全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月 ·424·
大黄干燥方法研究
唐文文 1, 3，李国琴 2，宋平顺 4，晋小军 1, 2*
1. 甘肃农业大学 植物生产类实验教学中心，甘肃 兰州 730070
2. 甘肃农业大学农学院，理学院，甘肃 兰州 730070
3. 铜仁职业技术学院，贵州 铜仁 554300
4. 甘肃省食品药品检验所，甘肃 兰州 730070
摘 要：目的 以大黄外观色泽、干燥耗时、折干率和有效成分的量为指标，考察大黄适宜的干燥方式。方法 供试用大黄
品种为掌叶大黄，外观色泽考察依据《中国药典》2010 年版；用热浸法提取浸出物；HPLC 法测定蒽醌、儿茶素和没食子
酸的量。结果 低于 65 ℃烘干、阴干、晒干和熏干的大黄色泽良好，断面呈黄棕色，而高于 65 ℃烘干的大黄药材断面深
棕色；在大黄有效成分方面，浸出物和蒽醌的量以晒干大黄为最高，分别为 34.32%和 1.90%，次之为 45 ℃烘干大黄，分别
为 33.53%和 1.68%；干燥温度过高，蒽醌的量显著降低；不同温度的恒温烘干处理中，随着温度的升高，没食子酸和儿茶
素的量均呈递减趋势。结论 大黄适宜的干燥方法是 45 ℃恒温烘干或晒干。
关键词：大黄；干燥方法；干燥时间；色泽；有效成分
中图分类号：R282.4 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2013)04 - 0424 - 06
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2013.04.010
Study on drying methods of Rhei Radix et Rhizoma
TANG Wen-wen1, 3, LI Guo-qin2, SONG Ping-shun4, JIN Xiao-jun1, 2
1. Experimental Teaching Center of Plants to Producing, Gansu Agricultural University, Lanzhou 730070, China
2. College of Agriculture and Science, Gansu Agricultural University, Lanzhou 730070, China
3. Tongren Vocational Institute, Tongren 554300, China
4. Gansu Provincial Institute for Food and Drug Control, Lanzhou 730070, China
Abstract: Objective To explore the suitable drying methods for Rhei Radix et Rhizoma (RRR) with color, drying time, drying rate,
and content of active ingredients as indexes. Methods Rheum palmatum was used in the test and the color of RRR was studied
according to Chinese Pharmacopeia 2010. The extract was obtained by hot-dip method. The contents of anthraquinone, gallic acid,
and catechin were determined using HPLC. Results RRR treated with oven-drying, shade-drying, sun-drying, and fumigated with
sulfur-drying below 65 ℃ showed good color and the cross-section was claybank. The cross-section of RRR treated with
oven-drying over 65 ℃ showed dark brown. The highest contents of extract and anthraquinone in RRR treated by sun-drying were
34.32% and 1.90% and followed by those treated by oven-drying at 45 ℃ with 33.53% and 1.68%, respectively. High temperature
caused the decrease of anthraquinone in RRR. The contents of gallic acid and catechin reduced with the increase of temperature
under the constant temperature oven-drying process. Conclusion The suitable drying method for RRR is oven-drying at constant
45 ℃ or sun-drying.
Key words: Rhei Radix et Rhizoma; drying method; drying time; color; active ingredients

大黄为蓼科大黄属多年生草本植物，《中国药
典》2010 年版规定的中药大黄是以掌叶大黄 Rheum
palmatum L.、唐古特大黄 R. tanguticum Maxim. ex
Balf. 或药用大黄 R. officinale Baill. 的干燥根及根
茎入药[1]。主要含蒽醌类化合物[2-4]，其性寒，有泻
湿热、破积滞、行瘀血、凉血解毒、清热泻火的作

