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Isolation and identification of four new Erwinia carotovora subsp. carotovora strains

四株胡萝卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜亚种新菌株的分离鉴定



全 文 :书四株胡萝卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜
亚种新菌株的分离鉴定
赵玲1,2,3,4,柴兆祥1,李金花1,2,3,4,王蒂2
(1.甘肃农业大学草业学院,甘肃 兰州730070;2.甘肃省作物遗传改良与种质创新重点实验室,甘肃 兰州730070;3.草业生态系统
教育部重点实验室,甘肃 兰州730070;4.中-美草地畜牧业可持续发展研究中心,甘肃 兰州730070)
摘要:采用棋盘式取样法,从正茬、重茬、连作2年和连作3年的马铃薯播前、现蕾期、成熟期和收获期4个不同阶段
采集马铃薯根围土样。以稀释平板法,用选择性培养基CVP分离软腐欧文氏杆菌,共得到42个菌株。在形态学
观察和生理生化特性测定的过程中发现编号为GAUPb410、GAUPb492、GAUPb416和GAUPd34等4个菌株
的主要性状一致,且与其他菌株的性状不同。致病性测定结果显示,这4个菌株均能引起马铃薯薯片腐烂。对其
中的2个菌株进行了16SrDNA序列分析,其PCR产物的序列与GenBank上登记的18个分离自中国大白菜上的
犈狉狑犻狀犻犪犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪菌株的亲缘关系最近,同源性均达99%。利用DNAStar软件绘制系统发育
树状图,菌株GAUPb410亦与这18个犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪菌株位于系统发育树的同一分支,聚为一
类;菌株GAUPb492与其中的16个犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪菌株位于系统发育树的同一分支,聚为一类;
结合生理生化特性和16SrDNA序列分析,确定这4个菌株为胡萝卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜亚种(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪
subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪)新菌株。
关键词:马铃薯;连作;根围土壤;胡萝卜软腐欧文氏菌胡萝卜亚种;16SrDNA
中图分类号:S432.1  文献标识码:A  文章编号:10045759(2011)04024408
  细菌、真菌和放线菌是土壤微生物的三大类群[13],在植物根系的微生态环境中对物质和能量的转化起重要
作用[26]。欧文氏杆菌(犈狉狑犻狀犻犪)是很多植物的病原菌,植物致病欧文氏杆菌常引起植物器官和组织的软腐[7,8],
主要有胡萝卜软腐欧文氏杆菌胡萝卜亚种(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪,Ecc=犘犲犮狋狅犫犪犮狋犲狉犻狌犿犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪
subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪)、胡萝卜软腐欧文氏杆菌黑胫亚种(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犪狋狉狅狊犲狆狋犻犮犪,Eca=犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪
subsp.犪狋狉狅狊犲狆狋犻犮犪)和菊欧文氏杆菌(犈.犮犺狉狔狊犪狀狋犺犲犿犻,Ech=犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犺狉狔狊犪狀狋犺犲犿犻)[8]。胡萝卜
软腐欧文氏杆菌(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪)、危害胡萝卜(犇犪狌犮狌狊犮犪狉狅狋犪var.狊犪狋犻狏犪)、烟草(犖犻犮狅狋犻犪狀犪狋犪犫犪犮狌犿)、黄瓜(犆狌
