全 文 ：收稿日期：!""#$"%$&! 接受日期：!""#$"’$!"
基金项目：国家自然科学基金（%"()&"%"）；北京市自然科学基金（’"*!"!%）资助。
作者简介：范琼花（&+#"—），女，湖北京山人，硕士，主要从事植物逆境生理方面的研究。,-./01：23/-405+’")6&’%7 89.
! 通讯作者 :51："&"$’#+&#’*)，,-./01：;810/<=6 8//>? /8? 8硅对短期低温胁迫小麦叶片光合作用及
其主要相关酶的影响
范琼花&，孙万春&，李兆君&，梁永超&，!!
（& 中国农业科学院农业资源与农业区划研究所，农业部作物营养与施肥重点实验室，北京 &"""#&；
!石河子大学农学院，绿洲生态农业重点实验室，新疆石河子 #%!""%）
摘要：采用溶液培养试验，以抗寒性不同的两个小麦品种：临麦 !号（高抗）和扬麦 &*#号（低抗）为材料，研究短期
低温胁迫下，加硅处理（@0 &7" ..91 A B）对小麦叶片光合作用生理参数（净光合速率、气孔导度、蒸腾速率、细胞间隙
CD!浓度和水分利用效率）及其主要酶 E3FGC/>5和 G,GC/>5的影响。结果表明，在短期低温胁迫下，加硅处理显著
提高了小麦叶片的净光合速率、气孔导度和水分利用效率。短期低温胁迫下，两小麦品种叶片 E3FGC/>5活性显著
降低，低抗品种降低幅度更大；但加硅处理后，低抗品种 E3FGC/>5活性显著比不加硅处理高，且与无低温处理的对
照没有显著差异。硅对低抗品种扬麦 &*#缓解低温胁迫的效果要明显高于高抗品种临麦 !号。硅能显著提高低温
胁迫下小麦净光合速率与硅提高小麦叶片 E3FGC/>5活性密切相关。短期低温胁迫使小麦 G,GC/>5活力升高，加硅
处理可以抑制低抗品种中 G,G羧化酶的升高，但 G,GC/>5活力在低温胁迫条件下上升的机理有待于进一步研究。
关键词：硅；短期低温胁迫；小麦；光合作用；E3FGC/>5；G,GC/>5
中图分类号：H+(*7)#；@&(%7) I & 文献标识码：J 文章编号：&""#$*"*K（!""+）"%$"*(($")
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G1/
!"# $%&’(：$#-#3’"；$7’(+*+.(% 3’-/ $+(.$$；87.!+；97’+’$5"+7.$#$；:,;02!$.；0102!$.
冻害是影响冬小麦生长得主要灾害之一，春季
寒潮对小麦生长的影响更为严重［<］。据报道，植物
的抗寒性与光合作用的关系密切，低温胁迫对植物
光合速率、光合色素含量、叶绿体亚显微结构、光合
能量代谢及 0)!活性等一系列重要的生理生化过
程都有明显影响［=］。:,;0羧化酶、010羧化酶均为
植物光合作用中碳同化的关键酶。:,;0羧化酶主
要存在于 2>植物中；而 010羧化酶虽然是 2? 植物
中同化 2@= 的关键酶，但却广泛地存在于 2> 植物
中，与 2?植物相比，2>植物中此酶的活性很低［>］。
有研究表明，:,;0 羧化酶活性与光合效率呈正相
关，在大豆的鼓粒期叶片中 :,;0 羧化酶活性与产
量显著正相关［?］；也有认为，低温胁迫下，小麦叶片
的 :,;0羧化酶活性降低［A］。施教耐等［B］、吴敏贤
等［C］的研究表明，010羧化酶具有低温失活现象，并
发现这种低温失活是可逆的。
硅是地壳和土壤中第二个最丰富的元素，其对
植物的健康生长与发育，尤其是对禾本科作物至少
是有益的［DE
迫在内的非生物胁迫和生物胁迫（如白粉病、稻瘟病
和虫害）抗性方面有重要的生理作用［DEG，<
超等［机制中发现，低温（?H）处理黄瓜、小麦等植物 > 7，
经硅处理的植物对硅和其他养分吸收的速率下降缓
慢，而无硅处理的植株对养分吸收显著被抑制；硅
处理的植株养分吸收显著被抑制所需要的低温
（?H）处理时间为 A 7；而无硅处理为 < 7。朱佳
等［
临麦 =号。施硅能够提高低温胁迫条件下小麦幼苗
净光合速率（0"）、气孔导度（I$）、气孔限制值（J$）、
水分利用效率（KL1）；蒸腾速率（M(）在低温胁迫条
件下降低，加硅处理后蒸腾速率下降。其中高硅（)#
绿素含量和叶绿素 ! O P的比值下降，可溶性糖含量
