全 文 ：菊科橐吾属植物的 ＤＮＡ条形码研究∗
何维颖１ꎬ２ꎬ３ꎬ 潘跃芝１ꎬ２∗∗
(１ 中国科学院昆明植物研究所资源植物与生物技术重点实验室ꎬ 昆明 ６５０２０１ꎻ ２ 云南省野生资源
植物研发重点实验室ꎬ 昆明 ６５０２０１ꎻ ３ 中国科学院大学ꎬ 北京 １０００４９)
摘要: ＤＮＡ条形码是一项利用短的、 标准的 ＤＮＡ片段对物种进行快速、 有效识别和鉴定的新技术ꎮ 菊科
橐吾属约 １４０种ꎬ 是典型的高山植物ꎬ 种间杂交频繁ꎬ 形态变异复杂ꎬ 从形态学方面鉴定近缘种较为困
难ꎮ 本研究选取 ４个 ＤＮＡ核心条形码片段 (ＩＴＳꎬ ｍａｔＫꎬ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ和 ｒｂｃＬ)ꎬ 对橐吾属 ３５种 １４４个个体进
行条形码研究ꎮ 研究结果显示叶绿体基因 ｍａｔＫꎬ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ和 ｒｂｃＬ在种内和种间变异都很小ꎬ 对橐吾属的物
种鉴定率极低ꎻ ＩＴＳ在种间变异率相对较大ꎬ 物种鉴定率为 ６０％ꎮ 而各片段联合后的物种鉴定率并未提高ꎮ
关键词: ＤＮＡ条形码ꎻ 橐吾属ꎻ 物种鉴别ꎻ ＩＴＳꎻ ｍａｔＫꎻ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨꎻ ｒｂｃＬ
中图分类号: Ｑ ９４９ꎬ Ｑ ７８１ 文献标志码: Ａ 文章编号: ２０９５－０８４５(２０１５)０６－６９３－１１
Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)∗
ＨＥ Ｗｅｉ￣ｙｉｎｇ１ꎬ２ꎬ３ꎬ ＰＡＮ Ｙｕｅ￣ｚｈｉ１ꎬ２∗∗
(１ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｆｏｒ Ｅｃｏｎｏｍｉｃ Ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ
Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ ２ Ｙｕｎｎａｎ Ｋｅｙ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ ｆｏｒ Ｗｉｌｄ Ｐｌａｎｔ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ Ｋｕｎｍｉｎｇ ６５０２０１ꎬ Ｃｈｉｎａꎻ
３ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ Ｂｅｉｊｉｎｇ １０００４９ꎬ Ｃｈｉｎａ)
Ａｂｓｔｒａｃｔ: ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｉｓ ａ ｎｅｗ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｗｈｉｃｈ ｃａｎ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒａｐｉｄｌｙ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｓｈｏｒｔ ａｎｄ ｓｔａｎｄａｒｄｉｚｅｄ
ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ. Ｌｉｇｕｌａｒｉａꎬ ａ ｇｅｎｕｓ ｏｆ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ ｗｉｔｈ ａｂｏｕｔ １４０ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｅｘｈｉｂｉｔｓ ｈｉｇｈ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ａｎｄ ｅｃｏｌｏｇｉｃａｌ
ｄｉｖｅｒｓｉｔｙꎬ ｗｈｉｃｈ ｍａｋｅｓ ｔｈｅ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｅｌｉｍｉｔａｔｉｏｎ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ ｔｈｅ ｃａｓｅｓ ｏｆ ｃｌｏｓｅｌｙ ｒｅｌａｔｅｄ
ｔａｘａ. Ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙꎬ ｗｅ ｔｅｓｔｅｄ ｆｏｕｒ ＤＮＡ ｃｏｒｅ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｒｅｇｉｏｎｓ ( ＩＴＳꎬ ｍａｔＫꎬ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ａｎｄ ｒｂｃＬ) ｉｎ １４４ ｓａｍｐｌｅｓ
ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｉｎｇ ３５ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ. Ｔｈｅ ｒｅｓｕｌｔｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｒｅｇｉｏｎｓ (ｍａｔＫꎬ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ａｎｄ ｒｂｃＬ)
ｈａｖｅ ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ ｌｏｗ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｄｕｅ ｔｏ ｌｏｗ ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｆｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ. Ｃｏｎｖｅｒｓｅｌｙꎬ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｓｈｏｗｅｄ
ｈｉｇｈｅｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｒａｔｅ (６０％) ａｎｄ ｃｏｕｌｄ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｈｉｃｈ ａｒｅ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔ ｔｏ ｉｄｅｎｔｉｆｙ. Ｔｈｅ ｃｏｍ￣
ｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｆｏｕｒ ｇｅｎｅ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ ｄｉｄ ｎｏｔ ｉｍｐｒｏｖｅ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ.
Ｋｅｙ ｗｏｒｄｓ: ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇꎻ Ｌｉｇｕｌａｒｉａꎻ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎꎻ ＩＴＳꎻ ｍａｔＫꎻ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨꎻ ｒｂｃＬ
ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｉｓ ａ ｎｅｗ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｗｈｉｃｈ ｃａｎ
ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒａｐｉｄｌｙ ｂａｓｅｄ ｏｎ ａ ｓｈｏｒｔ ａｎｄ ｓｔａｎｄ￣
ａｒｄｉｚｅｄ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅ (Ｈｅｂｅｒｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３ꎻ Ｋｒｅｓｓ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈꎬ ２０１１ꎻ Ｓｃｈｏｃｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０１２). Ｔｈｉｓ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｗｉｄｅｌｙ ｕｓｅｄ ａｓ ａ
ｔｏｏｌ ｆｏｒ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｓｃｏｖｅｒｙ ｏｆ ｃｒｙｐｔｉｃ
ｓｐｅｃｉｅｓ ( Ｚｅｍｌａｋ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１ꎻ
Ｈｕｅｍｅｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１４) ｓｉｎｃｅ ｉｔ ｗａｓ ｐｒｏｐｏｓｅｄ (Ｈｅｂｅｒｔ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３). Ａｔ ｐｒｅｓｅｎｔꎬ ｔｈｅ ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ ｇｅｎｅ
ｃｙｔｏｃｈｒｏｍｅ ｃ ｏｘｉｄａｓｅ Ｉ (ＣＯＩ) ｈａｓ ｂｅｅｎ ｐｒｏｖｅｎ ｔｏ ｂｅ
ａ ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ａｎｄ ｅｆｆｅｃｔｉｖｅ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｎｇ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ ａｎｉｍａｌｓꎬ ｓｕｃｈ ａｓ ｂｉｒｄｓ ( Ｈｅｂｅｒｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２００３ꎬ ２００４)ꎬ ｆｉｓｈｅｓ (Ｗａｒｄ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５)ꎬ ｉｎｓｅｃｔｓ
(Ｌｉｎａｒｅｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｇｅｎｅ ＣＯＩ ｃａｎ ｎｏｔ
植 物 分 类 与 资 源 学 报 ２０１５ꎬ ３７ (６): ６９３~７０３
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓ ＤＯＩ: １０.７６７７ / ｙｎｚｗｙｊ２０１５１５０８２
∗
∗∗
Ｆｕｎｄｉｎｇ: Ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｎａｔｕｒａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｆｕｎｄａｔｉｏｎ ｏｆ Ｃｈｉｎａ (３１４７０３３６)ꎬ Ｌａｒｇｅ￣Ｓｃａｌｅ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ Ｆａｃｉｌｉｔｉｅｓ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｐｒｏｊｅｃｔ ｏｆ Ｃｈｉｎｅｓｅ
Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ (２００９￣ＬＳＦＧ１３０ＷＳ￣０１)
Ａｕｔｈｏｒ ｆｏｒ ｃｏｒｒｅｓｐｏｎｄｅｎｃｅꎻ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｐａｎｙｕｅｚｈｉ＠ｍａｉｌ ｋｉｂ ａｃ ｃｎ
Ｒｅｃｅｉｖｅｄ ｄａｔｅ: ２０１５－０３－２７ꎬ Ａｃｃｅｐｔｅｄ ｄａｔｅ: ２０１５－０９－２１
作者简介: 何维颖 (１９８８－) 男ꎬ 硕士研究生ꎬ 主要从事橐吾属的分子生物学研究ꎮ Ｅ￣ｍａｉｌ: ｈｅｗｅｉｙｉｎｇ＠ｍａｉｌ ｋｉｂ ａｃ ｃｎ
ｂｅ ａｐｐｌｉｅｄ ｉｎ ｍｏｓｔ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｔａｘａ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｌｏｗ
ｓｕｂｓｔｉｔｕｔｉｏｎ ｒａｔｅ (Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５). Ｎｏ ＤＮＡ ｒｅ￣
ｇｉｏｎ ｕｎｉｖｅｒｓａｌｌｙ ｓｕｉｔａｂｌｅ ａｎｄ ｍｅｅｔｉｎｇ ａｌｌ ｏｆ ｔｈｅ ｎｅｃ￣
ｅｓｓａｒｙ ｃｒｉｔｅｒｉａ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｆｏｕｎｄ ｆｏｒ ａｌｌ ｐｌａｎｔｓ (Ｆａｚｅｋａｓ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１ꎻ Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０１１). Ｓｅａｒｃｈｉｎｇ ｆｏｒ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ ｉｎ ｐｌａｎｔｓ ｐｒｏｖｅｄ
ｔｏ ｂｅ ａ ｍｏｒｅ ｃｈａｌｌｅｎｇｉｎｇ ｔａｓｋ (Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ
Ｃｈａｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７ꎻ Ｋｒｅｓｓ ａｎｄ Ｅｒｉｃｋｓｏｎꎬ ２００７ꎻ Ｌａ￣
ｈａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８). Ｂａｓｅｄ ｏｎ ｔｈｅ ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｒｅｓｅａｒｃｈꎬ
ｒｂｃＬ ＋ ｍａｔＫ ｈａｓ ｂｅｅｎ ｓｕｇｇｅｓｔｅｄ ｔｏ ｂｅ ｔｈｅ ｃｏｒｅ ｐｌａｎｔ
ｂａｒｃｏｄｅ ｂｙ ｔｈｅ Ｃｏｎｓｏｒｔｉｕｍ ｆｏｒ ｔｈｅ Ｂａｒｃｏｄｅ ｏｆ ｌｉｆｅ
(ＣＢＯＬ) Ｐｌａｎｔ Ｗｏｒｋｉｎｇ Ｇｒｏｕｐ (ＰＷＧ) (ＣＢＯＬ Ｐｌａｎｔ
Ｗｏｒｋｉｎｇ Ｇｒｏｕｐꎬ ２００９). Ｔｈｅ Ｃｈｉｎａ ｐｌａｎｔ ｗｏｒｋ ｇｒｏｕｐ
ｆｏｒ ｔｈｅ Ｂａｒｃｏｄｅ ｏｆ ｌｉｆｅ ｐｒｏｐｏｓｅｄ ｔｈａｔ ＩＴＳ / ＩＴＳ２ ｓｈｏｕｌｄ
ｂｅ ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｃｏｒｅ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ ｓｅｅｄ ｐｌａｎｔｓ
ａｃｃｏｒｄｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｓｔｕｄｙ ｉｎ １ ７５７ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ７５ ｆａｍｉｌｉｅｓ
(Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). Ａｎｄ Ｃｈｅｎ ｅｔ ａｌ. ( ２０１０) ａｌｓｏ
ｆｏｕｎｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ ＩＴＳ２ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｗｅｌｌ ｉｎ ｔｈｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ ｍｅｄｉｃｉｎａｌ ｐｌａｎｔｓ. Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄ ｉｎ￣
ｔｅｒｇｅｎｉｃ ｓｐａｃｅｒ ｒｅｇｉｏｎ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｗａｓ ｒｅｃｏｍｍｅｎｄｅｄ
ａｓ ａ ｃａｎｄｉｄａｔｅ ｂａｒｃｏｄｅ (Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１).
Ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｃｏｒｅ ｂａｒｃｏｄｅｓ ( ｒｂｃＬꎬ ｍａｔＫꎬ ｐｓｂＡ￣
ｔｒｎＨ ａｎｄ ＩＴＳ) ｈａｖｅ ｂｅｅｎ ｐｒｏｖｅｄ ｔｏ ｈａｖｅ ｈｉｇｈｌｙ ｕｎｉ￣
ｖｅｒｓａｌ ｐｒｉｍｅｒｓ ａｎｄ ｈｉｇｈ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｉｎ
ｓｏｍｅ ｐｌａｎｔ ｇｒｏｕｐｓ (Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００９ꎻ Ｋｒｅｓｓ
ａｎｄ Ｅｒｉｃｋｓｏｎꎬ ２００７ꎻ Ｆａｚｅｋａｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｌａｈａｙｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｎｅｗｍａｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６ꎻ ２００８ꎻ Ｈｏｌｌ￣
ｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｊｉａｏ ａｎｄ Ｓｈｕｉꎻ ２０１３ꎻ Ｌｉｕ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１３)ꎬ ｂｕｔ ｔｈｅｒｅ ａｒｅ ｓｔｉｌｌ ｄｅｂａｔｅ ａｂｏｕｔ ｔｈｅｓｅ
ＤＮＡ ｒｅｇｉｏｎｓ ａｓ ｂａｒｃｏｄｅｓ. Ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｓｉｎｇｌｅ￣ｍａｒｋｅｒ
ｂａｒｃｏｄｅｓ ｆｏｒ ｐｌａｎｔｓꎬ ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ＩＴＳꎬ ａｓ ａ ｓｔａｎｄａｒｄ
ｂａｒｃｏｄｅꎬ ｉｓ ｏｆｔｅｎ ｑｕｅｓｔｉｏｎｅｄ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｐｏｔｅｎｔｉａｌ
ｆｕｎｇａｌ ｃｏｎｔａｍｉｎａｔｉｏｎ ａｎｄ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｃｅ ｏｆ ｐａｒａｌｏｇｏｕｓ
ｃｏｐｉｅｓ (Ｈｏｌｌｉｎｓｗｏｒｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ
ｒｅｓｅａｒｃｈ ｗｏｒｋ ｉｎｃｌｕｄｉｎｇ ６ ２８６ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｒｅｐｒｅｓｅｎ￣
ｔｉｎｇ １ ７５７ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ １４１ ｇｅｎｅｒａ ｏｆ ７５ ｆａｍｉｌｉｅｓ ｒｅ￣
ｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｒｅｓｏｌｕ￣
ｔｉｏｎ ｉｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｅｅｄ ｐｌａｎｔｓ ( Ｌｉ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１１). Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｒｂｃＬ ｓｈｏｗｅｄ ｇｏｏｄ ｕｎｉｖｅｒｓａｌｉ￣
ｔｙꎬ ｉｔｓ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｍａｉｎｌｙ ｅｘｉｓｔｅｄ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｌｅｖ￣
ｅｌ ａｎｄ ｅｘｈｉｂｉｔｅｄ ｌｏｗ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｂｉｌｉｔｙ
(Ｇｏｎｚａｌｅｚ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９). ＭａｔＫ ｓｈｏｗｅｄ ｈｉｇｈ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｂｉｌｉｔｙ ｉｎ ｔｈｅ ｓｔｕｄｙ ｏｆ Ｌａｈａｙｅ ｅｔ ａｌ.