犮狌犿犻狊狊犪狋犻狏狌狊)、茄子(犛狅犾犪狀狌犿犿犲犾狅狀犵犲狀犪)、番茄(犔狔犮狅狆犲狉狊犻犮狅狀犲狊犮狌犾犲狀狋狌犿)、辣椒(犆犪狆狊犻犮狌犿犳狉狌狋犲狊犮犲狀狊)、大白
菜(犅狉犪狊狊犻犮犪狆犲犽犻狀犲狀狊犻狊)、甘蓝(犅.狅犾犲狉犪犮犲犪var.犮犪狆犻狋犪狋犪)、马铃薯(犛狅犾犪狀狌犿狋狌犫犲狉狅狊狌犿)等,同时引起贮藏期蔬
菜腐烂[8]。Ecc是机遇性植物病原菌,能够以腐生的形式存活于土壤中,环境条件适合时,能产生许多酶,通过浸
腐的方式引起植物器官和组织的严重损伤[911]。
rRNA分子在生物体中普遍存在,其一级结构中既具有保守的片段,又具有变化的碱基序列[12]。在生物进
化的漫长过程中,rRNA分子保持相对恒定的生物学功能和保守的碱基排列顺序,同时也存在着与进化过程相一
致的突变率,在结构上可分为保守区和可变区[13]。保守的片段反应了生物物种间的亲缘关系,而高变片段则能
表明物种间的差异,那些保守的或高变的特征性核苷酸序列则是不同分类级别生物(如科、属、种)鉴定的分子基
础[14]。细菌rRNA按沉降系数分为3种,分别为5S、16S和23SrRNA。其中位于原核细胞核糖体小亚基上的
16SrRNA长约1540bp,结构和碱基排列复杂度适中,较易于进行序列测定和分析比较。16SrDNA是细菌染
色体上编码16SrRNA相对应的DNA序列,存在于所有细菌染色体基因中[15],它的内部结构由保守区和可变区
244-251
2011年8月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第20卷 第4期
Vol.20,No.4
 收稿日期:20100318;改回日期:20100423
基金项目:甘肃省农业生物技术研究与应用开发项目(GNSW200601),现代农业产业技术体系建设专项资金(CARS10P18)和国家科技支
撑计划项目(2006BAD21B05)资助。
作者简介:赵玲(1985),女,黑龙江齐齐哈尔人,助教,硕士。Email:751470508@qq.com
通讯作者。Email:li_jinhua@yeah.net,wangd@gsau.edu.cn
2部分组成。近年来,许多学者通过PCR扩增16SrDNA相应的rDNA片断,来快速、灵敏地检测鉴定细菌。
本研究通过常规的形态观察、生理生化特性分析和16SrDNA序列分析对连作马铃薯田根围土壤中分离到
的4个主要性状一致的菌株进行了鉴定,确定为胡萝卜软腐欧文氏菌胡萝卜亚种(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅
狏狅狉犪,Ecc),为4个Ecc新菌株。本研究有助于了解胡萝卜软腐欧文氏菌胡萝卜亚种在甘肃省马铃薯连作田中的
分布及其在马铃薯连作障碍中所起的作用,进而为克服越来越严重的马铃薯连作障碍提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 样品采集
从正茬、重茬、连作2年和连作3年的马铃薯播前(2008年3月)、现蕾期(2008年6月)、成熟期(2008年7
月)和收获期(2008年8月)4个不同阶段,采用棋盘式取样方法采集马铃薯根围耕作层(0~20cm)土样。每采样
小区20m2,每小区共采集5个土样。土样装入无菌袋后混合均匀,标明编号、地点、采集时间,带回实验室备用。
1.2 土壤悬浮液的制备
称取10g土壤样品,置于无菌三角瓶中,用无菌水定容至100mL,摇匀1min,使土样均匀分散。土壤悬浮
液的浓度为10-1g/mL。分离时为保证悬浮液充分混匀,每次吸取悬浮液时摇匀。
1.3 试验用培养基
CVP(结晶紫果胶盐)培养基用于软腐欧文氏杆菌的分离和鉴定[16],其组分为:结晶紫水溶液1mL,CaCl2·
2H2O3mL,NaNO31g,聚果胶酸钠9g,1mol/LNaOH5mL,十二烷基硫酸钠0.5mL,琼脂5g,蒸馏水500
mL。配制CVP培养基后,待平板的冷凝水消失后再接菌。
1.4 软腐细菌的分离及计数
采用稀释平板法[16]进行土样细菌的分离。根据预试验,在CVP平板上适宜的土壤浓度为10-1g/mL,用滴
管吸取0.5mL土壤悬浮液均匀涂在CVP平板上。每个土样重复5个平板。27℃黑暗条件下培养48~72h后
计数。
1.5 致病性测定
试验用马铃薯品种为大西洋,由甘肃省条山农场提供。取新鲜的马铃薯块茎,用清水冲洗干净后再用75%