显著升高；而施硅处理能减缓低温胁迫对叶绿素含
量、27-! O 27-P比值和可溶性糖含量的影响。通常认
为，在一定范围内，叶绿素与光合参数尤其是净光合
速率存在一定的正相关，而光合作用速率的高低与
碳同化的关键酶密切相关。在朱佳等［
速率与碳同化的关键酶的关系，且设计中低温胁迫
的时间较长（= /）；对于短期低温胁迫下小麦的光
合生理响应与硅对于缓解小麦低温胁迫的作用效果
与机制仍不清楚。因为，作物对逆境胁迫如低温胁
迫的响应过程与变化与胁迫的时间关系密切，有些
生理响应在初期与后期完全不同［
参数、碳同化的关键酶活性对短期瞬间低温胁迫下
的响应以及外源硅的作用与机制，旨在进一步阐明
硅提高小麦耐低温的生物学机制。
) 材料与方法
)*) 植物材料与培养
小麦（ !"#$#%& ’()$#*%& J6）品种为临麦 = 号（高
抗，J#"%!# =）和扬麦
后将种子放在滤纸上置于 >FH恒温箱内催芽。将
萌发后的种子播在育苗盘中，置于室温下生长。待
小麦出现第 =片真叶时，选择健壮且生长一致的幼
苗移栽到带孔盖的 > J的塑料箱中，每孔 A株，每箱
盛有不同硅处理的 < O =强度的霍格兰营养液。营养
液组成为（R O J）：FN?G UR)@?·CT=@、FNA< VW@>、FNVT=0@?、
铁作为铁源（X. FNFA %%’- O J），微量元素用 Z("’"营
养液。试验在人工气候室中进行，日温 O夜温控制在
=AH O
7 O /，营养液每 ? /更换 <次。硅处理中由硅酸钾所
引入的钾量从配制 T’!R-!"/营养液所用的硝酸钾中
扣除，由此而引起的 W@E> 损失用稀硝酸补偿。各处
理营养液 9T每天用 V@T 或 T=)@? 稀溶液调节至
ANA!AND。营养液用蒸馏水（无硅）配制。
)*+ 试验设计
根据已有研究的结果［
麦各种参数影响没有 )#
当麦苗在硅浓度分别为 )# F 和
A?A>期 范琼花，等：硅对短期低温胁迫小麦叶片光合作用及其主要相关酶的影响
处理 ! 周）时，将塑料箱置于温度 " #$，光强 %&&
!’() *（’
+·,），光照 -+ . * /条件下低温胁迫处理。处
理时 01+ 浓度与室内浓度一致，01+ 浓度变化范围
为（%&& 2 -&）’() * ’()。每个处理重复 % 次。在低温
处理第 &和 # .以及低温处理终止恢复 ! /后测定
光合生理参数，3456羧化酶和 676羧化酶活力。
!"# 测定项目与方法
-8!8- 光合生理参数的测定 采用英国 9:0 ;0<
便携式光合作用仪对小麦完全展开倒二叶进行净光
合速率（6=）、气孔导度（>,）、蒸腾速率（?@）、细胞间
隙 01+浓度（0<）等的测定；蒸腾效率（AB7）为6= * ?@
计算 所 得［-C］。测 定 过 程 中，光 强 约 为 D&&
!’() *（’
+·,），大气温度（+# 2 -）$，大气 01+ 浓度变
化范围为（%&& 2 -&）’() * ’()。
-8!8+ 34560E,F酶活力的测定 采用紫外分光光
度计法。参照李合生［-D］的方法略加改动。取小麦
叶片 &8# G，放入预冷研钵中，加入 ! ’;预冷的提取
介质，提取介质为 %& ’’() * ; ?@<,HI0)（JI C8K）缓冲
液，内含 -& ’’() * ; LG0)+、&8+# ’’() * ; 7:?9、#
’’()* ; 谷胱甘肽。迅速磨匀，滤液于离心力为
+&&&& M G %$下离心 -# ’<=，弃沉淀，上清液即酶粗
提液，以上过程均在 &!%$下进行。
酶反应体系为：# ’’() * ; N9:I &8+ ’;，#&
’’()* ; 9?6 &8! ’;，酶提取液 &8- ’;，&8+ ’() * ;
NEI01!，反应介质 -8% ’;，-K&!G * ’;磷酸甘油酸激
酶溶液 &8- ’;，-K&!G * ’;甘油醛"!"磷酸脱氢酶溶
液 &8- ’;，蒸馏水 &8! ’;。将酶反应体系摇匀，倒
入比色杯内，以蒸馏水为空白，在紫外分光光度计上
!%& =’处反应体系的吸光度作为零点值。将 &8-
’; +# ’’() * ; 3456加于比色杯内，立即计时，每隔