(２００８) ａｎｄ Ｄｅ Ｖｅｒｅ ｅｔ ａｌ. (２０１２) ｗｉｔｈ ｌｏｗ ｐｒｉｍｅｒ
ｇｅｎｅｒａｌｉｔｙꎬ ｂｕｔ ｉｔ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ ｌｏｗ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉ￣
ｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｉｎ Ｂｅｒｂｅｒｉｓ ａｎｄ Ｌｉｇｕｓｔｒｕｍ (Ｒｏｙ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１０ꎻ Ｇｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１). ＤＮＡ ｓｅｇｍｅｎｔ ｐｓｂＡ￣
ｔｒｎＨ ｈａｄ ｈｉｇｈ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ ａｎｇｉｏｓｐｅｒｍｓ
(Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５)ꎬ ａｎｄ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｐｅｒｆｅｃｔ ａｓ ａ
ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ (Ｃｈａｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７ꎻ Ｒｏｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０).
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｉｔｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｂｉｌｉｔｙ ｗａｓ ｐｏｏｒ ｉｎ ｔｈｅ
ｍｅｄｉｃｉｎａｌ ｐｌａｎｔｓ Ｐａｒｉｓ (Ｚｈｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０)ꎬ ａｎｄ ｔｈｅ
ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ ｗａｓ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔ ｂｅｃａｕｓｅ ｏｆ ｔｈｅ ｓｅ￣
ｑｕｅｎｃｅ ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ｖａｒｉａｔｉｏｎ (Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｚｈｕ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０).
Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ.ꎬ ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ ｔｏ ｔｈｅ ｆａｍｉｌｙ Ａｓｔｅｒ￣
ａｃｅａｅꎬ ｔｒｉｂｅ Ｓｅｎｅｃｉｏｎｅａｅꎬ ｓｕｂｔｒｉｂｅ Ｔｕｓｓｉｌａｇｉｎｉｎａｅꎬ
ｉｓ ａ ｈｉｇｈｌｙ ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｅｄ ｇｅｎｕｓ. Ｉｔ ｉｎｃｌｕｄｅｓ ｓｉｘ ｓｅｃｔｉｏｎｓ
ａｎｄ ａｂｏｕｔ １４０ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｌｉｕꎬ ２０１１)ꎬ ａｎｄ ｍｏｓｔ ｏｆ ｗｈｉｃｈ
ａｒｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ ｉｎ Ａｓｉａ ｗｉｔｈ ｏｎｌｙ ｔｗｏ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎ Ｅｕ￣
ｒｏｐｅ (Ｌｉｕꎬ １９８９ꎻ Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４). Ｌｉｕ (１９８５ꎬ
１９８９) ｓｔｕｄｉｅｄ ｔｈｅ Ｃｈｉｎｅｓｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｃｏｍ￣
ｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅｌｙ ａｎｄ ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃａｌｌｙꎬ ａｎｄ １１２ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｗｅｒｅ ｄｅｓｃｒｉｂｅｄꎬ ｏｆ ｗｈｉｃｈ ６７ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｅｄ
ｉｎ Ｈｅｎｇｄｕａｎ ｍｏｕｎｔａｉｎｏｕｓ ａｒｅａ ｗｉｔｈ ６１ ｓｐｅｃｉｅｓ ｅｎ￣
ｄｅｍｉｃ ｔｏ ｔｈｉｓ ａｒｅａ. Ｔｈｅ Ｈｅｎｇｄｕａｎ ｍｏｕｎｔａｉｎｓ ｗｅｒｅ
ｃｏｎｓｉｄｅｒｅｄ ｔｏ ｂｅ ｔｈｅ ｃｅｎｔｅｒ ｏｆ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ
ｆｏｒ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ (Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４). Ｔｈｅ ｐｌａｎｔｓ ｏｆ ｔｈｉｓ
ｇｅｎｕｓ ｅｘｈｉｂｉｔ ｒｅｍａｒｋａｂｌｙ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｎ
ｌｅａｆ ｓｈａｐｅ ａｎｄ ｔｅｘｔｕｒｅꎬ ｉｎｄｕｍｅｎｔａ ａｎｄ ｉｎｆｌｏｒｅｓｃｅｎｃｅ
ａｍｏｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ｏｎｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｍａｙ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔ
ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｉｎ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ. Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ
Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｓｉｂｉｒｉｃａꎬ ｔｈｅ ｔｙｐｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｔｈｉｓ ｇｅｎｕｓꎬ
ｈａｓ ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｅｄ ｌｅａｆ ｂｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｏｖａｔｅ￣ｃｏｒｄａｔｅꎬ ｔｒｉａｎ￣
ｇｕｌａｒ￣ｃｏｒｄａｔｅꎬ ｒｅｎｉｆｏｒｍ￣ｃｏｒｄａｔｅꎬ ｏｒ ｂｒｏａｄｌｙ ｃｏｒｄａｔｅ
ｓｈａｐｅ (Ｌｉｕꎬ １９８９). Ｔｈｉｓ ｍａｋｅｓ ｉｔ ｄｉｆｆｉｃｕｌｔ ｔｏ ｉｄｅｎ￣
ｔｉｆｉｃａｔｅ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｉｔｈ ｔｒａｄｉｔｉｏｎａｌ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ￣
ｂａｓｅｄ ｍｅｔｈｏｄｓꎬ ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｉｎ ｔｈｅ ｖｅｇｅｔａｔｉｖｅ ｐｅｒｉｏｄ ｏｆ
ｔｈｉｓ ｔａｘａ. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ｃａｎ ｏｖｅｒｃｏｍｅ ｔｈｉｓ
ｉｓｓｕｅꎬ ａｎｄ ｉｔ ｏｎｌｙ ｎｅｅｄｓ ａ ｓｍａｌｌ ｐａｒｔ ｏｆ ｔｈｅ ｏｒｇａｎｉｓｍ
ｔｉｓｓｕｅ (ｅ ｇ. ａ ｐｉｅｃｅ ｏｆ ｌｅａｆ ｂｌａｄｅ) ｔｏ ｒａｐｉｄｌｙ ｉｄｅｎｔｉｆｙ
ｓｐｅｃｉｅｓ. Ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙꎬ ｗｅ ｔｅｓｔｅｄ ｔｈｅ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｏｒｙ
ｐｏｗｅｒ ｏｆ ｆｏｕｒ ＤＮＡ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ (ＩＴＳꎬ ｍａｔＫꎬ ｒｂｃＬ ａｎｄ
ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ) ａｎｄ ｅｖａｌｕａｔｅｄ ｔｈｅ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｐｅｒ￣
４９６ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
ｆｏｒｍａｎｃｅ ｉｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｆｏｒ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕ￣
ｌａｒｉａ.
１ Ｍａｔｅｒｉａｌｓ ａｎｄ ｍｅｔｈｏｄｓ
１ １ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｍａｔｅｒｉａｌｓ
Ａ ｔｏｔａｌ ｏｆ １４４ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ ３５ ｓｐｅｃｉｅｓ ｆｒｏｍ
Ｙｕｎｎａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎꎬ Ｑｉｎｇｈａｉ ａｎｄ Ｇａｎｓｕ ｐｒｏｖｉｎｃｅ ｗｅｒｅ
ｃｏｌｌｅｃｔｅｄꎬ ａｎｄ ｅａｃｈ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｎｃｌｕｄｅｄ ａｔ ｌｅａｓｔ ｔｗｏ ｉｎ￣
ｄｉｖｉｄｕａｌｓ ( Ｔａｂｌｅ １). Ｔｈｅ ｖｏｕｃｈｅｒ ｓｐｅｃｉｍｅｎｓ ｗｅｒｅ
ｄｅｐｏｓｉｔｅｄ ｉｎ Ｈｅｒｂａｒｉｕｍ ｏｆ Ｋｕｎｍｉｎｇ Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ ｏｆ Ｂｏｔａ￣
ｎｙꎬ ＣＡＳ (ＫＵＮ). Ｓｐｅｃｉｍｅｎ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｗａｓ ｂａｓｅｄ
ｏｎ ｔｈｅ ｃｌａｓｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｏｆ Ｌｉｕ (１９８９).
１ ２ Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ ｍｅｔｈｏｄｓ
Ｔｏｔａｌ ＤＮＡ ｗａｓ ｅｘｔｒａｃｔｅｄ ｆｒｏｍ ｓｉｌｉｃａ￣ｇａｌ ｄｒｉｅｄ
ｌｅａｆ ｔｉｓｓｕｅｓ ｕｓｉｎｇ ｔｈｅ ＣＴＡＢ ｍｅｔｈｏｄ ( Ｄｏｙｌｅ ａｎｄ
Ｄｏｙｌｅꎬ １９８７). Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｓ ａｂｏｕｔ ｔｈｅ ｐｒｉｍｅｒｓ ｕｓｅｄ
ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙ ａｒｅ ｌｉｓｔｅｄ ｉｎ Ｔａｂｌｅ ２. Ｔｈｅ ＰＣＲ
ｐｒｏｆｉｌｅｓ ｆｏｒ ｔｈｒｅｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ＤＮＡ ｆｒａｇｍｅｎｔｓ (ｍａｔＫꎬ
ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ａｎｄ ｒｂｃＬ) ｉｎｃｌｕｄｅｄ ａｎ ｉｎｉｔｉａｌ ｄｅｎａｔｕｒ￣
ａｔｉｏｎ ｓｔｅｐ ａｔ ９４ ℃ ｆｏｒ ５ ｍｉｎꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ３０ ｃｙｃｌｅｓ
ｏｆ ３０ ｓ ａｔ ９４ ℃ꎬ ３０ ｓ ａｔ ５３ ℃ꎬ １ ｍｉｎ ａｔ ７２ ℃ ａｎｄ
ｆｉｎｉｓｈｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｓｔｅｐ ｏｆ ７ ｍｉｎ ａｔ ７２ ℃ .
Ｔｈｅ ＰＣＲ ｃｏｎｄｉｔｉｏｎｓ ｆｏｒ ＩＴＳ ｃｏｎｓｉｓｔｅｄ ｏｆ ａｎ ｉｎｉｔｉａｌ
ｄｅｎａｔｕｒａｔｉｏｎ ａｔ ５６ ℃ ｆｏｒ ５ ｍｉｎꎬ ｆｏｌｌｏｗｅｄ ｂｙ ３０ ｃｙ￣
ｃｌｅｓ ｏｆ ３０ ｓ ａｔ ９４ ℃ꎬ ３０ ｓ ａｔ ５３ ℃ꎬ １ ｍｉｎ ａｔ ７２ ℃
ａｎｄ ｆｉｎｉｓｈｅｄ ｗｉｔｈ ａｎ ｅｘｔｅｎｓｉｏｎ ｓｔｅｐ ｏｆ ７ ｍｉｎ ａｔ
７２ ℃ . Ｔｈｅ ＰＣＲ ｒｅａｃｔｉｏｎ ｓｙｓｔｅｍ ｗａｓ ｃａｒｒｉｅｄ ｏｕｔ ｉｎ ａ
ｔｏｔａｌ ｖｏｌｕｍｅ ｏｆ ２０ μＬ ｃｏｎｔａｉｎｅｄ １３ １ μＬ ｏｆ ｕｌｔｒａｐｕｒｅ
ｗａｔｅｒꎬ ２ ０ μＬ １０ × ＰＣＲ ｂｕｆｆｅｒꎬ １ ０ μＬ ＭｇＣｌ２ꎬ
１ ０ μＬ ｄＮＴＰꎬ １ ０ μＬ ＢＳＡꎬ ０ ３ μＬ Ｔａｑ ｐｏｌｙｍｅｒ￣
ａｓｅꎬ ０ ３ μＬ ｅａｃｈ ｐｒｉｍｅｒꎬ １ ５ μＬ ｔｅｍｐｌａｔｅ ＤＮＡ
(２０－６０ ｎｇ). Ｔｈｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ＰＣＲ ｐｒｏｄｕｃｔｓ ｗｅｒｅ ｒｕｎ
ｏｎ ａｎ ＡＢＩ ３７３０ ａｕｔｏｍａｔｅｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｒꎬ ｃｏｍｐｌｅｔｅｄ ｂｙ
ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｃｏｍｐａｎｙ.
Ｔａｂｌｅ １ Ｔｈｅ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｓａｍｐｌｅｓ
Ｓｐｅｃｉｅｓ ｎａｍｅ Ｓａｍｐｌｅ ＩＤ Ｌｏｃａｌｉｔｙ Ｌａｔｉｔｕｄｅ Ｌｏｎｇｉｔｕｄｅ Ａｔｉｔｕｄｅ / ｍ
Ｌ ｈｏｄｇｓｏｎｉｉ ＰＧ１００８０６ Ｍｉｙａｌｕｏꎬ Ｌｉ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°３８′１８″ Ｅ１０２°４９′１０″ —
Ｌ ｈｏｄｇｓｏｎｉｉ ＰＧ１００８６９ Ｇｕａｎｄｉꎬ Ｄａｎｇｃｈａｎｇ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３４°１５′１３″ Ｅ１０４°１１′２１″ ２２９３
Ｌ ｈｏｄｇｓｏｎｉｉ ＰＧ１００８７１ Ｗｅｎ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３３°０５′２１″ Ｅ１０４°４５′５１″ １４６２
Ｌ ｓｔｅｎｏｇｌｏｓｓａ ＰＧ０９０９７８ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３９′２８″ Ｅ９９°４８′２０″ ３０３９
Ｌ ｓｔｅｎｏｇｌｏｓｓａ ＰＧ１００９６１ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２５°４０′４８″ Ｅ１００°０５′４１″ ３７６０
Ｌ ｄｕｃｉｆｏｒｍｉｓ ＰＧ０９０９０５ Ｘｉａｏｚｈｏｎｇｄｉａｎꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３８′３２″ Ｅ９９°４７′４８″ ３６０７
Ｌ ｄｕｃｉｆｏｒｍｉｓ ＰＧ１１０８１０ Ｊｉａｊｉｎｓｈａｎꎬ Ｂａｏｘｉｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５１′２５″ Ｅ１０２°４１′２３″ ３９１０
Ｌ ｄｕｃｉｆｏｒｍｉｓ ＰＧ１１０８２０ Ｄａｍｂａꎬ Ｓｉｃｈａｕｎ Ｎ３０°３２′０６″ Ｅ１０１°３５′５５″ ３７５０
Ｌ ｄｕｃｉｆｏｒｍｉｓ ＰＧ１１０８７３ Ｔｉａｎｃｈｉꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — ３８９０
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ０９０９２４ Ｘｉａｏｘｕｅｓｈａｎꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°１８′５４″ Ｅ９９°４５′１２″ ３８７２
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ０９０９３４ Ｂｅａｌｏｃｋꎬ Ｄａｘｕｅｓｈａｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°３５′４６″ Ｅ９９°５０′０９″ ４１７３
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ１００８１６ Ｚｈｅｇｕｓｈａｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°５２′４０″ Ｅ１０２°４０′１４″ ３９８４
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ１００８２０ Ｌｉ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°１９′３１″ Ｅ１０２°２７′０９″ ３６９４
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ１００８２８ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°４２′３０″ Ｅ１０２°０８′５０″ ３７４８
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ１１０８１２ Ｂａｌａｎｇｓｈａｎꎬ Ｗｅｎｃｈｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５４′２７″ Ｅ１０２°５３′６０″ ４３００
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ１１０８２５ Ｇａｎｚｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°３６′５６″ Ｅ１００°１２′４８″ ３９３０
Ｌ ｎｅｌｕｍｂｉｆｏｌｉａ ＰＧ１１０８４３ Ｑｕｅｅｒｓｈａｎꎬ Ｂａｉｙｕ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°２４′５０″ Ｅ９９°５６′０２″ ４３３０
Ｌ ｐｕｒｄｏｍｉｉ ＰＧ１００８３３ Ｇｅｍｏｘｉａｎｇꎬ Ａｂａꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３３°０２′０３″ Ｅ１０１°３３′２９″ ３４２９
Ｌ ｐｕｒｄｏｍｉｉ ＰＧ１００８３８ Ｊｉｕｚｈｉꎬ Ｑｉｎｇｈａｉ Ｎ３３°２４′２５″ Ｅ１０１°２５′３９″ ３７０８
Ｌ ｐｕｒｄｏｍｉｉ ＰＧ１００８４３ Ｔａｎｇｋｅｘｉａｎｇꎬ Ａｂａꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°０２′５７″ Ｅ１０２°１７′１３″ ３５６２
Ｌ ｙｕｎｎａｎｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９８２ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３７′５５″ Ｅ９９°４３′２８″ ３８４５
Ｌ ｙｕｎｎａｎｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９６３ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２５°４０′４５″ Ｅ１００°０５′３６″ ３７８０
Ｌ ａｔｒｏｖｉｏｌａｃｅａ ＰＧ１００９０７ Ｙａｎｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２７°４１′１４″ Ｅ１０１°１３′２４″ ３２５０
Ｌ ａｔｒｏｖｉｏｌａｃｅａ ＰＧ１００９５１ Ｗｅｎｈａｉꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°５８′４４″ Ｅ１００°１０′２５″ ３１２０
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９１０ Ｈａｂａ Ｓｎｏｗ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°４０′０７″ Ｅ９９°４８′３２″ ３８８８
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９１５ Ｇｅｚａｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０２′５２″ Ｅ９９°４５′５６″ ３１６４
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９３６ Ｄｏｎｇｗａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°３６′５５″ Ｅ９９°４９′１９″ ３７４９
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９３７ Ｗｕｍｉｎｇｓｈａｎꎬ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°０７′２０″ Ｅ１００°００′５４″ ４１３０
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９５０ Ｌｉｔａｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°４７′５１″ Ｅ１００°０１′２２″ —
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９６２ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°０７′４３″ Ｅ１００°１０′５９″ ３８４８
Ｌ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ＰＧ０９０９７５ Ｂａｉｍａｘｕｅｓｈａｎꎬ Ｄｅｑｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°２４′０１″ Ｅ９８°５８′５８″ ４１４１
Ｌ ｌａｐａｔｈｉｆｏｌｉａ ＰＧ１００９２０ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０７′０１″ Ｅ１０１°０５′５７″ ３１３０
Ｌ ｌａｐａｔｈｉｆｏｌｉａ ＰＧ１００９２２ Ｗａｃｈａｎｇ Ｓｔｒｅｅｔꎬ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０６′１９″ Ｅ１００°４９′０５″ ２５８０
５９６６期 ＨＥ ａｎｄ ＰＡＮ: Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)
Ｔａｂｌｅ １ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ
Ｓｐｅｃｉｅｓ ｎａｍｅ Ｓａｍｐｌｅ ＩＤ Ｌｏｃａｌｉｔｙ Ｌａｔｉｔｕｄｅ Ｌｏｎｇｉｔｕｄｅ Ａｔｉｔｕｄｅ / ｍ
Ｌ ｌａｐａｔｈｉｆｏｌｉａ ＰＧ１００９４２ Ｓｕｂｅｒｂꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — —
Ｌ ｔｏｎｇｏｌｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９０６ Ｈａｂａ Ｓｎｏｗ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３８′５３″ Ｅ９９°４７′５３″ ３７１７
Ｌ ｔｏｎｇｏｌｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９４６ Ｃｈｉｔｕｘｉａｎｇꎬ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°４０′１８″ Ｅ１００°１４′２４″ ３４７４
Ｌ ｔｏｎｇｏｌｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９４９ Ｌｉｔａｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°４７′５１″ Ｅ１００°２１′２１″ ３８１５
Ｌ ｔｏｎｇｏｌｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９６５ Ｙａｄｉｎｇꎬ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°３０′４１″ Ｅ１００°２０′５１″ ３９８５
Ｌ ｖｅｌｌｅｒｅａ ＰＧ０９０９１１ Ｈａｂａ Ｓｎｏｗ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３９′２９″ Ｅ９９°４７′５６″ ３８０５
Ｌ ｖｅｌｌｅｒｅａ ＰＧ０９０９１４ Ｚａｇｅｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０７′４３″ Ｅ９９°４９′４７″ ３７１１
Ｌ ｖｅｌｌｅｒｅａ ＰＧ０９０９３２ Ｄａｘｕｅｓｈａｎꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°３４′１７″ Ｅ９９°４９′４９″ ４１３１
Ｌ ｓｉｂｉｒｉｃａ ＰＧ１００８１２ Ｚｈｅｇｕｓｈａｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°５３′１３″ Ｅ１０２°４０′０７″ ３９００
Ｌ ｓｉｂｉｒｉｃａ ＰＧ１００８５７ Ｓｏｎｇｆａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°５３′０４″ Ｅ１０３°２９′０３″ ３２３０
Ｌ ｓｉｂｉｒｉｃａ ＰＧ１１０８７６ Ｔｉａｎｃｈｉꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — ３８９０
Ｌ ｃｙａｔｈｉｃｅｐｓ ＰＧ０９０９０４ Ｘｉａｏｚｈｏｎｇｄｉａｎꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３８′３２″ Ｅ９９°４７′４８″ ３６０２
Ｌ ｃｙａｔｈｉｃｅｐｓ ＰＧ１１０８７２ Ｔｉａｎｃｈｉꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — ３８９０
Ｌ ｌａｍａｒｕｍ ＰＧ１００８２９ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°４３′３４″ Ｅ１０２°０６′３２″ ３９１１
Ｌ ｌａｍａｒｕｍ ＰＧ１００９４５ Ｘｕｅｓｏｎｇｃｕｎꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°０２′１９″ Ｅ１００°１２′０８″ ３１４０
Ｌ ｌａｍａｒｕｍ ＰＧ１００９６２ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２５°４０′６３″ Ｅ１００°０５′３４″ ３８００
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ０９０９１２ Ｈａｂａ Ｓｎｏｗ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３９′２９″ Ｅ９９°４７′５６″ ３８０２
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ０９０９２５ Ｘｉａｏｘｕｅｓｈａｎꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°１８′５３″ Ｅ９９°４５′０１″ ３８７１
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ０９０９３８ Ｗｕｍｉｎｇｓｈａｎꎬ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°０７′１４″ Ｅ１００°０１′２３″ ４２０２
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ０９０９５９ Ｈａｉｚｉｓｈａｎꎬ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°２０′１３″ Ｅ１００°０６′０１″ ４３５２
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ０９０９７２ Ｄａｓｈａｎꎬ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°０７′５３″ Ｅ９９°３６′４８″ ３７６２
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ０９０９８１ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３７′５５″ Ｅ９９°４３′２７″ ３８４６
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ１００９１５ Ｃｈａｎｇｈａｉｚｉꎬ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０７′２８″ Ｅ１０１°１１′０９″ ３６３０
Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ ＰＧ１００９２７ Ｗａｃｈａｎｇ Ｓｔｒｅｅｔꎬ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０３′１３″ Ｅ１００°４６′０８″ ３９５０
Ｌ ｈｏｏｋｅｒｉ ＰＧ０９０９１８ Ｇｅｚａｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０７′５９″ Ｅ９９°５３′１８″ ４１１１
Ｌ ｈｏｏｋｅｒｉ ＰＧ０９０９８０ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３８′２２″ Ｅ９９°４３′４８″ ３８４７
Ｌ ｈｏｏｋｅｒｉ ＰＧ１００９６０ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２５°４０′４８″ Ｅ１００°０５′４１″ ３７６０
Ｌ ｆｉｓｃｈｅｒｉ ＰＧ１００８１０ Ｚｈｅｇｕｓｈａｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°４８′２５″ Ｅ１０２°４１′２５″ ３２４１
Ｌ ｆｉｓｃｈｅｒｉ ＰＧ１１０８０２ Ｊｉａｊｉｎｓｈａｎꎬ Ｂａｏｘｉｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５１′３０″ Ｅ１０２°４３′１３″ ２８７０
Ｌ ｆｉｓｃｈｅｒｉ ＰＧ１１０８０５ Ｊｉａｊｉｎｓｈａｎꎬ Ｂａｏｘｉｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°４９′４８″ Ｅ１０２°４２′３６″ ３３２０
Ｌ ｆｉｓｃｈｅｒｉ ＰＧ１１０８１１ Ｊｉａｊｉｎｓｈａｎꎬ Ｘｉａｏｊｉｎ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５１′２５″ Ｅ１０２°４１′２３″ ３９１３
Ｌ ｆｉｓｃｈｅｒｉ ＰＧ１１０８１５ Ｂａｌａｎｇｓｈａｎꎬ Ｘｉａｏｊｉｎ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５８′０６″ Ｅ１０２°５２′１９″ ３６５０
Ｌ ｖｅｉｔｃｈｉａｎａ ＰＧ０９０９８５ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３８′３１″ Ｅ９９°５３′０１″ ２３７８
Ｌ ｖｅｉｔｃｈｉａｎａ ＰＧ１００８５６ Ｓｏｎｇｆａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°５３′０４″ Ｅ１０３°２９′０３″ ３２３０
Ｌ ｖｅｉｔｃｈｉａｎａ ＰＧ１００８８２ Ｊｉｕｚｈａｉｇｏｕꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°５４′３２″ Ｅ１０４°１４′４２″ ２６８６