的酒精擦洗表面,切成厚约8mm的薄片,放在直径90mm的无菌、内有滤纸的平皿内。在薯片上用无菌解剖刀
刻长约2cm、深和宽约3mm平行的5个槽,左边的2个槽接菌试验菌株的菌苔,右边的2个槽接灭菌蒸馏水作
为对照,中间的1个槽既不接灭菌水也不接试验菌株的菌苔。接种后在每个平皿内注入6mL无菌蒸馏水。每
个菌株重复5个马铃薯薯片。盖上皿盖后于28℃培养箱中恒温培养。24h后检查结果[16]。
1.6 软腐细菌的生理生化测定
对能够引起马铃薯薯片腐烂的细菌菌株进行生理生化特性的测定。将CVP上生长的菌落纯化到NA(肉汁
胨琼脂)平板上培养并依次进行下列试验:革兰氏反应,鞭毛染色,氧化酶,过氧化氢酶,葡萄糖发酵试验,从阿拉
伯糖、乳糖、山梨糖醇、棉籽糖产酸的试验,柠檬酸盐利用,果胶酸盐降解,产生吲哚,37℃生长情况,对红霉素敏感
性试验[16]。
1.7 软腐欧氏杆菌的16SrDNA鉴定
经过生理生化特性测定后,从完全一致的菌株中随机选取2株进行16SrDNA序列分析。
1.7.1 细菌的培养 将试验菌株接种在LB(LuriaBertani)培养液中,28℃培养24h。LB培养液的成分为:胰
蛋白胨10g/L,酵母浸出物5g/L,NaCl10g/L,pH7.0~7.2[7]。
1.7.2 细菌基因组DNA的提取 本试验采用天根生化科技(北京)有限公司的细菌基因组DNA提取试剂盒
(离心柱型)进行DNA的提取。
1.7.3 细菌基因组DNA的纯度检测 配制1% 琼脂糖凝胶,用1×TAE作为电泳缓冲液。以 MarkerⅢ(分
子量为:200,500,800,1200,2000,3000,4500bp)为分子量标准,80V电压(5V/cm)恒压电泳。
1.7.4 试验用引物 试验用引物为8f:5′AGAGTTTGATCCTGGCTCAG3′,1492r:5′GGTTACCTT
GTTACGACTT3′[17]。
542第20卷第4期 草业学报2011年
引物8f共20bp碱基,G+C含量为50.00%。引物1492r共21bp碱基,G+C含量为42.86%。
1.7.5 聚合酶链式反应(PCR)扩增 PCR25μL反应体系:16.5μLddH2O,2.5μL10×PCR反应缓冲液,2
μLdNTP,1μL上游引物 (8f),1μL下游引物 (1492r),1.5μL模板DNA,0.5μLTaqTMDNA聚合酶。PCR
扩增中,模板DNA使用1∶10和1∶100两个稀释浓度。以灭菌ddH2O为阴性对照(-CK),以甘肃农业大学植
物病理学实验室的一株犈狉狑犻狀犻犪犮犪狉犪狋狅狏狅狉犪为阳性
图1 菌株犌犃犝犘犫410接种大西洋马铃薯
薯片后引起的腐烂症状
犉犻犵.1 犜犺犲狉狅狋狋犲狀狊狔犿狆狋狅犿犮犪狌狊犲犱犫狔犪狉狋犻犳犻犮犻犪犾狔
犻狀狅犮狌犾犪狋犲犱狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫410
   左侧2个接种槽接种菌苔 Thelefttwoslotswereinoculatedwith
bacteriallawnofstrainGAUPb410;右侧2个接种槽接种灭菌蒸馏水
TherightslotswereinoculatedwithsteriledistiledH2O;中间接种槽不
接种Themiddleslotwasinoculatedwithnothing
图2 菌株犌犃犝犘犫410利用阿拉伯糖产酸的情况
犉犻犵.2 犃犮犻犱狆狉狅犱狌犮犻狀犵狅犳狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫410犳狉狅犿犪狉犪犫犻狋狅犾
   A:CK,试管内培养基不接菌苔,以水琼脂封口,试管封闭Mediumin
sidewasnotinoculatedwithlawn,wascoveredwithWA,tubeclosed;
B:接种菌株GAUPb410,试管内培养基以水琼脂封口,试管封闭 Medi
uminsidewasinoculatedwithlawn,coveredwithWA,tubeclosed;C:
CK,试管内培养基未封口,试管封闭 CK,mediuminsidewasnotinocu
latedwithlawn,notcoveredwith WA,tubeclosed;D:接 种 菌 株
GAUPb410,试管内培养基未封口,试管封闭CKMediuminsidewasin
oculatedwithlawn,notcoveredwithWA,tubeclosed
对照(+CK)。PCR 反应步骤:94℃热启动变性5