+&,测 -次吸光度，共测 + ’<=。以零点到第一分钟
内吸光度下降的绝对值计算酶活力，另需作不加
3456的对照。
-8!8! 6760E,F 酶活力的测定 采用张志良等［-O］
的方法，略加改动。取小麦叶片 &8# G 放入预冷的
研钵中，加入 ! ’;预冷的提取介质，迅速磨匀，匀浆
液以离心力为 -#&&& M G %$下离心 +& ’<=，弃沉
淀，取上清液备用，以上过程均在 &!%$下进行。
在试管中依次加入反应缓冲液 -8& ’;，%&
’’(- * ; 676，- ’G * ’; N9:I（JI D8O）、苹果酸脱氢
酶（L:I，约 -&!G * ’;）和酶提取液各 &8- ’;，蒸馏
水 -8# ’;，在所测温度下保温 -& ’<=后，在 !%& =’
处测定光密度（1:&）。然后再加入 -&& ’’() * ; NEIH
01! &8- ’;启动反应，立即计时，每隔 +&,测定 -次
光密度值（1:-），共测 + ’<=，记录光密度的变化。
-8!8% 蛋白质含量的测定 采用考马斯亮蓝法［-D］
测定。酶活力单位为 01+!’() *（’G·.），J@(PF<=。
试验数据采用 Q6QQ软件进行方差分析，:4==E=
新复极差法进行显著性检验（ ! R &8&#）。
$ 结果与分析
$"! 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片光合生理
参数的影响
+8-8- 对小麦叶片净光合速率的影响 短期低温
胁迫下，两小麦品种的净光合速率均有所下降，但下
降幅度不同（表 -）。低温处理 # .后，扬麦 -#D叶片
净光合速率下降到对照的 #%8!S，临麦 +则下降到
对照的 D!8-S，差异显著。恢复生长 ! / 后，扬麦
-#D净光和速率为对照的 C!8!S，临麦 + 为对照的
D&8-S。加硅处理后，净光合速率下降幅度有所减
缓，低温 # . 后，扬麦 -#D 下降为对照的 D+8#S，临
麦 +为对照的 D%8+S，差异显著。
+8-8+ 对小麦叶片气孔导度的影响 短期低温胁
迫下，两小麦品种叶片气孔导度均显著下降（表 +）。
低温处理 # .，扬麦 -#D下降到对照的 %%S，而临麦
+下降到对照的 !%8!S，恢复常温 ! /后，两小麦品
种的叶片气孔导度均有所回升，扬麦 -#D 为对照的
K-8!S，临麦 +为对照的 %-8OS。加硅处理后，下降
幅度明显低于不加硅，扬麦 -#D为对照的 DC8-S，临
麦 +为对照的 D!8!S，差异不显著。恢复常温 ! /
表 ! 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片净光合速率的影响［%&$!’() *（’$·+）］
,-.)/ ! 011/23 (1 +4)42(5 (5 5/3 67(3(+8537/+4+ 9-3/（:5）(1 37/ ;7/-3 +//<)45=+ >5处理 扬麦 -#D号 TE=G’E< -#D 临麦 +号 ;<=’E< +
?@FEP’F=P, " Q< U Q< " Q< U Q<
对照 0V !8KO 2 &8-! EW !8!+ 2 &8!+ EWX !8C& 2 &8&% EW !8D! 2 &8-K E
低温处理 # . 0()/ ,P@F,, Y(@ # . +8&& 2 &8&% G +8C% 2 &8&# Y !8&C 2 &8&- X/FY !8++ 2 &8&% X/F
恢复常温 ! / ! / EYPF@ X()/ @F’(ZF/ +8C& 2 &8+C Y +8D% 2 &8+K /FY +8OK 2 &8-! FY !8!D 2 &8&D WX/
注（N(PF）：不同字母表示差异达 #S 显著水平，下同。:
$%!%& 对小麦叶片蒸腾速率的影响 短期低温胁
迫条件下，两小麦品种的叶片蒸腾速率显著下降（表
&）。扬麦 !"#和临麦 $分别下降到对照的 ’$%&(和
)"%’(，差异显著。恢复 & *后，扬麦 !"#蒸腾速率
为对照的 +)%!(，临麦 $ 叶片蒸腾速率为对照的
,’%&(，差异显著。加硅处理后，扬麦 !"#的蒸腾速
率在低温处理和恢复 & *后分别为对照的 ’!%,(和
