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Exogenous NO and H2O2 Dependent Signal Molecule Ca2+/CaM to EnhanceAnthocyanin Accumulation of Potato Tuber

NO和H2O2依赖Ca2+/CaM信号调控马铃薯花青素积累



全 文 :核 农 学 报  2013ꎬ27(6):0848 ~ 0853
Journal of Nuclear Agricultural Sciences
收稿日期:2012 ̄10 ̄26  接受日期:2012 ̄03 ̄31
基金项目:国家“973”计划(2010CB134404)ꎻ 甘肃省自然科学基金(101012JZA194)
作者简介:马廷蕊(1984 ̄)ꎬ女ꎬ甘肃兰州人ꎬ硕士研究生ꎬ主要研究方向为作物遗传与细胞工程ꎮ Tel:15095326689ꎬE ̄mail:potatos@ 126. com
通讯作者:张金文(1958 ̄)ꎬ男ꎬ甘肃武威人ꎬ博士ꎬ教授ꎬ主要研究方向为作物遗传与生物化学ꎮ Tel: 13609377489ꎬE ̄mail:jwzhang305@ 163. com
文章编号:1000 ̄8551(2013)6 ̄0848 ̄06
NO和 H2O2 依赖 Ca
2 + / CaM信号调控马铃薯花青素积累
马廷蕊1ꎬ2   张金文1ꎬ2   梁慧光1ꎬ2   柳永强3   王金虎1
( 1 甘肃农业大学农学院ꎬ甘肃 兰州  730070ꎻ 2甘肃省干旱生境作物学重点实验室ꎬ
甘肃 兰州  730070ꎻ3 甘肃农业科学院马铃薯研究所ꎬ甘肃 兰州  730070)
摘  要:以不同块茎颜色马铃薯品种陇薯 8 号、陇薯 7 号、LC310 ̄2 和山东彩肉为材料ꎬ研究外源 NO、
H2O2、NO + H2O2 处理对马铃薯块茎花青素合成及其信号物质 Ca2 +  ̄ATPase和 CaM的影响ꎮ 结果表明:
外源 NO和 H2O2 处理后ꎬ4 个基因型马铃薯薯皮和薯肉花青素积累ꎬCa2 +  ̄ATPase 活性升高ꎬCaM 含量
增加ꎬ其效果为 NO + H2O2 > H2O2 > NO >水(CK)ꎬ并且花青素的积累量与 Ca2 +  ̄ATPase 活性和 CaM含
量均呈正相关ꎬ其平均决定系数达 0􀆰 9194 和 0􀆰 8859ꎮ 说明 NO和 H2O2 对马铃薯花青素合成具有一定
的促进作用ꎬ而细胞 Ca2 + / CaM信号发挥了 NO和 H2O2 对马铃薯花青素合成诱导的信号调节ꎮ
关键词:彩色马铃薯ꎻ NOꎻ H2O2ꎻ Ca2 + / CaM信号ꎻ 花青素
    花青素是一类广泛存在于植物体的水溶性天然色
素ꎬ常与各种单糖形成花色苷ꎬ因吸光性差异而表现不
同颜色ꎬ具有抗氧化、抗突变、抗增生、保护肝脏、抑制
肿瘤细胞发生等多种生理功能[1 - 2]ꎮ NO 作为植物次
生代谢中的主要信号分子ꎬ通过细胞 ROS反应或 Ca2 +
信号系统参与多种植物次生代谢的诱导与信号转
导[3]ꎮ H2O2 是植物 ROS 反应中的关键分子ꎬ参与细
胞逆境应答信息传递ꎬ对植物次生代谢合成具有调控
作用[4]ꎮ 植物细胞内 Ca2 +被认为是植物传递各种生
物信息的重要信号ꎬ而 CaM是细胞中 Ca2 +信号的感受
器和 Ca2 +发挥信使作用的最主要途径[5]ꎬ它与 Ca2 +结
合后产生活性ꎬ具有调节酶活性、促进次生代谢反应、
启动基因表达等生理功能[6 - 7]ꎮ 在植物次生代谢中ꎬ
Ca2 + / CaM、NO和 H2O2 组成复杂的信号网络[8 - 9]ꎬNO
激活鸟苷酸环化酶(sGC)产生 cGMP 和 ROS 反应ꎬ从