min,94℃变性30s,57℃退火40s,72℃延伸90s,30
个循环,72℃延伸10min。最后在4℃停止反应。
1.7.6 PCR产物的纯化和序列测定 PCR产物的纯
化采用北京天为时代科技有限公司的离心柱型PCR
产物纯化试剂盒(离心柱型)进行,纯化后的PCR产物
送北京华大基因研究中心测序。
1.7.7 PCR产物序列同源性比较和聚类分析 将待
测菌株的16SrDNA序列与GenBank核苷酸数据库
中的序列进行同源性比较,采用DNAStar软件对所测
菌株的16SrDNA序列与GenBank中的同源性较高
的部分细菌的16SrDNA序列进行聚类分析,构建同
源性树。
2 结果与分析
2.1 细菌菌株的分离和菌株 GAUPb410、GAUP
b492、GAUPb416和GAUPd34的分布
从连作马铃薯根围土壤中共分离到了42个细菌
菌株,其中编号为GAUPb410、GAUPb492、GAUP
b416和GAUPd34的4个菌株的形态特征和生理生
化特性相一致,且与其他菌株不同,GAUPb410和
GAUPb492采自现蕾期连作2年土壤,GAUPb416
采自现蕾期连作3年土壤,GAUPd34采自马铃薯收
获期重茬土壤。
2.2 菌株GAUPb410、GAUPb492、GAUPb416和
GAUPd34的致病性测定
经过致病性测定,所分离到的4个菌株在24h后
均能引起马铃薯薯片的腐烂,对照不引起腐烂。图1
是菌株GAUPb410接种大西洋马铃薯薯片后引起的
腐烂症状。在左侧2个接种槽中接种了菌苔,在右侧
2个接种槽中接种了灭菌的蒸馏水,对中间的一个接
种槽不接种。菌株GAUPb410接种大西洋薯片后,
引起的腐烂症状明显,说明其在人工接种条件下的致
病性强。
2.3 菌株GAUPb410、GAUPb492、GAUPb416和
GAUPd34的主要生理生化特性
这4个菌株的主要生理生化特性一致。在肉汁胨
琼脂平板上培养48h后,菌落呈乳酪白色,圆形,大多
642 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.4
数直径为0.3~0.6mm,中央突起。革兰氏染色阴性。菌体短杆状,鞭毛周生,多数为3~6根。能发酵葡萄糖、
阿拉伯糖、乳糖并且产酸;柠檬酸盐利用反应均为阴性;过氧化氢为阳性;能在37℃下生长(表1)。图2为菌株
GAUPb410利用阿拉伯糖产酸的情况,可以看出,试管内培养基用水琼脂培养基(WA)封口或不封口,24h后培
养基的颜色都有变化(图2B和D),说明产酸明显;不接菌的CK颜色没有变化,不产酸(图2A和C)。
表1 菌株犌犃犝犘犫410、犌犃犝犘犫492、犌犃犝犘犫416和犌犃犝犘犱34的主要生理生化特性
犜犪犫犾犲1 犜犺犲犽犲狔狆犺狔狊犻狅犾狅犵犻犮犪犾犪狀犱犫犻狅犮犺犲犿犻犮犪犾犮犺犪狉犪犮狋犲狉狅犳狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫410,
犌犃犝犘犫492,犌犃犝犘犫416犪狀犱犌犃犝犘犱34
生理生化特性
Physiologicalandbiochemicalcharacter
菌株GAUPb410
StrainGAUPb410
菌株GAUPb492
StrainGAUPb492
菌株GAUPb416
StrainGAUPb416
菌株GAUPd34
StrainGAUPd34
革兰氏反应Gramreaction - - - -
氧化酶Oxidase - - - -
过氧化氢酶Catalase + + + +
葡萄糖发酵试验Glucosefermentationtest + + + +
从下列物质产酸Acidproducedfrom:
阿拉伯糖Arabitol + + + +
乳糖Lactose + + + +
山梨糖醇Sorbitol + + + +
棉籽糖Raffinose + + + +
柠檬酸盐利用 Useofcitrate - - - -
果胶酸盐降解Degradationofpectolyticenzymes + + + +
马铃薯软腐Potatorot + + + +
产生吲哚Indoleproduction + + + +
37℃生长Growthat37℃ + + + +
对红霉素敏感性Sensitivitytoerythromycin + + + +
 注:“+”表示试验反应为阳性;“-”表示试验反应为阴性。
 Note:“+”meansthereactionwaspositive,and“-”negative.