#&%!(，临麦 $则分别为对照的 ,’%!(和 ’-%&(。
$%!%) 对小麦叶片细胞间 ./$ 浓度的影响 短期
低温胁迫下，两小麦品种的叶片细胞间隙 ./$ 浓度
变化趋势不同（表 )）。在低温处理 " 0，扬麦 !"#比对
照增加了 $%,(，而临麦 $则下降到对照的 +!%"(。
恢复常温 & *后，扬麦 !"#比对照增加了 $%’&(，而临
麦 $下降到对照的 #+%$(。加硅处理后，扬麦 !"#叶
片细胞间隙 ./$浓度略有升高；而临麦 $叶片细胞间
隙 ./$浓度略有下降，但差异不显著。
表 ! 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片气孔导度的影响［""#$ %（"!·&）］
’()$* ! +,,*-. #, &/$/-#0 #0 1& #, .2* 32*(. &**4$/05& 604*7 &2#7.8.*7" -#$4 &.7*&&
处理 扬麦 !"#号 1234526 !"# 临麦 $号 763526 $
89:2;5:3;< = >6 ? >6 = >6 ? >6
对照 .@ -%!& A -%-! B -%!- A -%-$ BC -%!# A -%-! 2 -%!$ A -%-! B
低温处理 " 0 .DE* <;9:<< FD9 " 0 -%-, A -%-! : -%-+ A -%-! C* -%-, A -%-! : -%!- A -%-! BC*
恢复常温 & * & * 2F;:9 CDE* 9:5DG:* -%-# A -%-! C: -%-+ A -%-! C* -%-’ A -%-$ *: -%-# A -%-! C*:
表 9 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片蒸腾速率的影响［""#$ %（"!·&）］
’()$* 9 +,,*-. #, &/$/-#0 #0 .7(0&:/7(./#0 7(.* #, .2* 32*(. &**4$/05& 604*7 &2#7.8.*7" -#$4 &.7*&&
处理 扬麦 !"#号 1234526 !"# 临麦 $号 763526 $
89:2;5:3;< = >6 ? >6 = >6 ? >6
对照 .@ $%", A -%-! BC $%!’ A -%-$ *: &%") A -%-# 2 $%’# A -%!, B
低温处理 " 0 .DE* <;9:<< FD9 " 0 !%#" A -%-& F !%"" A -%-) 0 !%,$ A -%!& 40 !%#’ A -%!& F
恢复常温 & * & * 2F;:9 CDE* 9:5DG:* $%)! A -%!$ C !%#- A -%-# F4 $%&# A -%-, C* !%+, A -%!# :F
表 ; 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片细胞间 <=!浓度的影响（!"#$ % "#$）
’()$* ; +,,*-. #, &/$/-#0 #0 /0.*7-*$$6$(7 <=! -#0-*0.7(./#0（处理 扬麦 !"#号 1234526 !"# 临麦 $号 763526 $
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恢复常温 & * & * 2F;:9 CDE* 9:5DG:* &+)%" A $%!$ BC &+!%- A "%,, BC* &#!%- A "%,, C* &’+%- A -%-- *
$%!%" 对小麦叶片水分利用效率的影响 短期低
温胁迫下，两小麦品种的水分利用效率呈现出不同
的变化趋势（表 "）。扬麦 !"# 为对照的 ’’%$(，临
麦 $则比对照增加了 ,+%+(，差异均显著。恢复生
长 & *后，扬麦 !"#为对照的 #-%$(，临麦 $则比对
照增加 &,%+(。加硅处理后，两小麦品种水分利用
效率均上升，且临麦 $上升的幅度大。短期低温处
理两小麦品种水分利用效率差异显著，而恢复常温
生长后，二者差异并不显著。