而激活 Ca2 +通道ꎬ并且外源 NO 和 H2O2 处理能诱导
花青素合成的相关酶苯丙氨酸解氨酶 PAL、多酚氧化
酶 PPO和查尔酮异构酶 CHI合成及使其活性提高[2]ꎮ
本文探讨了 NO和 H2O2 对马铃薯花青素积累的影响
及其与 Ca2 +信号之间的关系ꎬ为鲜食保健马铃薯育种
和花青素合成的信号调控机理提供参考ꎮ
1  材料与方法
1􀆰 1  试验材料
陇薯 8 号(L8)ꎬ薯皮白色ꎬ薯肉白色ꎻ陇薯 7 号
(L7)ꎬ薯皮黄色ꎬ薯肉淡黄色ꎻ LC310 ̄2(LC)ꎬ薯皮粉
红色ꎬ薯肉淡红色ꎬ由甘肃农业科学院马铃薯研究所提
供ꎬ山东彩肉(SD)ꎬ薯皮黑紫色ꎬ薯肉紫色ꎬ从山东省
泰安农业局引进ꎮ
1􀆰 2  盆栽与处理
试验材料为 2010 年 10 月中旬采收的脱毒微型
薯ꎬ3 ~ 5℃冷藏至 2011 年 4 月中旬ꎬ选择薯形均匀ꎬ无
病虫害和机械损伤ꎬ单粒重 8 ~ 12g 的马铃薯块茎ꎬ 用
0􀆰 067 mol􀅰L - 1的次氯酸钠浸泡消毒 1hꎬ蒸馏水漂洗后
晾干ꎬ置温度 15℃、相对湿度 65%的条件下备用ꎮ
试验前将马铃薯块茎分 5 组编号ꎬ喷洒 40%氯乙
醇液催芽ꎬ选择芽长均一ꎬ约 0􀆰 15cm 的壮芽整薯盆
栽ꎮ 盆栽容器为口径 15cm × 15cm、高 20cm 的方形塑
料盆ꎻ栽培基质为蛭石、草炭和黄绵土 1 ∶ 1 ∶ 2混合ꎻ土
样均配施 5g (NH4)2HPO4 + 3􀆰 8g 尿素 + 1􀆰 2g K2SO4
+ 6g 油渣沫ꎻ播种为单株播种ꎬ播深 7cmꎻ水分管理为
每次浇晾晒自来水 50mLꎬ7d 1 次ꎬ保持生育期基质半
848
  6 期 NO和 H2O2 依赖 Ca2 + / CaM信号调控马铃薯花青素积累
湿润ꎮ 选择出苗高度与粗壮程度一致的盆栽苗ꎬ苗高
约 10cm 时处理:水 (CK)ꎬ0􀆰 1mmol􀅰L - 1 SNP ( S)ꎬ
0􀆰 25m mol􀅰L - 1 H2O2 ( H )ꎬ 0􀆰 1mmol􀅰L - 1 SNP +
0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2(SH)ꎮ 处理每隔 7d 1 次ꎬ重复 3
次ꎮ
1􀆰 3  指标测定和数据处理
1􀆰 3􀆰 1  花青素含量测定  称取马铃薯薯皮和薯肉薄
片 2􀆰 5gꎬ室温下用 1% 盐酸 -甲醇溶液提取ꎬ提出后
暗置 24hꎬ10 000g 离心 5minꎬ取上清液ꎬ测其在 530、
620 和 650nm 下的吸光值ꎬ花青素吸光值按 OD530 -
0􀆰 9 × OD620 - 0􀆰 1 × OD650计算[2]ꎮ
1􀆰 3􀆰 2  CaM含量测定  称取马铃薯薯皮和薯肉薄片
10gꎬ加液氮研磨匀浆ꎬ按 1∶ 2(W / V)加入预冷细胞裂
解液[50mmol􀅰L - 1 Tris ̄HCl (pH 值 7􀆰 4)ꎬ50mmol􀅰L - 1
NaClꎬ 2mmol􀅰L - 1 EDTAꎬ1mmol􀅰L - 1 PMSFꎬ1mmol􀅰L - 1
β -巯基乙醇ꎬ1% (W / W) Triton X - 100]ꎬ 超声波破
碎细胞ꎬ 95℃煮沸 5minꎬ10 000g 4℃低温离心 20minꎬ
上清液为 CaM 粗提液ꎮ 采用 ELISA 法测定 CaM 含
量ꎬ按照钙调素 ELISA 检测试剂盒说明ꎬ用酶标仪测
450nm 下样品液的吸光值ꎬ对照标样计算 CaM 含
量[10]ꎮ
注:∗∗表示 α = 0􀆰 01 水平差异显著ꎬ∗表示 α = 0􀆰 05 水平差异显著ꎮ
Note: ∗∗show significant difference at α = 0􀆰 01 levelꎬ ∗ show significant difference at α = 0􀆰 05 level.