Ｌ ａｎｏｌｅｕｃａ ＰＧ０９０９１７ Ｇｅｚａｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０７′４９″ Ｅ９９°５１′１１″ ３８７０
Ｌ ａｎｏｌｅｕｃａ ＰＧ１００７０６ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — —
Ｌ ａｎｏｌｅｕｃａ ＰＧ１００８７２ Ｗｅｎ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３３°０３′２０″ Ｅ１０４°４１′５７″ ２０５９
Ｌ ａｎｏｌｅｕｃａ ＰＧ１００８７９ Ｔｉｅｌｏｕｘｉａｎｇꎬ Ｗｅｎ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３２°５２′００″ Ｅ１０４°２２′０９″ １８７１
Ｌ ｌａｔｉｈａｓｔａｔａ ＰＧ０９０９０８ Ｈａｂａ Ｓｎｏｗ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３８′５３″ Ｅ９９°４７′４８″ ３７１７
Ｌ ｌａｔｉｈａｓｔａｔａ ＰＧ１００７０８ Ｓａｎｂａｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — —
Ｌ ｌａｔｉｈａｓｔａｔａ ＰＧ１００９５３ Ｗｅｎｈａｉꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°５８′４４″ Ｅ１００°１０′２５″ ３１２５
Ｌ ｃａｌｏｘａｎｔｈａ ＰＧ０９０９７９ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３９′４１″ Ｅ９９°４６′４８″ ３０９０
Ｌ ｃａｌｏｘａｎｔｈａ ＰＧ１００７０２ Ｔｕｇｕａｎｃｕｎꎬ Ｄｉｑｉｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°２２′５９″ Ｅ９９°５７′１１″ ２９９０
Ｌ ｖｉｌｌｏｓａ ＰＧ０９０９０３ Ｂａｉｓｈｕｉｔａｉꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３０′２６″ Ｅ１００°０２′２２″ ２５１７
Ｌ ｖｉｌｌｏｓａ ＰＧ１００９０９ Ｙａｎｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２７°４１′１４″ Ｅ１０１°１３′２４″ ３２５０
Ｌ ｖｉｌｌｏｓａ ＰＧ１００９３７ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２７°３８′３４″ Ｅ１００°４０′５６″ ３１００
Ｌ ｖｉｌｌｏｓａ ＰＧ１００９４１ Ｌｕｇｕ Ｌａｋｅꎬ Ｎｉｎｇｌａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３５′５８″ Ｅ１００°４８′５４″ ２７６０
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１００８０７ Ｚｈｅｇｕｓｈａｎꎬ Ｌｉ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°４３′４６″ Ｅ１０２°４４′３１″ ２９９４
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１００８０８ Ｙａｘｉｕｃｕｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°５６′４６″ Ｅ１０２°３８′０４″ ３２２７
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１００８５８ Ｃｈｕａｎｚｈｕ Ｔｅｍｐｌｅꎬ Ｓｏｎｇｆａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°４９′５８″ Ｅ１０３°３３′４４″ ３０８６
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１００８６３ Ｒｕｏｅｒｇａｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３４°０７′０８″ Ｅ１０２°３８′４８″ ３５８０
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１００８６７ Ｌｉｎｔａｎꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３４°３６′４３″ Ｅ１０３°４２′３９″ ２８７５
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１００８８１ Ｊｉｕｚｈａｉｇｏｕꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°５４′３２″ Ｅ１０４°１４′４２″ ２６８６
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１１０８０１ Ｂａｏｘｉｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°３８′２８″ Ｅ１０２°４９′２９″ １８００
Ｌ ｐｒｚｅｗａｌｓｋｉｉ ＰＧ１１０８１６ Ｂａｌａｎｇｓｈａｎꎬ Ｘｉａｏｊｉｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５８′２９″ Ｅ１０２°５１′５９″ ３６２０
Ｌ ｌａｎｋｏｎｇｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９２３ Ｇｅｚａｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０７′３４″ Ｅ９９°４５′１７″ ３０３６
Ｌ ｌａｎｋｏｎｇｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９７７ Ｎｉｘｉｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０３′１３″ Ｅ９９°３０′１５″ ３１５５
６９６ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
Ｔａｂｌｅ １ ｃｏｎｔｉｎｕｅｄ
Ｓｐｅｃｉｅｓ ｎａｍｅ Ｓａｍｐｌｅ ＩＤ Ｌｏｃａｌｉｔｙ Ｌａｔｉｔｕｄｅ Ｌｏｎｇｉｔｕｄｅ Ａｔｉｔｕｄｅ / ｍ
Ｌ ｌａｎｋｏｎｇｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９３１ Ｗａｃｈａｎｇ Ｓｔｒｅｅｔꎬ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０２′１９″ Ｅ１００°４５′５８″ ３８１０
Ｌ ｌａｎｋｏｎｇｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９５５ Ｗｅｎｈａｉꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°５７′０１″ Ｅ１００°１０′５１″ ３０３０
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９３９ Ｌｕｇｕ Ｌａｋｅꎬ Ｎｉｎｇｌａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°４１′３７″ Ｅ１００°４５′０８″ ２７００
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９５７ Ｈｅｑｉｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３１′５６″ Ｅ１００°０２′５１″ ３０８０
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９６４ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２５°４２′１１″ Ｅ１００°０７′２８″ ２４２０
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｓｕｂｎｕｄｉｃａｕｌｉｓ ＰＧ０９０９０２ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°４０′３２″ Ｅ１００°０１′３２″ ３５６０
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｓｕｂｎｕｄｉｃａｕｌｉｓ ＰＧ０９０９８３ Ｌａｏｊｕｎ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｌｏｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°３８′３１″ Ｅ９９°４６′０３″ ３４８７
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｓｕｂｎｕｄｉｃａｕｌｉｓ ＰＧ０９０９８６ Ｃａｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｌｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — ２９００
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｓｕｂｎｕｄｉｃａｕｌｉｓ ＰＧ１００７０１ Ｌｉｄｉｐｉｎｇꎬ Ｗｅｉｘｉꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°０９′３８″ Ｅ９９°２５′０２″ ３２０７
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｓｕｂｎｕｄｉｃａｕｌｉｓ ＰＧ１００９５２ Ｘｕｅｓｏｎｇｃｕｎꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — —
Ｌ ｋａｎａｉｔｚｅｎｓｉｓ ｖａｒ.
ｓｕｂｎｕｄｉｃａｕｌｉｓ ＰＧ１１０８１８ Ｄａｎｂａ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°３５′３１″ Ｅ１０１°３９′３７″ ３１００
Ｌ ｔｓａｎｇｃｈａｎｅｎｓｉｓ ＰＧ０９０９０７ Ｈａｂａ Ｓｎｏｗ Ｍｏｕｎｔａｉｎꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°３８′５３″ Ｅ９９°４７′５３″ ３７１７
Ｌ ｔｓａｎｇｃｈａｎｅｎｓｉｓ ＰＧ１００９３８ Ｍａｏｎｉｕｓｈａｎꎬ Ｎｉｎｇｌａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°４０′０１″ Ｅ１００°３６′４０″ ３９６３
Ｌ ｔｓａｎｇｃｈａｎｅｎｓｉｓ ＰＧ１１０８７１ Ｔｉａｎｃｈｉꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — ３８９０
Ｌ ｂｏｔｒｙｏｄｅｓ ＰＧ１００８１４ Ｚｈｅｇｕｓｈａｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°５２′４０″ Ｅ１０２°４０′１４″ ３９８４
Ｌ ｂｏｔｒｙｏｄｅｓ ＰＧ１１０８３６ Ｇａｎｚｉ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°０２′４０″ Ｅ９９°１７′１２″ ３５００
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ０９０９４８ Ｌｉｔａｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°４７′５１″ Ｅ１００°２１′０２″ ３８１５
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ１００８２６ Ｑｉｏｎｇｘｉ Ｔｏｗｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°４９′３７″ Ｅ１０２°３０′３３″ ３６９１
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ１００８３４ Ｇｅｍｏｘｉａｎｇꎬ Ａｂａꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°０３′２０″ Ｅ１０１°３２′１１″ ３４６０
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ１００８４４ Ｔａｎｇｋｅｘｉａｎｇꎬ Ｒｕｏｅｒｇａｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°２４′４２″ Ｅ１０２°３２′４５″ ３５５６
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ１００８４９ Ｒｕｏｅｒｇａｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°０４′３５″ Ｅ１０３°２１′２３″ ３７５２
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ１００８６４ Ｌｕｑｕ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３４°３１′３３″ Ｅ１０２°２３′２３″ ３３６３
Ｌ ｓａｇｉｔｔａ ＰＧ１００８６６ Ｌｉｎｔａｎꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３４°４５′０４″ Ｅ１０３°１５′０９″ ３１３０
Ｌ ｍｅｌａｎｏｃｅｐｈａｌａ ＰＧ０９０９１６ Ｚａｇｅｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２８°０７′４９″ Ｅ９９°５０′３７″ ３７９６
Ｌ ｍｅｌａｎｏｃｅｐｈａｌａ ＰＧ１００９２５ Ｗａｃｈａｎｇ Ｓｔｒｅｅｔꎬ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０３′１２″ Ｅ１００°４６′０８″ ３９５０
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ０９０９２２ Ｐａｃｈａｈａｉꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２７°５８′０３″ Ｅ９９°４３′１５″ ３１６４
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ０９０９４７ Ｃｈｉｔｕｘｉａｎｇꎬ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°３８′３４″ Ｅ１００°１４′５５″ ３３９８
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ０９０９６８ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°００′３３″ Ｅ９９°４３′３４″ ３９２０
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ１００７０９ Ｓａｎｂａｘｉａｎｇꎬ Ｓｈａｎｇｒｉ￣Ｌａꎬ Ｙｕｎｎａｎ — — —
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ１００９０５ Ｇｅｓａｌａｘｉａｎｇꎬ Ｙａｎｂｉａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２７°０８′０１″ Ｅ１０１°１７′２８″ ２５８０
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ１００９２１ Ｋｅｅｒｘｉａｎｇꎬ Ｍｕｌｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２８°０７′００″ Ｅ１０１°０５′５８″ ２８００
Ｌ ｄｉｃｔｙｏｎｅｕｒａ ＰＧ１００９５４ Ｗｅｎｈａｉꎬ Ｌｉｊｉａｎｇꎬ Ｙｕｎｎａｎ Ｎ２６°５８′１０″ Ｅ１００°１０′５３″ ３１２０
Ｌ ｂｒａｓｓｉｃｏｉｄｅｓ ＰＧ０９０９５３ Ｌｉｔａｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°５０′３０″ Ｅ１００°２０′５８″ ４０２０
Ｌ ｂｒａｓｓｉｃｏｉｄｅｓ ＰＧ１００８１１ Ｚｈｅｇｕｓｈａｎꎬ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°５３′１３″ Ｅ１０２°４０′０７″ ３９００
Ｌ ｂｒａｓｓｉｃｏｉｄｅｓ ＰＧ１００８３６ Ａｂａꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°１０′４７″ Ｅ１０１°２７′５３″ ３６４４
Ｌ ｂｒａｓｓｉｃｏｉｄｅｓ ＰＧ１００８５３ Ｓｏｎｇｆａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°５５′３４″ Ｅ１０３°２０′５９″ ３６７２
Ｌ ｂｒａｓｓｉｃｏｉｄｅｓ ＰＧ１１０８１３ Ｂａｌａｎｇｓｈａｎꎬ Ｗｅｎｃｈｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°５５′３３″ Ｅ１０２°５３′２６″ ４２８０
Ｌ ｂｒａｓｓｉｃｏｉｄｅｓ ＰＧ１１０８２６ Ｇａｎｚｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°３６′５６″ Ｅ１００°１２′４８″ ３９３０
Ｌ ｌｉｎｇｉａｎａ ＰＧ１１０８２１ Ｇｅｄａｌｉａｎｇｚｉꎬ Ｄａｏｆｕꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°３２′１３″ Ｅ１０１°３５′１７″ ３８２０
Ｌ ｌｉｎｇｉａｎａ ＰＧ１１０８４８ Ｘｉｎｌｏｎｇ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°１４′５０″ Ｅ１００°１５′３１″ ４０６０
Ｌ ｐｌｅｕｒｏｃａｕｌｉｓ ＰＧ０９０９４０ Ｗｕｍｉｎｇｓｈａｎꎬ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°０７′１４″ Ｅ１００°０１′２３″ ４２０１
Ｌ ｐｌｅｕｒｏｃａｕｌｉｓ ＰＧ０９０９５８ Ｈａｉｚｉｓｈａｎꎬ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°２１′１６″ Ｅ１００°０７′１２″ ４４００
