌株。
14 分析方法
141 生物量的测定[11]
以稀释5倍的发酵液在可见分光光度计600nm
处的光吸收值间接表示。
142 底物残留浓度的测定
根据LiebermanBurchard显色反应检测[12]。
143 产物ADD与AD的定量分析
色谱柱AltimaC18(5μL,250mm×46mm);
流动相V(甲醇)∶V(水)=7∶3;检测器UVDetector;
检测波长254nm;柱温:室温;进样量 20μL;流速
085mL/min;用外标法计算发酵液中产物ADD、AD
的质量浓度,雄甾烯酮标准品,色谱纯,购于 Sigma
公司。
2 结果与讨论
21 UVNTG复合诱变处理剂量的选择
紫外诱变、NTG诱变致死率分别如图1、图2所
示。考虑致死率在 70% ~80%时菌株正突变概率
高的情况,UVNTG复合诱变处理方式和剂量为:菌
悬液经25W紫外灯30cm处照射40s后,再由03
mg/mL的亚硝基胍作用45min。
22 诱变筛选
从菌落生长状况差异较大的平板中挑取200株
单菌落克隆接种到SM1、SM2、SM3,选择在SM1、SM2
上长势良好,SM3上不长或长势缓慢的菌落60株进
行摇瓶发酵复筛(底物甾醇5g/L),发现正突株有19
株,其中4株转化率明显提高(表1)。分析表1发
现:7、11号 ADD产量提高了15倍,5、14号也提高
44 生 物 加 工 过 程 第7卷
了1倍;除7号菌株外,其他3株菌在发酵液中,ADD
质量占AD与ADD质量总和的比例均超过了97%。
图1 Mycobacteriumsp的紫外致死率曲线
Fig.1 UVfatalityratecurveofMycobacteriumsp.
图2 Mycobacteriumsp.的NTG致死率曲线
Fig.2 NTGfatalityratecurveofMycobacteriumsp.
表1 4株正突变株的产物生成率情况
Table1 Theproductionoffourgeneratingmutantstrains
突变株 ρ(ADD)
/
(mg·L-1)
ADD摩尔
生成率/%
φ(ADD)/
%
ADD提高
率/%
对照 484 1386 7121
5 1059 3034 9752 11886
7 1296 3732 9444 16782
11 1246 3562 9725 15798
14 1070 3064 9872 12107
—此处所列值为3次试样平均值
23 传代稳定性实验
选取复筛得到的转化效果最好的4株菌株进行
传代稳定性实验(图3),发现14号与11号菌株遗
传性状比较稳定,11号菌株产物的积累保持在
1200mg/L,而初代发酵液中产物积累浓度最高的7
号菌株以及14号菌株转化能力均随着传代次数的
增加而不断下降。
图3 4株正突变株的传代稳定实验
Fig.3 Stabilitytestof4generatingmutantstrain
24 底物质量浓度的选择
改变发酵液中初始底物的投加浓度,将筛选得
到的菌株 Mycobacteriumsp11在 30℃、pH70、
220r/min条件下发酵7d,产物的生成情况如图4
所示。由图4可知,ADD的质量浓度随着底物初始
投加质量浓度的增加而提高,但是产物的摩尔生成
率呈下降趋势,当底物投加质量浓度超过 10g/L
后,发酵液中产物的质量浓度没有得到提高。当底
物投加质量浓度为8g/L时,发酵液中ADD的质量
浓度最高达到 1308mg/L,此时产物生成率为
234%,ADD在两产物中的质量分数达991%。
图4 底物质量浓度对产物生成率的影响
Fig.4 Influencesoftheconcentrationof
substrateonproductivity
25 助溶剂的选择
为了提高底物溶解性,常选用Tween80为助溶剂,
但是Tween80作为助溶剂产生的泡沫过多,发酵罐放
大发酵时需加一定浓度的消泡剂,不利于菌株的发酵
转化,有文献报道卵磷脂的助溶效果比Tween80好[13],
遂在底物初始质量浓度8g/L时选择卵磷脂为助溶剂,
结果如图5所示。由图5可知,选择卵磷脂为助溶剂
后ADD摩尔生成率明显比Tween80为助溶剂时(图4
所示)要高,当卵磷脂质量浓度为6g/L时,产物摩尔生
成率达到251%,此时ADD质量浓度为1430mg/L,占
54 第3期 钟传圣等:Mycobacteriumsp高效转化植物甾醇为雄甾 1,4二烯 3,17二酮的诱变选育
两产物总和的991%。
图5 助溶剂卵磷脂对产物生成率的影响
Fig.5 Influencesofthelecithinontheformationofproducts
3 结 论
以 Mycobacteriumsp为出发菌株,经 UVNTG
复合诱变结合平板筛选,获得一株主要转化植物甾
醇为雄甾 1,4 二烯 3,17 二酮的突变菌株Myco
bacteriumsp 11。突变株生产ADD的能力得到明
显提高,产物质量浓度由 484mg/L提高到1246
mg/L,产物ADD摩尔生成率达到3562%。当底物
初始投加质量浓度为5g/L时,发酵液中ADD质量
分数由7121%提高到991%,同时产物生成率提
高了150%,经过底物浓度的优化后确定,底物质量
浓度8g/L时添加6g/L助溶剂卵磷脂,产物质量浓
度提高到1430mg/L,此时产物ADD摩尔生成率为
251%,ADD质量占两产物质量总和的991%。
优化部分发酵条件后,发现 ADD质量浓度提
高,但 ADD摩尔生成率却下降,分析原因主要是高
浓度底物对细胞生长的毒害以及产物 ADD积累到
一定程度反馈抑制 ADD的生成。如何解决这一问
题,提高底物的转化率,还应进一步探索。
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