图 1  NO、H2O2 和 NO +H2O2 处理对彩色马铃薯块茎花青素积累影响
Fig. 1  Effects of NOꎬ H2O2 and NO +H2O2 treatment on anthocyanin accumulation of potato tuber
1􀆰 3􀆰 3  Ca2 +  ̄ATPase活性测定  称取马铃薯薯皮和
薯肉薄片 10gꎬ液氮速冻ꎬ加 5mL 提取液(5mmol􀅰L - 1
EDTAꎬ5mmol􀅰L - 1 DDTꎬ80mmol􀅰L - 1 Tirsꎬ5% 甘油ꎬ
1mmol􀅰L - 1 PMSFꎬ10mmol􀅰L - 1维生素ꎬ250mmol􀅰L - 1蔗
糖ꎬpH值 8􀆰 9)研磨ꎬ4 层纱布过滤ꎬ滤液在 10 000g 离
心 20minꎬ上清液为粗酶液ꎮ 将粗酶液与反应介质
[100mmol􀅰L - 1 Tirs ̄HCl ( pH 值 7􀆰 0)ꎬ50 mmol􀅰L - 1
NaClꎬ0􀆰 002mmol􀅰L - 1 EDTAꎬ5mmol􀅰L - 1 DDTꎬ0􀆰 01%
Triton ̄X100ꎬ80mmol􀅰L - 1 Tirsꎬ 5% 甘油ꎬ 1mmol􀅰L - 1
CaCl2]按 1:5(V / V)ꎬ 37℃反应 10minꎬ加 20% TCA终
止反应ꎬ测定释放出的无机磷量ꎬ则 Ca2 +  ̄ATPase 活性
[μmmol Pi(mg Pro􀅰min) - 1]为每 1min 每 1mg 蛋白所
释放的无机磷的量[11]ꎮ
数据用 Microsoft Excel 软件进行数据处理ꎬ 用
SPSS 13􀆰 0 进行统计分析ꎮ
2  结果与分析
2􀆰 1  NO、H2O2 和 NO + H2O2 处理对不同颜色马铃
薯块茎花青素含量的影响
外源 NO和 H2O2 处理后ꎬ4 种彩色马铃薯薯皮和
薯肉花青素含量均有一定程度的升高ꎬ其作用效果表
现为 0􀆰 1mmol􀅰L - 1 SNP + 0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 >
0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 > 0􀆰 1mmol􀅰L - 1 SNP > 水 ( CK)
(图 1 )ꎮ 其中 0􀆰 1mmol􀅰L - 1 SNP + 0􀆰 25mmol􀅰L - 1
H2O2 处理使 4 种马铃薯块茎花青素含量差异极显著ꎬ
处理使 L8、L7、LC 和 SD 薯皮花青素含量分别增加
15􀆰 02% 、33􀆰 33% 、17􀆰 23% 、40􀆰 65% ꎬ薯肉花青素含量
增加 40􀆰 66% 、32􀆰 73% 、30􀆰 52% 、16􀆰 05% ꎻ0􀆰 25mmol􀅰
L - 1 H2O2 处理使 4 种马铃薯块茎花青素含量差异显
著ꎻ0􀆰 1mmol􀅰L - 1 SNP 处理使 4 种马铃薯块茎花青素
含量升高ꎬ其部分指标差异不显著ꎮ 说明 NO 和 H2O2
对马铃薯块茎花青素的合成具有促进作用ꎮ
948
核  农  学  报 27 卷
表 1  NO、H2O2 和 NO +H2O2 处理对彩色马铃薯块茎细胞 Ca2 +  ̄ATPase活性和 CaM含量影响
Table 1  Effects of NOꎬ H2O2 and NO +H2O2 treatment on Ca2 +  ̄ATPase activity and CaM content of potato tuber
品种
Variety
Ca2 +  ̄ATPase活性
Ca2 +  ̄ATPase activity / (μmol Pi􀅰mg - 1 Pro􀅰min - 1)
CAM含量
CAM content / (μg􀅰mL - 1)
CK S H SH CK S H SH
L8 薯皮 1. 23Aa 1. 31ABb 1. 42Bc 1. 68Cd 4. 24Aa 4. 59ABb 4. 98Bc 6. 07Cd