2.4 菌株的GAUPb410和GAUPb492的16SrDNA
图3 菌株犌犃犝犘犫410和犌犃犝犘犫492的
犇犖犃电泳图片
犉犻犵.3 犜犺犲犲犾犲犮狋狉狅狆犺狅狉犲狊犻狊狆犺狅狋狅犵狉犪狆犺狅犳犇犖犃狅犳
狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫410犪狀犱犌犃犝犘犫492
序列分析
本研究采用天根生化科技(北京)有限公司的细菌
基因组DNA提取试剂盒(离心柱型)进行DNA的提
取,所提取的DNA浓度适中,纯度高(图3)。
PCR扩增后,经过电泳,菌株 GAUPb410 和
GAUPb492都得到了1200~2000bp的条带(图
4)。对所得条带切胶回收纯化后测序分析,GAUP
b410得到了大小为 1298bp 的碱基序列,菌株
GAUPb492得到了1305bp的碱基序列。
将所得序列在 GenBank 上比对,菌株 GAUP
b410与GenBank上登记的18个分离自中国大白菜
(犅犲犪狊狊犻犮犪狆犲犽犻狀犲狀狊犻狊)上的犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪
狉狅狋狅狏狅狉犪(=犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪)菌株如
742第20卷第4期 草业学报2011年
犘犮犮(FJ527454),犘犮犮(FJ527466),犘犮犮(FJ527458),犘犮犮(FJ527457),犘犮犮(FJ527456),犘犮犮(FJ527463),犘犮犮
(FJ527468),犘犮犮(FJ527485)等的亲缘关系最近,同源性达99%。利用DNAStar软件绘制测序菌株的系统发育
树状图,结果表明,菌株GAUPb410亦与这18个犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪菌株位于系统发育树的同一
分支,聚为一类(图5)。
图4 引物8犳和1492狉扩增菌株犌犃犝犘犫410和犌犃犝犘犫492后的犘犆犚产物片段大小
犉犻犵.4 犅犪狀犱狊狅犳犘犆犚狆狉狅犱狌犮狋狊狆狉狅犱狌犮犲犱犫狔狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫410犪狀犱犌犃犝犘犫492犪狋狆狉犻犿犲狉狊狊犲狋8犳犪狀犱1492狉
图5 菌株犌犃犝犘犫410的遗传聚类分析图谱
犉犻犵.5 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮狋狉犲犲狅犳狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫410
 犘犮犮,即犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪,是犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪的同种异名犘犮犮isabbreviationof犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪,
andthesynonymof犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪.下同Thesamebelow
842 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.4
  菌株 GAUPb492与 GenBank上登记的16个分离自中国大白菜上的犘.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪
(=犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪)菌株如犘犮犮(FJ527455),犘犮犮(FJ527464),犘犮犮(FJ527454),犘犮犮(FJ527456),
犘犮犮(FJ527457),犘犮犮(FJ527458),犘犮犮(FJ527461),犘犮犮(FJ527466),犘犮犮(FJ527469)等的亲缘关系最近,同源性
达99%。从利用DNAStar软件绘制的系统发育树状图上可以看出,菌株GAUPb492亦与这16个犘.犮犪狉狅狋狅
狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪菌株位于系统发育树的同一分支,聚为一类(图6)。
图6 菌株犌犃犝犘犫492的遗传聚类分析图谱
犉犻犵.6 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮狋狉犲犲狅犳狊狋狉犪犻狀犌犃犝犘犫492
2.5 鉴定结果
结合4个菌株的形态特征、主要生理生化特性和2个代表菌株的16SrDNA分子鉴定结果,将菌株GAUP
b410、GAUPb492、GAUPb416和GAUPd34鉴定为犈狉狑犻狀犻犪犮犪狉狅狋狅狏狅狉狌犿subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉狌犿(=犘犲犮狋狅犫犪犮狋犲
狉犻狌犿犮犪狉狅狋狅狏狅狉狌犿subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉狌犿)。
3 讨论
本研究从连作2年的马铃薯现蕾期根围土壤中分离到了菌株GAUPb410和GAUPb492,从连作3年的现
蕾期根围土壤中分离到了菌株GAUPb416,从重茬田的收获期分离到了菌株GAUPd34。通过主要生理生化特
性分析和16SrDNA序列分析,对分离到的4个菌株进行了鉴定,确定为4个胡萝卜软腐欧文氏菌胡萝卜亚种
(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪,Ecc)新菌株。
细菌性软腐病是一种世界范围内的重要植物病害,其中胡萝卜软腐欧文氏菌(犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪)是主要病
原[9],犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪是机遇性植物病原菌,能够以腐生的形式存活于耕作土壤[911]和非耕作地
土壤[18,19],也能在植物残体中存活并越冬[2022]。Togashi等[21]报道,在土壤中越冬的病组织上犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪
subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪通常在下一年能够从植物病组织上或者从植物的根围土壤中重新分离到。在条件适合的情况