表 > 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片水分利用效率的影响（<=!!"#$ % ""#$，?!=）
’()$* > +,,*-. #, &/$/-#0 #0 3(.*7 6./$/.@ *,,/-/*0-@（AB+）#, .2* 32*(. &**4$/05& 604*7 &2#7.8.*7" -#$4 &.7*&&
处理 扬麦 !"#号 1234526 !"# 临麦 $号 763526 $
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’)"&期 范琼花，等：硅对短期低温胁迫小麦叶片光合作用及其主要相关酶的影响
!"! 硅对短期低温胁迫条件下小麦叶片 #$%&’()*
和 &+&’()*活力的影响
图 !看出，短期低温胁迫条件下，两小麦品种的
"#$%&’()酶活力均有所下降，但下降幅度不同。与
对照相比，扬麦 !*+下降到对照的 ,-.，而临麦 /号
则下降到对照的 -+.，差异显著；加硅处理后，扬麦
!*+号为对照的 +*.，临麦 /号则为对照的 01.，均
明显高于不加硅的。说明加硅能提高短期低温胁迫
下小麦叶片 "#$%&’()的活力，且对低抗品种的效果
更为明显。恢复常温生长 1 2后，两小麦品种叶片
"#$%&’()活力均有所回升，且加硅处理的要比不加
硅上升的幅度大。
在短期低温胁迫下，两小麦品种叶片的 %3%羧
化酶的活力均有所上升，但升高幅度不同（图 /）。
扬麦 !*+上升为对照的 !40/ 倍，差异显著；临麦 /
上升为对照的 !4!1 倍，差异不显著；加硅处理后，
扬麦 !*+ 叶片酶活力为对照的 54+! 倍，差异不显
著；临麦 / 则为对照的 !4/+倍，差异显著。说明加
硅抑制了低抗品种 %3%羧化酶活力的上升，而对高
抗品种的 %3%羧化酶影响不大，可能是高抗品种对
低温胁迫有一定的缓冲作用。低温处理恢复 1 2
后，扬麦 !*+ 加硅处理继续上升到对照的 54+6 倍，
而不加硅处理则下降到对照的 !4,倍。临麦加硅处
理和不加硅处理均下降。
图 , 硅对短期低温胁迫下小麦叶片 #$%&羧化酶活力的影响
-./0, +11*23 41 ).5.246 46 #$%&’()* (23.7.38 41 9:*(3 5*(7*) $6;*< ):4<3=3*<> 245; )3<*))
［注（789)）：:!，:/，:1分别表示 &;，低温处理 * <，低温恢复 1 2，下同 =>2?@’9) &;，@8A2 (9B)(( C8B *< ’>2 12 ’C9)B @8A2 B)D8E)2，B)(F)@9?E)AGH :<) (’D) I)A8JH］
图 ! 硅对短期低温胁迫小麦叶片 &+&羧化酶活力的影响
-./0! +11*23 41 ).5.246 46 &+&’()* (23.7.38 41 9:*(3 5*(7*) $6;*< ):4<3=3*<> 245; )3<*))
? 讨论
低温对光合作用影响大致可分为两个方面：第
一，低温直接影响叶绿素的合成、光合器官的结构和
活性；第二，低温影响植物体内的其他生理过程，从
而间接地影响光合作用，如低温引起水分胁迫，气孔
对 &K/扩散阻力的增加，光合产物运输受阻等，从而
导致光合产物在叶片的积累。低温胁迫条件下，大
多数植物都显示出光合速率的明显下降［/5］。朱佳
等［!*］的研究表明，低温胁迫处理 / 2后小麦幼苗叶
+,* 植 物 营 养 与 肥 料 学 报 !*卷
片净光合速率（!"）降低，高抗品种 #$下降，且叶片
#$随 %&的减小而降低；低抗品种 #$上升，而 %&呈
现下降的趋势。加硅后，小麦 !" 、%&、’&、()* 上
升；同时，加硅处理还明显地降低了小麦的蒸腾强
度。
本研究结果表明，短期（+ ,）低温胁迫处理后小
麦叶片净光合速率（!"）也显著降低，与朱佳等在较
长时期（- .）低温胁迫的研究结果相一致。这可能
是由于小麦叶片气孔导度的降低（%&），限制了 #/-
向叶绿体的输送，降低了叶片内 #/-浓度，进而引起
光合原料供应不足所致（表 0、表 -）。此外，临麦 -