薯肉 0. 87Aa 0. 92Aab 0. 97ABb 1. 03Bc 3. 13Aa 3. 21Aa 3. 68Bb 4. 11Bc
L7 薯皮 3. 16Aa 3. 44ABb 3. 70Bc 3. 98Bc 7. 56Aa 8. 17ABb 8. 21ABb 8. 98Bc
薯肉 1. 83Aa 1. 96Ab 2. 07Abc 2. 16Bc 5. 77Aa 6. 19ABb 6. 74BCc 7. 41Cd
LC 薯皮 3. 28Aa 3. 54Ab 4. 11Bc 4. 48Bd 6. 88Aa 7. 03Aa 7. 68ABb 8. 42Bc
薯肉 2. 35Aa 2. 55Ab 2. 68Abc 2. 79Bc 5. 24Aa 5. 71Ab 6. 64Bc 7. 28Bd
SD 薯皮 4. 64Aa 4. 71Aa 5. 07ABb 5. 48Bc 9. 73Aa 10. 55ABb 10. 64ABb 11. 43Bc
薯肉 4. 03Aa 4. 22Aab 4. 41ABb 4. 81Bc 9. 54Aa 9. 97Aab 10. 40Ab 11. 08Bc
    注:大写字母表示 α = 0􀆰 01 水平差异显著ꎬ小写字母表示 α = 0􀆰 05 水平差异显著ꎮ
Note:Uppercase letters show significant difference at α = 0􀆰 01 levelꎬ lowercase letters show significant difference at α = 0􀆰 05 level.
2􀆰 2  NO、H2O2 和 NO + H2O2 处理对不同颜色马铃
薯块茎细胞 Ca2 + / CaM信号物质的影响
2􀆰 2􀆰 1  NO、H2O2 和 NO + H2O2 处理对不同颜色马
铃薯块茎 CaM 含量的影响   外源 NO 和 H2O2 处理
后ꎬ4 种彩色马铃薯薯皮和薯肉 CaM 含量均有一定程
度的升高ꎬ其作用效果表现为 0􀆰 1 mmol􀅰L - 1 SNP +
0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 > 0􀆰 25 mmol􀅰L - 1 H2O2 > 0􀆰 1
mmol􀅰L - 1 SNP >水(CK)(表 1)ꎮ 其中 0􀆰 1 mmol􀅰L - 1
SNP + 0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 处理使 4 种马铃薯块茎
CaM含量差异极显著ꎬ处理使 L8、L7、LC 和 SD 薯皮
CaM 含 量 分 别 增 加 32􀆰 24% 、 18􀆰 78% 、 19􀆰 77% 、
17􀆰 47% ꎬ薯肉 CaM 含量增加 31􀆰 31% 、 28􀆰 42% 、
38􀆰 93% 、16􀆰 14% ꎻ0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 处理使 4 种马
铃薯块茎 CaM含量差异显著ꎻ0􀆰 1 mmol􀅰L - 1 SNP 处理
使 4 种马铃薯块茎 CaM 含量升高ꎬ部分差异不显著ꎮ
说明 NO和 H2O2 对马铃薯块茎 CaM的合成具有促进
作用ꎮ
2􀆰 2􀆰 2  NO、H2O2 和 NO + H2O2 处理对不同颜色马铃
薯块茎 Ca2 +  ̄ATPase 活性的影响   外源 NO 和 H2O2
处理后ꎬ4 种彩色马铃薯薯皮和薯肉 Ca2 +  ̄ATPase 活
性均有一定程度的升高ꎬ其作用效果表现为 0􀆰 1 mmol
􀅰L - 1 SNP + 0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 > 0􀆰 25 mmol􀅰L - 1
H2O2 > 0􀆰 1 mmol􀅰L - 1 SNP >水(CK)(表 1)ꎮ 其中 0􀆰 1
mmol􀅰L - 1SNP +0􀆰 25mmol􀅰L - 1 H2O2 处理使 4 种马铃