942第20卷第4期 草业学报2011年
下,这些在土壤中越冬后的软腐细菌会引起寄主严重发病[911]。但是,关于重新分离到的菌株其致病力有无变化
等问题未见报道。本研究中分离到的4株胡萝卜软腐欧文氏菌胡萝卜亚种菌株越冬后致病力有无变化,越冬后
在马铃薯的什么生长阶段开始侵染,以及马铃薯品种对它们的抗病性反应等问题,有待于进一步研究。
土壤中的植物致病细菌群体可以因寄主的缺乏、与其他细菌的竞争以及细胞的溶解而减少[21],这些因素也
可能引起土壤中软腐细菌的群体数量下降[23,24]。另外,土壤中植物或杂草的残体或者根对在土壤中越冬的植物
致病细菌的越冬和生存也起着很重要的作用,因为这些因素的存在使得植物致病细菌在土壤中的生存更加长
久[9,25,26]。近年来,随着甘肃省马铃薯产业的逐渐兴盛,尽管马铃薯的产量一直在增加,可还是满足不了各行各
业对马铃薯高产优质的需求。由于土地资源有限,人们自然想到了连作,而且连作马铃薯的面积越来越大。然
而,随着连作年限越长,残留在土壤中的马铃薯残体会越多,无疑将导致软腐细菌在土壤中的积累,这就引发了连
作障碍。不仅对马铃薯的生产不利,而且也不利于犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪其他寄主作物的生产。这个
问题不得不引起人们的重视。
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asinoculumforsoftrotofChinesecabbage(犅狉犪狊狊犻犮犪犮犪犿狆犲狊狋狉犻狊,PekinensisGroup)[J].JournalofGeneralPlantPathology,
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犐狊狅犾犪狋犻狅狀犪狀犱犻犱犲狀狋犻犳犻犮犪狋犻狅狀狅犳犳狅狌狉狀犲狑犈狉狑犻狀犻犪犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪狊狌犫狊狆.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪狊狋狉犪犻狀狊
ZHAOLing1,2,3,4,CHAIZhaoxiang1,LIJinhua1,2,3,4,WANGDi2
(1.ColegeofGrasslandSciences,GansuAgriculturalUniversity,Lanzhou730070,China;2.GansuKey
LabofCropImprovementandGermplasmEnhancement,Lanzhou730070,China;3.KeyLaboratory
ofGrasslandEcosystem,MinistryofEducation,Lanzhou730070,China;4.SinoU.S.
CentersforGrazinglandEcosystemSustainability,Lanzhou730070,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:Rhizospheresoilsofpotato(犛狅犾犪狀狌犿狋狌犫犲狉狅狊狌犿)weresampledviaachessboardpatternfromfields
ofpotatogrownforoneyear,continuouslyfor2years,3yearsand4yearsat4growingstages(beforeplant
ing,squaringstage,maturitystageandharveststage).ThesoilswereisolatedonCVPmediumviathedilution
methodforsoftrot犈狉狑犻狀犻犪and42strainswereobtained.Duringobservationsofmorphologyandtestsoftheir
physiologicalandbiochemicalcharacteristics,itwasfoundthat4ofthe42strainssharedthesamecharacteris
ticsbutdifferedfromtheotherstrains.The4strainswereGAUPb410,GAUPb492,GAUPb416and
GAUPd34.Thepathogenicitytestsindicatedthatthese4strainswereartificialypathogenetictocutpotato
pieces.GAUPb410andGAUPb492weretakenatrandomforanalysisof16SrDNAsequence,whichshowed
99%sequenceidentitywith18犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪strainsfromChinesecabbageinChinaafter
aligningdatainGenBank.MicrosoftDNAStarwasusedtodrawthephylogenetictreeofstrainGAUPb410and
GAUPb492.ThetreeshowedthatstrainGAUPb410wasinthesameclusterasthe18Chinesestrains,while
strainGAUPb492wasinthesameclusterasthe16of18Chinesestrains.Therefore,basedonthephysiologi
calandbiochemicalcharacteristicsofthe4strainsandtheresultof16SrDNAsequenceanalysisofthe2
strains,the4strainswereidentifiedasthe犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪,whichwere4new犈.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪
subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪strains.
犓犲狔狑狅狉犱狊:potato;continuouscropping;rhizospheresoil;犈狉狑犻狀犻犪犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪subsp.犮犪狉狅狋狅狏狅狉犪;16SrDNA
152第20卷第4期 草业学报2011年