号 #$下降，且叶片 #$随 %&的减小而降低；扬麦 0+1
#$上升（表 2），而 %&呈现下降的趋势，可能是由于
低温胁迫破坏了低抗品种叶片的叶绿体结构，造成
叶片光合器官损伤，叶肉细胞的光合活性下降，导致
了 #/-浓度升高；而高抗品种，相同程度的低温胁
迫未造成生理损伤，只是引起了气孔导度的降低。
加硅后，小麦 !"、%&、()*上升，由于加硅改善低温
胁迫下小麦叶片的叶绿体的超微结构，使低温胁迫
下小麦叶绿体超微结构变得完整，提高叶绿体的稳
定性，降低了低温对小麦的伤害程度，从而增加了小
麦对低温逆境的抵抗能力［-0］。梁永超等［--］报道，
硅显著改善了盐胁迫下大麦叶片的超微结构，提高
大麦的耐盐性。这些结果说明，施硅在短期低温胁
迫下就能发挥作用；但是加硅处理后，扬麦 0+1 蒸
腾速率下降，而临麦 -号则是上升的（表 3），和朱佳
等［0+］的研究结果不一致，可能是高抗品种对短期低
温胁迫有一定适应性反应所产生的。
光合作用是作物产量的基础，#3植物光合作用
碳同化的关键酶除 456!羧化酶外，还有 !*!羧化
酶，且 #3 植物中 456!羧化酶活比 !*!羧化酶高，
对光合作用的影响大；456!羧化酶含量和活性常
与光合速率相联系，#789:;<78".=7等［-3］认为，456!羧
化酶的量和催化活性对叶片光合作用的叶肉导度限
制起主导作用。在低温胁迫下，456!羧化酶活性降
低，其活性与光合效率呈正相关［2］。张荣铣等［-2］的
研究结果表明，叶片展开后的 456! 羧化酶活性和
含量与光合速率成显著正相关。本试验结果表明，
在低温胁迫下，两小麦品种的净光合速率显著降低，
456!羧化酶活力均显著下降，这和已有研究结果一
致；但也可能是由于小麦叶片气孔导度的降低，限
制了 #/-向叶绿体输送，降低叶内 #/- 浓度，而 #/-
是光合作用的底物之一。值得注意的是，加硅处理
后，两小麦品种的 456! 羧化酶活力下降幅度均明
显低于不加硅处理（图 0），说明加硅能提高低温胁
迫下小麦叶片 456! 羧化酶活性。在 #3 植物中，
456!羧化酶主要与其光合的碳同化有关，而 !*!羧
化酶还具有其他一些生理功能，如重新固定由呼吸
作用所释放的 #/-等［3］。何洁等［-+］的研究表明，经
低温（>?）处理后，水稻幼苗叶片 !*! 羧化酶活性
有显著的降低。施教耐等［@］对植物 !*! 羧化酶的
研究表明，#2植物中 !*!羧化酶在低温下失活进而
影响对 #/- 的固定，同时也导致光合速率的下降。
在对从高粱叶片中纯化的 !*!羧化酶的低温失活
现象进行观察发现，这种低温失活是可逆的。段巍
巍［-@］对玉米的研究表明，!*! 羧化酶活性与叶绿
素，可溶性蛋白含量一样，与光合作用密切相关。本
研究中，在低温胁迫条件下，两小麦品种叶片 !*!
羧化酶的活性均上升，而净光合速率是降低的。这
和上述研究结果存在差异。低温胁迫下加硅处理
后，扬麦 0+1叶片酶活性虽为对照的 10A，但差异不
显著；临麦 - 则比对照增加 -1A，差异显著（! B
>C>+）。说明不耐低温品种对 !*!羧化酶的敏感度
要高于耐低温品种，且硅能抑制低抗品种 !*!羧化
酶的升高。关于 !*!羧化酶在低温胁迫升高的原
因，可能是因为小麦是 #3 植物，!*!羧化酶在小麦
叶片中含量不高，且该酶活性低温失活可逆；还可
能与植物品种的抗冷性有关，具体的原因还有待进
一步研究。
! 小结
0）加硅处理显著提高了短期低温胁迫条件下
小麦叶片的光合速率、气孔导度和水分利用率。
-）短期低温胁迫条件下两个小麦品种叶片的
456!羧化酶活性显著降低，低抗品种降低幅度更
大；但加硅处理后，低抗品种 456!羧化酶活性比不
加硅处理显著提高，而与无低温处理的对照没有显
著差异。
3）硅对缓解低抗品种的低温胁迫的效果明显
好于高抗品种。硅能显著提高低温胁迫下小麦光合
速率与硅显著提高叶片 456! 羧化酶活性密切相
关。短期低温胁迫下，小麦 !*! 羧化酶活力上升，
加硅处理后能抑制低抗品种 !*!羧化酶的升高。
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*RR 植 物 营 养 与 肥 料 学 报 +R卷