Ｌ ｐｌｅｕｒｏｃａｕｌｉｓ ＰＧ１００８１８ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３１°５２′２７″ Ｅ１０２°４３′５８″ ３７５６
Ｌ ｐｌｅｕｒｏｃａｕｌｉｓ ＰＧ１１０８０４ Ｊｉａｊｉｎｓｈａｎꎬ Ｂａｏｘｉｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３０°４９′３５″ Ｅ１０２°４２′４３″ ３３００
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ０９０９３９ Ｗｕｍｉｎｇｓｈａｎꎬ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°０７′１４″ Ｅ１００°０１′２３″ ４２０１
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ０９０９５４ Ｌｉｔａｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°５０′３０″ Ｅ１００°２０′５８″ ４０２０
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ０９０９６０ Ｗｕｍｉｎｇｓｈａｎꎬ Ｄａｏｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°２０′４６″ Ｅ１００°０６′０１″ ４３５２
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ０９０９６６ Ｘｉａｎｇｃｈｅｎｇꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ２９°００′０８″ Ｅ９９°４４′２６″ ４０２６
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ１００８１９ Ｈｏｎｇｙｕａｎꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３２°１７′１２″ Ｅ１０２°２９′２７″ ３６０９
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ１００８３７ Ｊｉｕｚｈｉꎬ Ｑｉｎｇｈａｉ Ｎ３３°２４′２５″ Ｅ１０１°２５′３９″ ３７０８
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ１００８４０ Ａｂａꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°０５′１６″ Ｅ１０２°０２′４４″ ３５５４
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ１００８４５ Ｔａｎｇｋｅｘｉａｎｇꎬ Ｒｕｏｅｒｇａｉꎬ Ｓｉｃｈｕａｎ Ｎ３３°２４′４２″ Ｅ１０２°３２′４５″ ３５５６
Ｌ ｖｉｒｇａｕｒｅａ ＰＧ１００８６５ Ｌｕｑｕ Ｃｏｕｎｔｙꎬ Ｇａｎｓｕ Ｎ３４°３１′３３″ Ｅ１０２°２３′２３″ ３３６３
７９６６期 ＨＥ ａｎｄ ＰＡＮ: Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)
Ｔａｂｌｅ ２ Ｔｈｅ ｐｒｉｍｅｒ ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎｓ ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ
ＤＮＡ ｒｅｇｉｏｎ Ｐｒｉｍｅｒ ｐａｉｒｓ Ｐｒｉｍｅｒ ｓｅｑｕｅｎｃｅ (５′－３′) Ｓｏｕｒｃｅ
ＩＴＳ ＩＴＳ４ＩＴＳ５
ＴＣＣ ＴＣＣ ＧＣＴ ＴＡＴ ＴＧＡ ＴＡＴ ＧＣ
ＧＧＡ ＡＧＴ ＡＡＡ ＡＧＴ ＣＧＴ ＡＡＣ ＡＡＧ Ｇ Ｗｈｉｔｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９０
ｍａｔＫ １Ｆ￣ＫＩＭ１Ｒ￣ＫＩＭ
ＡＡＴ ＡＴＣ ＣＡＡ ＡＴＡ ＣＣＡ ＡＡＴ ＣＣ
ＡＣＣ ＣＡＧ ＴＣＣ ＡＴＣ ＴＧＧ ＡＡＡ ＴＣＴ ＴＧＧ ＴＴＣ Ｋｉｍ (ｕｎｐｕｂｌｉｓｈｅｄ)
ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｐｓｂＡＦｔｒｎＨ２
ＧＴＴ ＡＴＧ ＣＡＴ ＧＡＡ ＣＧＴ ＡＡＴ ＧＣＴ Ｃ
ＣＧＣ ＧＣＡ ＴＧＧ ＴＧＧ ＡＴＴ ＣＡＣ ＡＡＴ ＣＣ Ｓａｎｇ ａｔ ａｌ.ꎬ １９９７ꎻ Ｔａｔｅ ａｎｄ Ｓｉｍｐｓｏｎꎬ ２００３
ｒｂｃＬ １Ｆ７２４Ｒ
ＡＴＧ ＴＣＡ ＣＣＡ ＣＡＡ ＡＣＡ ＧＡＡ ＡＣ
ＴＣＧ ＣＡＴ ＧＴＡ ＣＣＴ ＧＣＡ ＧＴＡ ＧＣ Ｆａｙ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９７
１ ３ Ｄａｔａ ａｎａｌｙｓｉｓ
Ｔｈｅ ｒａｗ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｗｅｒｅ ａｓｓｅｍｂｌｅｄ ａｎｄ
ｅｄｉｔｅｄ ｗｉｔｈ ＳｅｑＭａｎ (ＤＮＡ Ｓｔａｒ ｐａｃｋａｇｅꎻ ＤＮＡ Ｓｔａｒ
Ｉｎｃ.ꎬ Ｍａｄｉｓｏｎꎬ ＷＩꎬ ＵＳＡ)ꎬ ａｎｄ ｔｈｅｎ ｗｅｒｅ ａｌｉｇｎｅｄ
ｗｉｔｈ ＢｉｏＥｄｉｔ Ｖ ７ (Ｈａｌｌꎬ １９９９) ａｎｄ ａｄｊｕｓｔｅｄ ｍａｎｕ￣
ａｌｌｙ. ＭＥＧＡ ５ ０ (Ｔａｍｕｒａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７) ｗａｓ ｕｓｅｄ ｔｏ
ｓｅａｒｃｈ ｔｈｅ ｖａｒｉａｂｌｅ ｓｉｔｅｓ ａｎｄ ｃａｌｃｕｌａｔｅ ｔｈｅ ｉｎｔｒａ￣ ａｎｄ
ｉｎｔｅｒ￣ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅ. Ｔｈｅ ｎｅｉｇｈｂｏｕｒ￣ｊｏｉｎｉｎｇ
(ＮＪ) ｔｒｅｅ ｗａｓ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｅｄ ｕｎｄｅｒ ｔｈｅ Ｋｉｍｕｒａ￣２￣ｐａ￣
ｒａｍｅｔｅｒ (Ｋ２Ｐ) ｄｉｓｔａｎｃｅ ｍｏｄｅｌ ｒｅｃｏｍｍｅｎｄｅｄ ｆｏｒ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ￣ｌｅｖｅｌ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ａｎａｌｙｓｉｓ (Ｈｅｂｅｒｔ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３)ꎬ
ａｎｄ ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｖａｌｕｅｓ ｗｅｒｅ ｃａｌｃｕｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ １０００ ｒｅｐｌｉ￣
ｃａｔｉｏｎｓ ｉｎ ＭＥＧＡ ５ ０. Ｉｔ ｉｓ ｇｅｎｅｒａｌｌｙ ｂｅｌｉｅｖｅｄ ｔｈａｔ
ｗｈｅｎ ａｌｌ ｔｈｅ ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｓ ｏｆ ａ ｓｐｅｃｉｅｓ ｇｅｔ ｔｏｇｅｔｈｅｒ ｉｎｔｏ
ａ ｍｏｎｏｐｈｙｌｅｔｉｃ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｓｕｐｐｏｒｔ ｒａｔｅ ≥５０％ꎬ ｔｈｉｓ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙ (Ｔｒｉｐａｔｈｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１３).
２ Ｒｅｓｕｌｔｓ
Ｕｓｉｎｇ ｓｅｌｅｃｔｅｄ ｐｒｉｍｅｒ ｐａｉｒ ｌｉｓｔｅｄ ｉｎ Ｔａｂｌｅ ２ꎬ ｔｈｅ
ｆｏｕｒ ｌｏｃｉ ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｉｓ ｓｔｕｄｙ ｗｅｒｅ ａｌｌ ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙ ａｍ￣
ｐｌｉｆｉｅｄ ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｅｄ ｉｎ １４４ ｓａｍｐｌｅｓꎬ ｗｈｉｃｈ ｓｈｏｗｅｄ
ｈｉｇｈ ｕｎｉｖｅｒｓａｌｉｔｙ. Ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｌｅｎｇｔｈ / ｖａｒｉａｂｌｅ ｓｉｔｅｓ
(ｂｐ) ｏｆ ＩＴＳꎬ ｍａｔＫꎬ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ａｎｄ ｒｂｃＬ ｗｅｒｅ ６８９ /
１９１ꎬ ９３８ / ２３ꎬ ５８６ / ４２ ａｎｄ ６３３ / ５ꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｔｈｅ
ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎｓ ｏｆ ｐａｉｒ￣ｗｉｓｅ Ｋ２Ｐ ｇｅｎｅｔｉｃ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ｗｅｒｅ
ｓｈｏｗｎ ｉｎ Ｆｉｇｕｒｅ １ꎬ ｉｎｄｉｃａｔｉｎｇ ｔｈａｔ ａ ｗｅａｋｅｒ ｂａｒｃｏｄ￣
ｉｎｇ ｇａｐ ｅｘｉｓｔｅｄ ｉｎ ＩＴＳꎬ ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ
ｓｅｇｍｅｎｔｓ ｌａｃｋｅｄ ｔｈｉｓ ｋｉｎｄ ｏｆ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｇａｐ.
Ｆｉｇ １ Ｃｏｍｐａｒｉｓｏｎｓ ｏｆ ｆｒｅｑｕｅｎｃｙ ｄｉｓｔｒｉｂｕｔｉｏｎ ｏｆ ｉｎｔｒａ￣ ａｎｄ ｉｎｔｅｒ￣ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｐａｉｒｗｉｓｅ ｄｉｓｔａｎｃｅｓ ａｍｏｎｇ ｆｏｕｒ ｃｏｒｅ
ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｓｅｇｍｅｎｔｓ (ｘ￣ａｘｉｓ: ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅꎻ ｙ￣ａｘｉｓ: Ｋ２Ｐ ｄｉｓｔａｎｃｅ)
８９６ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
Ｔｈｅ ＮＪ ｔｒｅｅｓ ( ｎｏｔ ｓｈｏｗｎ) ｉｎｄｉｃａｔｅｄ ｔｈａｔ ｔｈｅ
ｔｈｒｅｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｈａｄ ｅｘｔｒｅｍｅｌｙ ｌｏｗ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ａｂｉｌｉｔｙꎬ ｏｆ ｗｈｉｃｈ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｃｏｕｌｄ
ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｏｎｅ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｌ ｌａｎｋｏｎｇｅｎｓｉｓ) ａｎｄ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ
ｔｗｏ ｌｏｃｉ ｆａｉｌｅｄ ｔｏ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ａｎｙ ｓｐｅｃｉｅｓ. Ｔｈｅ ｆｏｒｔｈ ｌｏｃｉꎬ
ＩＴＳꎬ ｈａｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｏｒｙ ｐｏｗｅｒ
ｆｏｒ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ. Ｏｆ ｔｈｅ ３５ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎａｌｙｚｅｄꎬ ２１ ｗｅｒｅ
ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ ｕｓｉｎｇ ＩＴＳ ｗｉｔｈ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉ￣
ｆｉｃａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｒｅａｃｈｅｄ ６０％ (Ｆｉｇ ２). Ｉｎ ａｄｄｉｔｉｏｎꎬ ＩＴＳ
ｓｅｑｕｅｎｃｅ ｄａｔａ ａｌｏｎｅ ｏｒ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｗｉｔｈ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ
ｃｏｕｌｄ ｓｅｐａｒａｔｅ Ｓｅｃｔｉｏｎ Ｃｏｒｙｍｂｏｓａｅ ｆｒｏｍ ｏｔｈｅｒ Ｓｅｃ￣
ｔｉｏｎｓ (Ｆｉｇ ２ꎬ ３).
Ｔｈｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ａｎｙ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｒｅ￣
ｇｉｏｎｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ＩＴＳ ＋ ｒｂｃＬ ｐｏｓｓｅｓｓｅｄ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｏｒｙ ｐｏｗｅｒ ｗｉｔｈ ２１ ｓｐｅｃｉｅｓ (６０％)
ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄꎬ ｗｈｉｃｈ ｗａｓ ｔｈｅ ｓａｍｅ ａｓ ｔｈｅ ｒｅｓｏｌ￣
ｖｉｎｇ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｓｉｎｇｌｅ ＩＴＳ ｒｅｇｉｏｎ. Ａｌｔｈｏｕｇｈ ｔｈｅ ｂａｓｅ
ｍｕｔａｔｉｏｎ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｒｅｇｉｏｎ ｗａｓ ｈｉｇｈｅｓｔ ａｍｏｎｇ
ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ ｃｐＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ (４２ / ５８６)ꎬ ｔｈｅ ｃｏｍｂｉｎａ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ＋ＩＴＳ ｃｏｕｌｄ ｏｎｌｙ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅｄ ２０
ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｆｉｇ ３). Ｔｈｅ ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ａｌｌ ｆｏｕｒ ｒｅｇｉｏｎｓ
ａｌｓｏ ｆａｉｌｅｄ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ ｔｈｅ ａｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉ￣
ｃａｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｊｕｓｔ １９ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｅｒｅ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅｄ.
３ Ｄｉｓｃｕｓｓｉｏｎ
Ａｎ ｉｄｅａｌ ｂａｒｃｏｄｅ ｓｈｏｕｌｄ ｐｏｓｓｅｓｓ ｓｕｆｆｉｃｉｅｎｔ ｖａｒｉ￣
ａｔｉｏｎｓ ａｍｏｎｇ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｏ ａｓ ｔｏ
ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ａｎｄ ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ ｓｕｆｆｉｃｉｅｎｔｌｙ ｃｏｎ￣
ｓｅｒｖｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｓａｍｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｏ ｔｈａｔ
ｔｈｅｒｅ ｉｓ ｌｅｓｓ ｖａｒｉａｂｉｌｉｔｙ ｉｎｔｒａｓｐｅｃｉｆｉｃ ｔｈａｎ ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｆｉｃ
(Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎻ Ｌａｈａｙｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ ＣＢＯＬ
Ｐｌａｎｔ Ｗｏｒｋｉｎｇ Ｇｒｏｕｐꎬ ２００９). ＰＣＲ ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ
ｓｕｃｃｅｓｓ ｒａｔｅｓ ａｒｅ ｉｍｐｏｒｔａｎｔ ｃｒｉｔｅｒｉａ ｆｏｒ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄ￣
ｉｎｇ ａｓ ｗｅｌｌ ( Ｃｈａｓｅ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７ꎻ Ｋｒｅｓｓ ａｎｄ Ｅｒｉｃｋ￣
ｓｏｎꎬ ２００７ꎻ Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９). Ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓ￣
ｅｎｔ ｒｅｓｅａｒｃｈꎬ ｆｏｕｒ ｒｅｇｉｏｎｓ ｔｅｓｔｅｄ ｈｅｒｅ ｓｈｏｗｅｄ ａ ＰＣＲ
ａｎｄ ｓｅｑｕｅｎｃｉｎｇ ｓｕｃｃｅｓｓ ｒａｔｅ ｏｆ １００％ ｉｎ １４４ ｉｎｄｉｖｉｄｕ￣
ａｌｓ ｂｅｌｏｎｇｉｎｇ ｔｏ ３５ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ. ｗｈｉｃｈ ｍｅａｎ￣
ｉｎｇ ｔｈａｔ ｔｈｅｙ ｈａｄ ｈｉｇｈｌｙ ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ｐｒｉｍｅｒ ｐａｉｒꎬ ａｎｄ
ｃｏｕｌｄ ｇｅｎｅｒａｔｅ ｈｉｇｈ￣ｑｕａｌｉｔｙ ｂｉｄｉｒｅｃｔｉｏｎａｌ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ.
Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｏｆ ｔｈｅ ｆｏｕｒ ｃｏｒｅ ｂａｒｃｏｄｅｓꎬ ｏｎｌｙ ＩＴＳ ｇｅｎｅｒ￣
ａｔｅｄ ａ ｗｅａｋ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｇａｐ ａｎｄ ｐｒｏｖｉｄｅｄ ｒｅｌａ￣
ｔｉｖｅｌｙ ｔｈｅ ｈｉｇｈｅｓｔ ｓｐｅｃｉｅｓ ｒｅｓｏｌｕｔｉｏｎꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｔｈｒｅｅ
ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｒｅｇｉｏｎｓ ｄｉｄ ｎｏｔ ｅｘｉｓｔ ａｎｙ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｇａｐ
ａｎｄ ｈａｄ ｎｅａｒｌｙ ｎｏ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ ｐｏｗｅｒ. Ｔｈｉｓ
ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ ｉｓ ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ ｗｉｔｈ ｔｈａｔ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｂｙ Ｇａｏ ｅｔ
ａｌ. (２０１０) ｉｎ ｔｈｅ Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ ｆａｍｉｌｙ.
ｒｂｃＬ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｍａｉｎｌｙ ｅｘｉｓｔｓ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ
ｌｅｖｅｌ ａｎｄ ｔｈｅ ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｆｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎ ｉｓ ｕｓｕａｌｌｙ ｌｏｗꎬ
ｗｈｉｌｅ ｔｈｅ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｒａｔｅｓ ｏｆ ｍａｔＫ ａｎｄ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｐｅｒ￣
ｆｏｒｍ ｒｅｌａｔｉｖｅｌｙ ｆａｓｔ ｉｎ ｔｈｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｇｅｎｏｍｅ (Ｃｈａｓｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９３ꎻ Ｓｈａｗ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５). Ｐｒｅｖｉｏｕｓ ｓｔｕｄｉｅｓ
ｏｎ ｎｕｍｅｒｏｕｓ ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｓｉｎｇｌｅ ｏｒ ｃｏｍ￣
ｂｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅｓｅ ｔｈｒｅｅ ｒｅｇｉｏｎｓ ｈａｄ ｈｉｇｈ ｒａｔｅ ｏｆ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ (Ｋｒｅｓｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５ꎬ ２００９ꎻ Ｋｒｅｓｓ
ａｎｄ Ｅｒｉｃｋｓｏｎꎬ ２００７ꎻ Ｆａｚｅｋａｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｌａｈａｙｅ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｎｅｗｍａｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６ꎬ ２００８ꎻ Ｈｏｌｌ￣
ｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９ꎻ Ｊｉａｏ ａｎｄ Ｓｈｕｉꎬ ２０１３ꎻ Ｌｉｕ ｅｔ
ａｌ.ꎬ ２０１３ꎻ Ｅｎａｎ ａｎｄ Ａｈｍｅｄꎬ ２０１４). Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ
ｔｈｒｅｅ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｒｅｇｉｏｎｓ ｈａｄ ｌｏｗｅｒ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｓｕｂｓｔｉ￣
ｔｕｔｉｏｎ ｒａｔｅｓ ｔｈａｎ ＩＴＳ ａｎｄ ｄｉｄ ｎｏｔ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｗｅｌｌ ｉｎ ｉ￣
ｄｅｎｔｉｆｙｉｎｇ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ. Ｆｏｒ ｅｘａｍｐｌｅꎬ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｃｏｕｌｄ
ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｏｎｌｙ ｏｎｅ ｓｐｅｃｉｅｓꎬ ｅｖｅｎ ｉｆ ｉｔ ｗａｓ ｏｎｅ ｏｆ ｔｈｅ
ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｍａｒｋｅｒｓ ｗｉｔｈ ｆａｓｔｅｓｔ ｅｖｏｌｖｉｎｇ ｒａｔｅ ａｎｄ
ｈａｄ ｈｉｇｈ ｌｅｖｅｌ ｏｆ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ ｉｎ ｍａｎｙ
ｐｌａｎｔ ｇｒｏｕｐｓ. Ｆｕｒｔｈｅｒｍｏｒｅꎬ ｗｈｅｎ ＩＴＳ ｗａｓ ｃｏｍｂｉｎｅｄ
ｗｉｔｈ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨꎬ ｔｈｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｏｒｙ ｐｏｗｅｒ
ｆａｉｌｅｄ ｔｏ ｉｍｐｒｏｖｅ. Ｃｏｎｇｒｕｅｎｃｅ ｂｅｔｗｅｅｎ ｔｈｅ ｄａｔａｓｅｔｓ
ｏｆ ｎｕｃｌｅａｒ ＤＮＡ ｍａｒｋｅｒ (ＩＴＳ) ａｎｄ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ＤＮＡ
ｍａｒｋｅｒｓ (ｍａｔＫꎬ ｒｂｃＬ ａｎｄ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ) ｗｅｒｅ ｅｖａｌｕａ￣
ｔｅｄ ｂｙ ｔｈｅ ｉｎｃｏｎｇｒｕｅｎｃｅ￣ｌｅｎｇｔｈ￣ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ ( ＩＬＤ )
ｔｅｓｔ ｓｈｏｗｉｎｇ ｔｈａｔ ｔｈｅｒｅ ｗａｓ ｇｅｎｅ ｃｏｎｆｌｉｃｔ ｂｅｔｗｅｅｎ
ｔｈｅｍ. Ｔｈｉｓ ｋｉｎｄ ｏｆ ｇｅｎｅ ｃｏｎｆｌｉｃｔ ｐｒｏｂａｂｌｙ ｉｓ ｔｈｅ
ｃａｕｓｅ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｅｃｒｅａｓｅ ｉｎ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｐｏｗｅｒ
ｏｆ ＩＴＳ ｗｈｅｎ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｗｉｔｈ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ. Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕ￣
ｌａｒｉａ ｗａｓ ｐｒｏｐｏｓｅｄ ｔｏ ｏｒｉｇｉｎａｔｅｄ ａｓ ａ ｃｏｎｓｅｑｕｅｎｃｅ ｏｆ
ａｎ ｅｘｐｌｏｓｉｖｅ ｒａｄｉａｔｉｏｎ ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ ｌａｓｔ ２０ ｍｉｌｌｉｏｎ ｙｅａｒｓ
(Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６) ａｎｄ ｐｒｏｂａｂｌｙ ｅｘｉｓｔｅｄ ｉｎｃｏｍｐｌｅｔｅ
ｌｉｎｅａｇｅ ｓｏｒｔｉｎｇ. Ｆｕｒｔｈｅｒꎬ ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ
ｇｅｎｅ ｉｎｔｒｏｇｒｅｓｓｉｏｎ ｏｃｃｕｒｒｅｄ ｆｒｅｑｕｅｎｔｌｙ ａｍｏｎｇ ｔｈｅ
ｃｏｎｇｅｎｅｒｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓ ( Ｐａｎ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８ꎻ Ｙｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ
２０１１ꎬ ２０１４ａꎬ ｂ). Ｔｈｅｓｅ ｐｈｅｎｏｍｅｎａ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｔｈｅ
ｍａｊｏｒ ｃａｕｓｅｓ ｏｆ ｌｏｗ ｓｐｅｃｉｅｓ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｒａｔｅ ｏｆ
ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅ. Ａｎｙｗａｙꎬ ｗｅ ｃａｎ’ｔ ｒｅｌｙ ｏｎ ａ ｓｉｎｇｌｅ
９９６６期 ＨＥ ａｎｄ ＰＡＮ: Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)
Ｆｉｇ ２ Ｔｈｅ ＮＪ ｔｒｅｅ ｉｎｆｅｒｒｉｎｇ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ＩＴＳ ｓｅｑｕｅｎｃｅ. Ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｖａｌｕｅｓ (>５０％) ａｒｅ ｓｈｏｗｎ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ｒｅｌｅｖａｎｔ ｂｒａｎｃｈｅｓ. Ｔｈｅ ｂｌｏｄ ｂｌａｃｋ
ｆｏｎｔ ｓｈｏｗｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ. Ａ: ａ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｐａｌｍａｔｅ ｖｅｉｎｓꎻ Ｂ: ａ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｐｉｎｎａｔｅ ｖｅｉｎｓ
００７ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
Ｆｉｇ. ３ Ｔｈｅ ＮＪ ｔｒｅｅ ｉｎｆｅｒｒｉｎｇ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ＩＴＳ＋ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｓｅｑｕｅｎｃｅ. Ｂｏｏｔｓｔｒａｐ ｖａｌｕｅｓ (>５０％) ａｒｅ ｓｈｏｗｎ ａｂｏｖｅ ｔｈｅ ｒｅｌｅｖａｎｔ ｂｒａｎｃｈｅｓ.
Ｔｈｅ ｂｌｏｄ ｂｌａｃｋ ｆｏｎｔ ｓｈｏｗｓ ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙ ｉｄｅｎｔｉｆｉｅｄ. Ａ: ａ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｐａｌｍａｔｅ ｖｅｉｎｓꎻ Ｂ: ａ ｃｌａｄｅ ｗｉｔｈ ｐｉｎｎａｔｅ ｖｅｉｎｓ
１０７６期 ＨＥ ａｎｄ ＰＡＮ: Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)
ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｆｒａｇｍｅｎｔ ( ｅｓｐｅｃｉａｌｌｙ ｔｈｅ ｕｎｉｐａｒｅｎｔａｌ ｉｎ￣
ｈｅｒｉｔｅｄ ｐｌａｓｔｉｄ ｍａｒｋｅｒｓ) ｔｏ ｐｒｏｖｉｄｅ ｒｅｌｉａｂｌｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉ￣
ｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｈｙｂｒｉｄｓ ｆｒｏｍ ｐａｒｅｎｔａｌ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｎｅｗｍａｓｔｅｒ
ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００６).
Ｉｎ Ｌｉｇｕｌａｒｉａꎬ ｓｅｃｔｉｏｎ Ｃｏｒｙｍｂｏｓａｅ ｗａｓ ｃｏｎｓｉｄ￣
ｅｒｅｄ ａｓ ｔｈｅ ｍｏｓｔ ｐｒｉｍｉｔｉｖｅ ｇｒｏｕｐ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｐａｌｍａｔｅ ｏｒ
ｐｉｎｎａｔｅ ｖｅｉｎｓ ( Ｌｉｕ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９４). Ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ
ｓｔｕｄｙꎬ ＮＪ ｔｒｅｅｓ ｃｏｎｄｕｃｅｄ ｆｒｏｍ ｓｉｎｇｌｅ ＩＴＳ ａｎｄ ｃｏｍ￣
ｂｉｎｅｄ ＩＴＳ ＋ ｐｓｂＡ￣ｔｒｎＨ ｄａｔａ ｓｈｏｗｅｄ ｔｈａｔ ｓｅｃｔｉｏｎ
Ｃｏｒｙｍｂｏｓａｅ ｗａｓ ｓｅｐａｒａｔｅｄ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｏｔｈｅｒ ｓｅｃｔｉｏｎｓ ｏｆ
Ｌｉｇｕｌａｒｉａꎬ ａｎｄ ｔｈｅ ｔａｘａ ｗｉｔｈ ｐａｌｍａｔｅ ｖｅｉｎｓ ( ｅｘｃｅｐｔ
Ｌ ｓｔｅｎｏｇｌｏｓｓａ) ａｎｄ ｏｎｅｓ ｗｉｔｈ ｐｉｎｎａｔｅ ｖｅｉｎｓ ｆｏｒｍｅｄ ａ
ｃｌａｄｅꎬ ｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙ. Ｈｏｗｅｖｅｒꎬ ｔｈｅ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ
ｕｓｅｄ ｉｎ ｔｈｅ ｐｒｅｓｅｎｔ ｓｔｕｄｙ ｃｏｕｌｄ ｎｏｔ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｏｔｈｅｒ
ｓｅｃｔｉｏｎｓ ｏｒ ｓｅｒｉｅｓ. Ｔｈｅｒｅｆｏｒｅꎬ ｗｅ ｎｅｅｄ ｔｏ ｓｅａｒｃｈ ｎｅｗ
ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ｌｏｃｉ ｗｉｔｈ ｆａｓｔｅｒ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｒａｔｅ ａｎｄ ｈｉｇｈｅｒ
ｉｎｔｅｒｓｐｅｃｉｆｉｃ ｖａｒｉａｔｉｏｎꎬ ｓｏ ａｓ ｔｏ ｂｅ ｃｏｍｂｉｎｅｄ ｗｉｔｈ ＩＴＳ
ａｎｄ ｓｅｒｖｅ ａｓ ｔｈｅ “ｓｕｐｅｒ￣ｂａｒｃｏｄｅ” (Ｌｉ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１５)
ｆｏｒ ｉｄｅｎｔｉｆｙｉｎｇ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ.
Ａｃｋｎｏｗｌｅｄｇｅｍｅｎｔｓ: Ｗｅ ｔｈａｎｋ ＺＨＡＮ Ｑｉｎｇ￣ｑｉｎｇꎬ ＪＩＡ Ｊｉｎｇꎬ
ＺＨＡＯ Ｙｕ￣ｊｕａｎꎬ ＹＡＮＧ Ｚｈｉ￣ｙｕｎꎬ ＹＵ Ｊｉａｏ￣ｊｕｎꎬ ＺＨＯＵ Ｊｉｎｇꎬ
ＷＡＮＧ Ｊｉｎ￣ｆｅｎｇꎬ ＺＥＮＧ Ｌｉａｎｇ￣ｑｉｎｇꎬ ＷＵ Ｈａｏꎬ ＷＡＮＧ Ｗｅｎ￣
ｃａｉꎬ ＷＡＮＧ Ｃｈａｏ￣ｂｏꎬ ＹＩＮ Ｇｅｎ￣ｓｈｅｎꎬ ＦＥＮＧ Ｘｉｕ￣ｙａｎꎬ
ＧＵＡＮ Ｍｅｎｇ￣ｍｅｎｇꎬ ａｎｄ ＺＨＯＵ Ｗｅｉ ｆｏｒ ｔｈｅｉｒ ｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｏｎｓ ｉｎ
ｔｈｅ ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｓ.