薯块茎 Ca2 +  ̄ATPase 活性差异极显著ꎬ处理使 L8、L7、
LC和 SD 薯皮 Ca2 +  ̄ATPase 活性分别增加 36􀆰 59% 、
25􀆰 95% 、36􀆰 59% 、18􀆰 10% ꎬ薯肉 Ca2 +  ̄ATPase 活性增
加 18􀆰 39% 、 18􀆰 03% 、 18􀆰 72% 、 19􀆰 35% ꎻ 0􀆰 25mmol􀅰
L - 1 H2O2 处理使 4 种马铃薯块茎 Ca2 +  ̄ATPase活性差
异显著ꎻ0􀆰 1 mmol􀅰L - 1 SNP 处理使 4 种马铃薯块茎
Ca2 +  ̄ATPase活性升高ꎬ部分指标差异性不显著ꎮ 说
明 NO 和 H2O2 对马铃薯块茎 Ca2 +  ̄ATPase 激活具有
促进作用ꎮ
2􀆰 3  NO、H2O2 和 NO +H2O2 处理后ꎬ彩色马铃薯块
茎花青素含量与细胞 Ca2 + / CaM 信号物质的相关性
分析
外源 NO和 H2O2 处理后ꎬ以马铃薯块茎花青素含
量为自变量ꎬ分别以与之相对应的 Ca2 +  ̄ATPase 活性
和 CaM含量为因变量ꎬ用线性方程 y = a x + b 进行拟
合ꎬ分析在外源 NO 和 H2O2 作用下ꎬ马铃薯块茎细胞
Ca2 + / CaM信号物质与花青素积累的相关性(表 2)ꎮ
数据显示ꎬ外源 NO 和 H2O2 处理后ꎬ4 种基因型马铃
薯 L8、L7、LC 和 SD 块茎花青素含量与 Ca2 +  ̄ATPase
活性和 CaM含量呈正相关ꎬ其平均决定系数达 0􀆰 9194
和 0􀆰 8859ꎮ 说明在 NO 和 H2O2 介导的马铃薯花青素
代谢途径中ꎬCa2 + / CaM 单独或整体作为中间介体参
与花青素合成的信号调节ꎮ
058
  6 期 NO和 H2O2 依赖 Ca2 + / CaM信号调控马铃薯花青素积累
表 2  NO、H2O2 和 NO +H2O2 处理后ꎬ马铃薯块茎花青素含量与其细胞 Ca2 + / CaM信号物质变化相关性分析
Table 2  With NOꎬ H2O2 and NO +H2O2 treatmentꎬ correlation analysis between anthocyanin content
and Ca2 + / CaM signal matters in cell of potato tuber
关联性分析
Correlation analysis
Ca2 +  ̄ATPase活性
Ca2 +  ̄ATPase activity
CAM含量
CaM content
薯皮 Skin 薯肉 Flesh 薯皮 Skin 薯肉 Flesh
L8 方程 y = 10. 513x - 1. 2181 y = 1. 5107x + 0. 5113 y = 42. 005x - 5. 5311 y = 9. 9809x + 0. 6505
R2 R2 = 0. 8408 R2 = 0. 9743 R2 = 0. 8208 R2 = 0. 9635
L7 方程 y = 7. 9481x + 0. 7121 y = 3. 027x + 1. 0379 y = 12. 635x + 3. 6879 y = 15. 694x + 1. 5877
R2 R2 = 0. 9993 R2 = 0. 8968 R2 = 0. 9202 R2 = 0. 9426
LC 方程 y = 6. 9090x - 3. 8114 y = 1. 9024x + 1. 1234 y = 9. 1178x - 2. 6114 y = 9. 4587x - 1. 0870
R2 R2 = 0. 9221 R2 = 0. 8081 R2 = 0. 9582 R2 = 0. 8502
SD 方程 y = 1. 6495x + 2. 5362 y = 4. 6636x - 0. 4255 y = 2. 8043x + 6. 4414 y = 6. 3078x + 3. 6647