Ｒｅｆｅｒｅｎｃｅｓ:
ＣＢＯＬ Ｐｌａｎｔ Ｗｏｒｋｉｎｇ Ｇｒｏｕｐꎬ ２００９. Ａ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ
[Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕ￣
ｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａꎬ １０６ (３１): １２７９４—１２７９７
Ｃｈａｓｅ ＭＷꎬ Ｓｏｌｔｉｓ ＤＥꎬ Ｏｌｍｓｔｅａｄ ＲＧ ｅｔ ａｌ.ꎬ １９９３. Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ｏｆ
ｓｅｅｄ ｐｌａｎｔｓ: ａｎ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄ
ｇｅｎｅ ｒｂｃＬ [ Ｊ ] . Ａｎｎｕａｌｓ ｏｆ Ｍｉｓｓｏｕｒｉ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎꎬ ８０:
５２８—５８８
Ｃｈａｓｅ ＭＷꎬ Ｃｏｗａｎ ＲＳꎬ Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ＰＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７. Ａ ｐｒｏｐｏｓａｌ
ｆｏｒ ａ ｓｔａｎｄａｒｄｉｓｅｄ ｐｒｏｔｏｃａｌ ｔｏ ｂａｒｃｏｄｅ ａｌｌ ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ [ Ｊ] . Ｔａｘ￣
ｏｎꎬ ５６ (２): ２９５—２９９
Ｃｈｅｎ ＳＬꎬ Ｙａｏ Ｈꎬ Ｈａｎ ＪＰ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｖａｌｉｄａｔｉｏｎ ｏｆ ｔｈｅ ＩＴＳ２ ｒｅｇｉｏｎ
ａｓ ａ ｎｏｖｅｌ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ ｉｄｅｎｔｉｆｙｉｎｇ ｍｅｄｉｃｉｎａｌ ｐｌａｎｔ ｓｐｅｃｉｅｓ
[Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ５: ｅ８６１３
Ｄｏｙｌｅ ＪＪꎬ Ｄｏｙｌｅ ＪＬꎬ １９８７. Ａ ｒａｐｉｄ ＤＮＡ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｐｒｏｃｅｄｕｒｅ ｆｏｒ ｓｍａｌｌ
ｑｕａｎｔｉｔｉｅｓ ｏｆ ｆｒｅｓｈ ｌｅａｆ ｍａｔｅｒｉａｌ [Ｊ] . Ｐｈｙｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｂｕｌｌｅｔｉｎꎬ １９:
１１—１５
Ｄｅ Ｖｅｒｅ Ｎꎬ Ｒｉｃｈ ＴＧＧꎬ Ｆｏｒｄ ＣＲ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１２. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｔｈｅ ｎ￣
ａｔｉｖｅ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ ｐｌａｎｔｓ ａｎｄ ｃｏｎｉｆｅｒｓ ｏｆ Ｗａｌｅｓ [Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ７
(６): ｅ３７９４５
Ｅｎａｎ ＭＲꎬ Ａｈｍｅｄ Ａꎬ ２０１４. ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｐｌａｓｔｉｄ ｍａｔＫ
ａｎｄ ＲＮＡ ｐｏｌｙｍｅｒａｓｅ ｆｏｒ ａｓｓｅｓｓｉｎｇ ｔｈｅ ｇｅｎｅｔｉｃ ｉｄｅｎｔｉｔｙ ｏｆ ｄａｔｅ
(Ｐｈｏｅｎｉｘ ｄａｃｔｙｌｉｆｅｒａ Ｌ.) ｃｕｌｔｉｖａｒｓ [ Ｊ] . Ｇｅｎｅｔｉｃ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ
Ｒｅｓｅａｒｃｈꎬ １３: ３５２７—３５３６
Ｆａｚｅｋａｓ ＡＪꎬ Ｂｕｒｇｅｓｓ ＫＳꎬ Ｋｅｓａｎａｋｕｒｔｉ ＰＲ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. Ｍｕｌｔｉｐｌｅ ｍｕｌ￣
ｔｉｌｏｃｕｓ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｐｌａｓｔｉｄ ｇｅｎｏｍｅ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｅ ｐｌａｎｔ
ｓｐｅｃｉｅｓ ｅｑｕａｌｌｙ ｗｅｌｌ [Ｊ] . Ｋｅｗ Ｂｕｌｌｅｔｉｎꎬ １９: １１—１５
Ｇｏｎｚａｌｅｚ ＭＡꎬ Ｂａｒａｌｏｔｏ Ｃꎬ Ｅｎｇｅｌ Ｊ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ａｍ￣
ａｚｏｎｉａｎ ｔｒｅｅｓ ｗｉｔｈ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ [ Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ４ ( １０):
ｅ７８４３
Ｇａｏ Ｔꎬ Ｙａｏ Ｈꎬ Ｓｏｎｇ Ｊ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｅｖａｌｕａｔｉｎｇ ｔｈｅ ｆｅａｓｉｂｉｌｉｔｙ ｏｆ ｕｓｉｎｇ
ｃａｎｄｉｄａｔｅ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ ｉｎ ｄｉｓｃｒｉｍｉｎａｔｉｎｇ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ ｔｈｅ ｌａｒｇｅ Ａｓ￣
ｔｅｒａｃｅａｅ ｆａｍｉｌｙ [Ｊ] . ＢＭＣ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎａｒｙ Ｂｉｏｌｏｇｙꎬ １０: ３２４
Ｇｕ Ｊꎬ Ｓｕ ＪＸꎬ Ｌｉｎ ＲＺ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１. Ｔｅｓｔｉｎｇ ｆｏｕｒ ｐｒｏｐｏｓｅｄ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ
ｍａｒｋｅｒｓ ｆｏｒ ｔｈｅ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｐｅｃｉｅｓ ｗｉｔｈｉｎ Ｌｉｇｕｓｔｒｕｍ Ｌ.
(Ｏｌｅａｃｅａｅ) [Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ４９ (３):
２１３—２２４
Ｈａｌｌ ＴＡꎬ １９９９. Ｂｉｏｅｄｉｔ: ａ ｕｓｅｒ￣ｆｒｉｅｎｄｌｙ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｓｅｑｕｅｎｃｅ ａｌｉｇｎｍｅｎｔ
ｅｄｉｔｏｒ ａｎｄ ａｎａｌｙｓｉｓ ｐｒｏｇｒａｍ ｆｏｒ Ｗｉｎｄｏｗｓ ９５ / ９８ / ＮＴ [Ｊ] . Ｎｕｃｌｅｉｃ
Ａｃｉｄｓ Ｓｙｍｐｏｓｉｕｍ Ｓｅｒｉｅｓꎬ ４１: ９５—９８
Ｈｅｂｅｒｔ ＰＤＮꎬ Ｃｙｗｉｎｓｋａ Ａꎬ Ｂａｌｌ ＳＬ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００３. Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａ￣
ｔｉｏｎｓ ｔｈｒｏｕｇｈ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ [Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｒｏｙａｌ Ｓｏｃｉｅ￣
ｔｙ ｏｆ Ｌｏｎｄｏｎ Ｓｅｒｉｅｓ Ｂ￣Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ ２７０ (１５１２): ３１３—
３２３
Ｈｅｂｅｒｔ ＰＤＮꎬ Ｓｔｏｅｃｋｌｅ ＭＹꎬ Ｚｅｍｌａｋ ＴＳ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００４. Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ
ｂｉｒｄ ｔｈｒｏｕｇｈ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ [Ｊ] . Ｐｕｂｌｉｃ Ｌｉｂｒａｒｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅ Ｂｉｏｌｏ￣
ｇｙꎬ ２ (１０): ｅ３１２
Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ＭＬꎬ Ｃｌａｒｋ ＡＡꎬ Ｆｏｒｒｅｓｔ ＬＬ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｓｅｌｅｃｔｉｎｇ ｂａｒ￣
ｃｏｄｉｎｇ ｌｏｃｉ ｆｏｒ ｐｌａｎｔｓ: ｅｖａｌｕａｔｉｎｇ ｏｆ ｓｅｖｅｎ ｃａｎｄｉｄａｔｅ ｌｏｃｉ ｗｉｔｈ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ￣ｌｅｖｅｌ ｓａｍｐｌｉｎｇ ｉｎ ｔｈｒｅｅ ｄｉｖｅｒｇｅｎｔ ｇｒｏｕｐｓ ｏｆ ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ [ Ｊ] .
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｃｏｌｏｇｙ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ ９ (２): ４３９—４５７
Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ＰＭꎬ ２０１１. Ｒｅｆｉｎｉｎｇ ｔｈｅ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ
[ Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ
Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａꎬ １０８: １９４５１—１９４５２
Ｈｏｌｌｉｎｇｓｗｏｒｔｈ ＰＭꎬ Ｇｒａｈａｍ ＳＷꎬ Ｌｉｔｔｌｅ ＤＰꎬ ２０１１. Ｃｈｏｏｓｉｎｇ ａｎｄ ｕｓｉｎｇ
ａ ｐｌａｎｔ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ [Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ６ (５): ｅ１９２５４
Ｈｕｅｍｅｒ Ｐꎬ Ｋａｒｓｈｏｌｔ Ｏꎬ Ｍｕｔａｎｅｎ Ｍꎬ ２０１４. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ａｓ ａ
ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ｔｏｏｌ ｆｏｒ ｃｒｙｐｔｉｃ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ: ａｎ ｅｘａｍｐｌｅ ｆｒｏｍ Ｃａｒｙｏ￣
ｃｏｌｕｍꎬ ｗｉｔｈ ｄｅｓｃｒｉｐｔｉｏｎ ｏｆ ａ ｎｅｗ ｓｐｅｃｉｅｓ (Ｌｅｐｉｄｏｐｔｅｒａꎬ Ｇｅｌｅｃｈｉ￣
ｉｄａｅ) [Ｊ] . ＺｏｏＫｅｙｓꎬ ４０４: ９１—１１１
Ｊｉａｏ ＬＪꎬ Ｓｈｕｉ ＹＭꎬ ２０１３. Ｅｖａｌｕａｔｉｎｇ ｃａｎｄｉｄａｔｅ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ ａｍｏｎｇ
Ｃｈｉｎｅｓｅ Ｂｅｇｏｎｉａ ( Ｂｅｇｏｎｉａｃｅａｅ) ｓｐｅｃｉｅｓ [ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ
ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ ３５ (６): ７１５—７２４
Ｋｒｅｓｓ ＷＪꎬ Ｗｕｒｄａｃｋ ＫＪꎬ Ｚｉｍｍｅｒ ＥＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. Ｕｓｅ ｏｆ ＤＮＡ ｂａｒ￣
ｃｏｄｅｓ ｔｏ ｉｄｅｎｔｉｆｙ ｆｌｏｗｅｒｉｎｇ ｐｌａｎｔｓ [Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎ￣
ａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａꎬ １０２ (２３):
８３６９—８３７４
Ｋｒｅｓｓ ＷＪꎬ Ｅｒｉｃｋｓｏｎ ＤＬꎬ ２００７. Ａ ｔｗｏ￣ｌｏｃｕｓ ｇｌｏｂａｌ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ
２０７ 植 物 分 类 与 资 源 学 报 第 ３７卷
ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ: ｔｈｅ ｃｏｄｉｎｇ ｒｂｃＬ ｇｅｎｅ ｃｏｍｐｌｅｍｅｎｔｓ ｔｈｅ ｎｏｎｃｏｄｉｎｇ
ｔｒｎＨ￣ｐｓｂＡ ｓｐａｃｅｒ ｒｅｇｉｏｎ [Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ２ (６): ｅ５０８
Ｋｒｅｓｓ ＷＪꎬ Ｅｒｉｃｋｓｏｎ ＤＬꎬ Ｊｏｎｅｓ ＦＡ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｐｌａｎｔ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅｓ
ａｎｄ ａ ｃｏｍｍｕｎｉｔｙ ｐｈｙｌｏｇｅｎｙ ｏｆ ａ ｔｒｏｐｉｃａｌ ｆｏｒｅｓｔ ｄｙｎａｍｉｃｓ ｐｌｏｔ ｉｎ
Ｐａｎａｍａ [Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅ ｏｆ
ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａꎬ １０６ (４４): １８６２１—１８６２６
Ｌａｈａｙｅ Ｒꎬ ｖａｎ ｄｅｒ Ｂａｎｋ Ｍꎬ Ｂｏｇａｒｉｎ Ｄ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ
ｔｈｅ ｆｌｏｒａｓ ｏｆ ｂｉｏｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｈｏｔｓｐｏｔｓ [Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎ￣
ａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓꎬ １０５ (８): ２９２３—２９２８
Ｌｉ ＤＺꎬ Ｇａｏ ＬＭꎬ Ｌｉ ＨＴ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１. Ｃｏｍｐａｒａｔｉｖｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｏｆ ａ ｌａｒｇｅ
ｄａｔａｓｅｔ ｉｎｄｉｃａｔｅｓ ｔｈａｔ ｉｎｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ (ＩＴＳ) ｓｈｏｕｌｄ ｂｅ
ｉｎｃｏｒｐｏｒａｔｅｄ ｉｎｔｏ ｔｈｅ ｃｏｒｅ ｂａｒｃｏｄｅ ｆｏｒ ｓｅｅｄ ｐｌａｎｔｓ [ Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄ￣
ｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａ￣
ｍｅｒｉｃａꎬ １０８ (４９): １９６４１—１９６４６
Ｌｉ ＸＷꎬ Ｙａｎｇ Ｙꎬ Ｒｏｂｅｒｔ ＪＨ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１５. Ｐｌａｎｔ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ: ｆｒｏｍ
ｇｅｎｅ ｔｏ ｇｅｎｏｍｅ [Ｊ] . Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｒｅｖｉｅｗｓꎬ ９０: １５７—１６６
Ｌｉｎａｒｅｓ ＭＣꎬ Ｓｏｔｏ￣Ｃａｌｄｅｒｏｎ ＩＤꎬ Ｌｅｅｓ ＤＣ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. Ｈｉｇｈ ｍｉｔｏ￣
ｃｈｏｎｄｒｉａｌ ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ｉｎ ｇｅｏｇｒａｐｈｉｃａｌｌｙ ｗｉｄｅｓｐｒｅａｄ ｂｕｔｔｅｒｆｌｉｅｓ ｏｆ
Ｍａｄａｇａｓｃａｒ: Ａ ｔｅｓｔ ｏｆ ｔｈｅ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ａｐｐｒｏａｃｈ [Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ５０: ４８５—４９５
Ｌｉｕ ＳＷꎬ １９８５. Ｔｈｅ ｔａｘｏｎｏｍｉｃ ｓｙｓｔｅｍ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ [ Ｊ] .