R2 R2 = 0. 9506 R2 = 0. 9632 R2 = 0. 8465 R2 = 0. 7853
决定系数 R2 0. 9194 0. 8859
3  讨论与结论
3􀆰 1  NO和 H2O2 对马铃薯花青素代谢作用
在马铃薯块茎中ꎬ 花青素含量除受遗传因子决定
外ꎬ 多样的信号分子与植物生长调节剂 NO、ALA、
GNT、SA、MeJA、ABA、GA对花青素代谢具有较大的调
节作用[12]ꎮ NO和 H2O2 作为植物逆境胁迫和生理生
化代谢的重要信号分子ꎬ在植物次生代谢启动以及植
物酶蛋白活性调控方面有重要作用[2ꎬ13 - 14]ꎮ 研究表
明ꎬ外源 NO和 H2O2 处理后ꎬ马铃薯花青素含量升高ꎬ
同时ꎬ与之相关的结构蛋白 PAL、PPO 和 CHS 活性提
高ꎬ并且ꎬ花青素的积累与结构蛋白活性提高相吻合ꎬ
说明 NO和 H2O2 通过诱导其结构蛋白活性促进花青
素积累[2]ꎮ 本次盆栽试验发现ꎬ外源 NO和 H2O2 处理
诱导了 4 种基因型马铃薯花青素含量升高ꎬ这与前期
大田试验结果一致ꎮ
3􀆰 2  外源信号诱导马铃薯花青素合成的 Ca2 +依赖途径
Ca2 +除了本身能诱导植物花青素合成与积累ꎬ也
作为一种重要的信号分子ꎬ调控环境因子、外源化学物
质和金属离子等对植物花青素合成的诱导ꎮ Ca2 +  ̄
ATP酶受 Ca2 + 、CaM 等多种信号分子的调节[12]ꎬ近年
来ꎬ大量的研究表明ꎬ钙信使系统参与了果实成熟与着
色过程[15]ꎬ周开兵等[14]用 0􀆰 2%的 CaCl2 溶液对红荔
枝叶面喷施后ꎬ其果皮花色素苷含量较对照增加了
21% ꎮ Wang等[17]研究钙和 Ca2 +  ̄ATP 酶低温下诱导
五色苋花青素合成ꎬ结果表明花青素含量的增加与
CaM含量、Ca2 +  ̄ATP 酶活性呈正相关ꎻGovindaswamy
等[18]研究发现 Ca2 +  ̄ATP酶参与胡萝卜愈伤组织花青
素的积累ꎬ花青素合成受钙和钙通道蛋白调节的影响ꎮ
本研究发现ꎬ外源 NO 和 H2O2 处理彩色马铃薯ꎬ4 种
不同基因型马铃薯块茎 Ca2 +  ̄ATP 酶活性升高ꎬCaM
含量增加ꎬ花青素积累ꎬ且花青素含量与 Ca2 +  ̄ATP 酶
活性及 CaM 含量呈显著正相关ꎬ说明 NO 和 H2O2 依
赖 Ca2 + / CaM途径诱导马铃薯花青素积累ꎮ
3􀆰 3  细胞 Ca2 + / CaM介导 NO 和 H2O2 诱导马铃薯
花青素的合成
在 NO 和 H2O2 作用的信号途径中ꎬNO 和 H2O2
可以通过 ROS 途径调控细胞 Ca2 + / CaM 系统功能启
动ꎬ也可以通过 MAPK(丝裂原活化蛋白激酶)和 G 蛋
白等途径诱导 Ca2 + / CaM 信号物质含量变化ꎬ或直接
诱导 Ca2 + / CaM 途径发生[3 - 4ꎬ19]ꎮ NO 可能引起胞外
Ca2 +内流和胞内 Ca2 + 的增加[3]ꎬ H2O2 是 ROS 的一
种ꎬROS能诱导钙信号系统启动[20]ꎮ 本试验发现ꎬ外
源 NO和 H2O2 作用上调了马铃薯块茎 Ca2 +  ̄ATP酶活
性和 CaM蛋白含量ꎬ进而促进其花青素合成与积累ꎮ
由此ꎬ我们可以提出一个假说:外源 SNP和 H2O2 处理
后ꎬ促进活性氧代谢加剧ꎬ细胞膜离子渗漏增强ꎬ胞外
Ca2 +内流ꎬ膜上 Ca2 +  ̄ATP酶活性提高ꎬ增强了 Ca2 +跨
膜运输与 Ca2 + / CaM 结合概率ꎬ从而活化了花青素调
节蛋白活性ꎬ花青素合成量增加ꎬ即细胞 Ca2 + / CaM介
导 NO和 H2O2 诱导的马铃薯花青素合成ꎮ
本研究是在马铃薯盆栽模式下ꎬ用外源 NO 和
H2O2 处理ꎬ测定马铃薯块茎花青素含量、CaM 含量、
Ca2 +  ̄ATP酶活性和相关性分析ꎬ结合前期试验 NO 和
H2O2 对花青素合成相关酶类 PAL、PPO和 CHI活性影
158
核  农  学  报 27 卷
响的研究ꎮ 阐述了 Ca2 + / CaM 在介导 NO 和 H2O2 诱
导马铃薯花青素的合成代谢中的信号功能ꎬ证实了
NO和 H2O2 具有调控花青素合成功能的判断ꎮ 然而ꎬ
本试验研究材料仅集中于马铃薯块茎ꎬ数据也仅限于
Ca2 +  ̄ATP酶和 CaM方面ꎬ因此ꎬNO和 H2O2 诱导马铃
薯花青素合成的信号转导机制以及 Ca2 + / CaM 在其中
的功能ꎬ还有待进一步深入探究ꎮ
参考文献:
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2013ꎬ27(6):0848 ~ 0853
Exogenous NO and H2 O2 Dependent Signal Molecule Ca
2 + / CaM
to EnhanceAnthocyanin Accumulation of Potato Tuber
MA Ting ̄rui1ꎬ2   ZHANG Jin ̄wen1ꎬ2   LIANG Hui ̄guang1ꎬ2   LIU Yong ̄qiang3   WANG Jin ̄hu1ꎬ2
( 1College of AgricultureꎬGansu Agricultural UniversityꎬLanzhouꎬ Gansu  730070ꎻ 2Key Laboratory of Arid habitats Crop
Science in GansuꎬLanzhouꎬ Gansu  730070ꎻ 3Potato InstituteꎬGansu Academy of Agricultural SciencesꎬLanzhouꎬ Gansu  730070)
Abstract:Taking different colors potatos(Solanum tuberosum L. ) ‘Longshu No. 8’ꎬ ‘LongshuNo. 7’ꎬ ‘LC310 - 2’
and ‘Shandongcairou’ as materialsꎬ this experiment studied on anthocyanin accumulation and related signal mater  
Ca2 +  ̄ATPase and CaM of potato tuber after treatment of water (CK)ꎬ NOꎬ H2O2ꎬ NO + H2O2 . The results showed thatꎬ
the anthocyanin accumulated in 4 gene ̄types potatoesꎬ Ca2 +  ̄ATPase activity increasedꎬ CaM content enhanced after
exogenous NO and H2O2 treatments. The inductive effect was NO + H2O2 > H2O2 > NO > CK. Moreoverꎬ anthocyanin
accumulation was related with Ca2 +  ̄ATPase activity increasing and CaM content enhanceꎬ and its related index was
0􀆰 9194 and 0􀆰 8859. It indicated that NO and H2O2 had a certain role in promoting the potato anthocyanin synthesisꎬ
and intracellular Ca2 + / CaM signal play signal transduction in NO and H2O2 inducing potato anthocyanin synthesis.
Key words:PotatoꎻNOꎻH2O2ꎻ Signal Molecule Ca2 + / CaMꎻAnthocyanins
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