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Ｌｉｕ ＳＷꎬ Ｄｅｎｇ ＤＳꎬ Ｌｉｕ ＪＱꎬ １９９４. Ｔｈｅ ｏｒｉｇｉｎꎬ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｓｔｒｉｂｕ￣
ｔｉｏｎ ｏｆ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ｃｏｍｐｏｓｉｔａｅ) [ Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ
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Ｌｉｕ ＪＱꎬ Ｗａｎｇ ＹＪꎬ Ｗａｎｇ ＡＬꎬ ２００６. Ｒａｄｉａｔｉｏｎ ａｎｄ ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ
ｗｉｔｈｉｎ ｔｈｅ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ￣ Ｃｒｅｍａｎｔｈｏｄｉｕｍ￣Ｐａｒａｓｅｎｅｃｉｏ ｃｏｍｐｌｅｘ ( Ａｓ￣
ｔｅｒａｃｅａｅ) ｔｒｉｇｇｅｒｅｄ ｂｙ ｕｐｌｉｆｔ ｏｆ ｔｈｅ Ｑｉｎｇｈａｉ￣Ｔｉｂｅｔａｎ Ｐｌａｔｅａｕ [Ｊ] .
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ３８: ３１—４９
Ｌｉｕ Ｊꎬ Ｍöｌｌｅｒ Ｍꎬ Ｇａｏ ＬＭ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１１. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｆｏｒ ｔｈｅ ｄｉｓ￣
ｃｒｉｍｉｎａｔｉｏｎ ｏｆ Ｅｕｒａｓｉａｎ ｙｅｗｓ (Ｔａｘｕｓ Ｌ.ꎬ Ｔａｘａｃｅａｅ) ａｎｄ ｔｈｅ ｄｉｓ￣
ｃｏｖｅｒｙ ｏｆ ｃｒｙｐｔｉｃ ｓｐｅｃｉｅｓ [ Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｃｏｌｏｇｙ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ １１:
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Ｌｉｕ ＳＷꎬ ２０１１. Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ [Ａ] / / Ｗｕ ＺＹꎬ Ｒａｖｅｎ ＰＨ ｅｄｓ.ꎬ Ｆｌｏｒａ ｏｆ
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ｃａｌ Ｇａｒｄｅｎ Ｐｒｅｓｓꎬ ３７１—５４４
Ｌｉｕ ＭＬꎬ Ｙｕ ＷＢꎬ Ｗａｎｇ Ｈꎬ ２０１３. Ｒａｐｉｄ ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ｐｌａｎｔ ｓｐｅ￣
ｃｉｅｓ ａｎｄ ｉＦｌｏｒａ: Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｉｎ ａ ｌａｒｇｅ ｔｅｍｐｅｒ￣
ａｔｅ ｇｅｎｕｓ Ｐｅｄｉｃｕｌａｒｉｓ (Ｏｒｏｂａｎｃｈａｃｅａｅ) [ Ｊ] . Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ
Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ ３５ (６): ７０７—７１４
Ｎｅｗｍａｓｔｅｒ ＳＧꎬ Ｆａｚｅｋａｓ ＡＪꎬ Ｒａｇｕｐａｔｈｙ Ｓꎬ ２００６. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｉｎ
ｌａｎｄ ｐｌａｎｔｓ ｅｖａｌｕａｔｉｏｎ ｏｆ ｒｂｃＬ ｉｎ ａ ｍｕｌｔｉｇｅｎｅ ｔｉｅｒｅｄ ａｐｐｒｏａｃｈ
[Ｊ] . Ｃａｎａｄｉａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ８４: ３３５—３４１
Ｎｅｗｍａｓｔｅｒ ＳＧꎬ Ｆａｚｅｋａｓ ＡＪꎬ Ｓｔｅｅｖｅｓ ＲＡＤ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. Ｔｅｓｔｉｎｇ ｃａｎ￣
ｄｉｄａｔｅ ｐｌａｎｔ ｂａｒｃｏｄｅ ｒｅｇｉｏｎｓ ｉｎ ｔｈｅ Ｍｙｒｉｓｔｉｃａｃｅａｅ [ Ｊ] . Ｍｏｌｅｃｕ￣
ｌａｒ Ｅｃｏｌｏｇｙ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ ８ (３): ４８０—４９０
Ｐａｎ ＹＺꎬ Ｓｈｉ ＳＨꎬ Ｇｏｎｇ Ｘ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００８. Ａ ｎａｔｕｒａｌ ｈｙｂｒｉｄ ｂｅｔｗｅｅｎ
Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｐａｒａｄｏｘａ ａｎｄ Ｌ ｄｕｃｉｆｏｒｍｉｓ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)ꎬ (Ａｓｔｅｒａｃｅ￣
ａｅꎬ Ｓｅｎｅｃｉｏｎｅａｅ) ｆｒｏｍ Ｙｕｎｎａｎꎬ Ｃｈｉｎａ [ Ｊ] . Ａｎｎａｌｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｍｉ￣
ｓｏｕｒｉ Ｂｏｔａｎｉｃａｌ Ｇａｒｄｅｎꎬ ９５: ４９１—４９８
Ｒｏｙ Ｓꎬ Ｔｙａｇｉ Ａꎬ Ｓｈｕｋｌａ Ｖ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ｐｌａｎｔ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ
ｌｏｃｉ ｍａｙ ｎｏｔ ｗｏｒｋ ｉｎ ｃｏｍｐｌｅｘ ｇｒｏｕｐｓ: ａ ｃａｓｅ ｓｔｕｄｙ ｗｉｔｈ Ｉｎｄｉａｎ
Ｂｅｒｂｅｒｉｓ ｓｐｅｃｉｅｓ [Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ５ (１０): ｅ１３６７４
Ｓｃｈｏｃｈ ＣＬꎬ Ｓｅｉｆｅｒｔ ＫＡꎬ Ｈｕｈｎｄｏｒｆ Ｓ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１２. Ｎｕｃｌｅａｒ ｒｉｂｏｓｏｍａｌ
ｉｎｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎｓｃｒｉｂｅｄ ( ＩＴＳ) ｒｅｇｉｏｎ ａｓ ａ ｕｎｉｖｅｒｓａｌ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｅ
ｍａｒｋｅｒ ｆｏｒ ｆｕｎｇｉ [ Ｊ] . Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｎａｔｉｏｎａｌ Ａｃａｄｅｍｙ ｏｆ
Ｓｃｉｅｎｃｅｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｕｎｉｔｅｄ Ｓｔａｔｅｓ ｏｆ Ａｍｅｒｉｃａꎬ １０９: ６２４１—６２４６
Ｓｈａｗ Ｊꎬ Ｌｉｃｋｅｙ ＥＢꎬ Ｂｅｃｋ ＪＴ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. Ｔｈｅ ｔｏｒｔｏｉｓｅ ａｎｄ ｔｈｅ ｈａｒｅ
ＩＩ. Ｒｅｌａｔｉｖｅ ｕｔｉｌｉｔｙ ｏｆ ２１ ｎｏｎｃｏｄｉｎｇ ｃｈｌｏｒｏｐｌａｓｔ ＤＮＡ ｓｅｑｕｅｎｃｅｓ
ｆｏｒ ｐｈｙｌｏｇｅｎｅｔｉｃ ａｎａｌｙｓｉｓ [Ｊ] . Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｂｏｔａｎｙꎬ ９２:
１４２—１６６
Ｔａｍｕｒａ Ｋꎬ Ｄｕｄｌｅｙ Ｊꎬ Ｎｅｉ Ｍ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００７. ＭＥＧＡ ４: Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ ｅｖｏｌｕ￣
ｔｉｏｎａｒｙ ｇｅｎｅｔｉｃｓ ａｎａｌｙｓｉｓ ( ＭＥＧＡ) ｓｏｆｔｗａｒｅ ｖｅｒｓｉｏｎ ４ ０ [ Ｊ] .
Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ２４: １５９６—１５９９
Ｔｒｉｐａｔｈｉ ＡＭꎬ Ｔｙａｇｉ Ａꎬ Ｋｕｍａｒ Ａ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１３. Ｔｈｅ ｉｎｔｅｒｎａｌ ｔｒａｎ￣
ｓｃｒｉｂｅｄ ｓｐａｃｅｒ ( ＩＴＳ) ｒｅｇｉｏｎ ａｎｄ ｔｒｎｈＨ￣ｐｓｂＡ ａｒｅ ｓｕｉｔａｂｌｅ ｃａｎｄｉ￣
ｄａｔｅ ｌｏｃｉ ｆｏｒ ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ ｔｒｏｐｉｃａｌ ｔｒｅｅ ｓｐｅｃｉｅｓ ｏｆ Ｉｎｄｉａ [Ｊ] .
ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ ８: ｅ５７９３４
Ｗａｒｄ ＲＤꎬ Ｚｅｍｌａｋ ＴＳꎬ Ｉｎｎｅｓ ＢＨ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００５. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ Ａｕｓ￣
ｔｒａｌｉａ’ｓ ｆｉｓｈ ｓｐｅｃｉｅｓ [Ｊ] . Ｐｈｉｌｏｓｏｐｈｉｃａｌ ｔｒａｎｓａｃｔｉｏｎｓ ｏｆ ｔｈｅ Ｒｏｙａｌ
Ｓｏｃｉｅｔｙ ｏｆ Ｌｏｎｄｏｎ. Ｓｅｒｉｅｓ Ｂꎬ Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｓｃｉｅｎｃｅꎬ ３６０ (１４６２):
１８４７—１８５７
Ｙｕ ＪＪꎬ Ｋｕｒｏｄａ Ｃꎬ Ｇｏｎｇ Ｘꎬ ２０１１. Ｎａｔｕｒａｌ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｎｔｒｏｇｒｅｓ￣
ｓｉｏｎ ｉｎ ｓｙｍｐａｔｒｉｃ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｓｐｅｃｉｅｓ ( Ａｓｔｅｒａｃｅａｅꎬ Ｓｅｎｅｃｉｏｎｅａｅ)
[Ｊ] . Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃｓ ａｎｄ Ｅｖｏｌｕｔｉｏｎꎬ ４９: ４３８—４４８
Ｙｕ ＪＪꎬ Ｋｕｒｏｄａ Ｃꎬ Ｇｏｎｇ Ｘꎬ ２０１４ａ. Ｎａｔｕｒａｌ ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｎｔｒｏ￣
ｇｒｅｓｓｉｏｎ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ ｃｙｍｂｕｌｉｆｅｒａ ａｎｄ Ｌ ｔｏｎｇｏｌｅｎｓｉｓ (Ａｓｔｅｒ￣
ａｃｅａｅꎬ Ｓｅｎｅｃｉｏｎｅａｅ) ｉｎ ｆｏｕｒ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ ｌｏｃａｔｉｏｎｓ [Ｊ] . ＰＬｏＳ ＯＮＥꎬ
９ (１２): ｅ１１５１６７
Ｙｕ ＪＪꎬ Ｐａｎ Ｌꎬ Ｐａｎ ＹＺ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１４ｂ. Ｎａｔｕｒａｌ ｈｙｂｒｉｄｓ ｂｅｔｗｅｅｎ Ｌｉｇｕ￣
ｌａｒｉａ ｖｅｌｌｅｒｅａ ａｎｄ Ｌ ｓｕｂｓｐｉｃａｔａ (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ: Ｓｅｎｅｃｉｏｎｅａｅ) [ Ｊ] .
Ｐｌａｎｔ Ｄｉｖｅｒｓｉｔｙ ａｎｄ Ｒｅｓｏｕｒｃｅｓꎬ ３６ (２): ２１９—２２６
Ｚｅｍｌａｋ ＴＳꎬ Ｗａｒｄ ＲＤꎬ Ｃｏｎｎｅｌｌ ＡＤ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２００９. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｒｅ￣
ｖｅａｌｓ ｏｖｅｒｌｏｏｋｅｄ ｍａｒｉｎｅ ｆｉｓｈｅｓ [ Ｊ ] . Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｅｃｏｌｏｇｙ Ｒｅ￣
ｓｏｕｒｃｅｓꎬ ９: ２３７—２４２
Ｚｈｕ ＹＪꎬ Ｃｈｅｎ ＳＬꎬ Ｙａｏ Ｈ ｅｔ ａｌ.ꎬ ２０１０. ＤＮＡ ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｔｈｅ ｍｅｄｉｃｉｎａｌ
ｐｌａｎｔｓ ｏｆ ｔｈｅ ｇｅｎｕｓ Ｐａｒｉｓ [ Ｊ] . Ａｃｔａ Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａ Ｓｉｎｉｃａꎬ ４５
(３): ３７６—３８２
３０７６期 ＨＥ ａｎｄ ＰＡＮ: Ｓｔｕｄｙ ｏｎ ｔｈｅ ＤＮＡ Ｂａｒｃｏｄｉｎｇ ｏｆ Ｇｅｎｕｓ Ｌｉｇｕｌａｒｉａ Ｃａｓｓ. (Ａｓｔｅｒａｃｅａｅ)