收稿日期：2012-06-02
基金项目：甘肃省中药材产业科技攻关项目（GYC-09-09）；甘肃省科技厅重大专项（1002FKDA408）
作者简介：唐文文，硕士，研究方向为药用植物资源与利用。Tel: 13765666267 E-mail: tangwenwen6362@163.com
*通信作者 晋小军 Tel: 13909312576 E-mail: jingxj@gsau.edu.cn
网络出版时间：2012-12-05 网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/12.1108.R.20121205.1103.002.html
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月 ·425·
用。主要分布于甘肃、青海、四川、西藏等地。由
于大黄根茎粗大，通常需要 3～4 个月的时间才能完
全干燥，且含有蒽醌、鞣质、挥发油、多糖、脂肪
酸等多种成分，营养丰富，在干燥过程中极易发生
霉变、虫蛀、走油、变色、气味散失等品质变异现
象，导致大黄品质下降，疗效降低。大黄传统干燥
方法基本采用硫磺熏干，熏硫不仅影响其药用品
质，造起环境污染，而且需消耗大量薪材，严重破
坏植被。本研究通过比较不同干燥方法下大黄药材
的品质，探索大黄适宜的干燥方法，为大黄的产业
化发展提供技术支撑。
1 仪器与材料
Agilent—1260 高效液相色谱仪（美国 Agilent
公司）；DHG—9626A 电热恒温鼓风干燥箱（杭州
托普仪器有限公司）；FW—415 型中药粉碎机（天
津市泰斯特仪器有限公司）；LA—230S 型电子分析
天平（北京赛多利斯仪器公司）；RE52—98 型旋转
蒸发仪（上海亚荣生化仪器厂）。
实验用大黄样品采于甘肃省陇南市礼县上坪乡
赵坝村的试验基地，选择移栽后 2 年的掌叶大黄（经
甘肃农业大学晋小军研究员和陈垣教授鉴定为蓼科
大黄属植物掌叶大黄 Rheum palmatum L.），于 10
月中旬植株地上部分枯萎后采挖。
芦荟大黄素（批号 110795-201007）、大黄酸（批
号 110757-2002065）、大黄素（批号 110756-200110）、
大黄酚（110796-200513）、大黄素甲醚（110758-
200610）、没食子酸（0831-9501）和儿茶素（877-
200001）对照品均购自中国药品生物制品检定所。
乙醇（AR）、盐酸（AR）天津市德恩化学试剂有限
公司；氨水（AR）天津市全达化工有限公司；甲醇
为色谱纯（山东禹王实业有限公司禹城化工厂）；蒸
馏水（自制）；高效液相色谱用水为屈臣氏纯净水。
2 方法与结果
2.1 不同干燥方法
选择大小均一的鲜大黄根茎 100 个，切成厚度
为 3 cm 左右的厚片，随机分为质量相近的 13 组，
分别采用试验设计中各项干燥方法进行干燥处理，
其中杀青后烘干为鲜药材先 105 ℃杀青 0.5 h[5]，后
置于恒温干燥箱中干燥至恒定质量。记录干燥所需
时间并计算大黄折干率（折干率＝干燥后大黄质量/
干燥前大黄鲜质量）。具体试验设计见表 1，不同干
燥方法对大黄干燥时间和折干率的影响结果见表 2。

表 1 试验处理设置表
Table 1 Test treatments
处理代码 处理方法
CK 熏干：将鲜大黄放置于棚架用半干薪柴和秸秆燃烟熏干，每隔 24 h 称定质量 1 次
D1 45 ℃恒温烘干：置于 45 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D2 55 ℃恒温烘干：置于 55 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D3 65 ℃恒温烘干：置于 65 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D4 75 ℃恒温烘干：置于 75 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D5 85 ℃恒温烘干：置于 85 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D6 杀青后 45 ℃恒温烘干：先 105 ℃杀青 0.5 h，再置于 45 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D7 杀青后 55 ℃恒温烘干：先 105 ℃杀青 0.5 h，再置于 55 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D8 杀青后 65 ℃恒温烘干：先 105 ℃杀青 0.5 h，再置于 65 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D9 杀青后 75 ℃恒温烘干：先 105 ℃杀青 0.5 h，再置于 75 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D10 杀青后 85 ℃恒温烘干：先 105 ℃杀青 0.5 h，再置于 85 ℃恒温干燥箱中干燥至恒定质量
D11 阴干：置于通风的室内放置至干，每隔 24 h 称定质量 1 次
D12 晒干：置于太阳房内晾晒至干，每隔 24 h 称定质量 1 次

2.2 蒽醌类成分的测定
2.2.1 色谱条件 Waters C18 色谱柱（250 mm×4.6
mm，5 μm）；以甲醇-0.1%磷酸水溶液（85∶15）
为流动相，体积流量 1 mL/min，VWD 检测器，检
测波长为 254 nm，柱温 30 ℃，进样量 10 μL，理
论板数按大黄素峰计算不低于 3 000[1]。相应色谱图
见图 1。
2.2.2 对照品溶液的制备和线性关系考察 精密称
取芦荟大黄素、大黄素、大黄酚、大黄酸、大黄素
甲醚对照品各适量，加甲醇分别制成含芦荟大黄素
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月 ·426·
表 2 不同干燥方法的大黄干燥时间和折干率
Table 2 Drying time and drying rate of RRR using different drying methods
处理代码 干燥时间 / h 折干率 / % 处理代码 干燥时间 / h 折干率 / % 处理代码 干燥时间 / d 折干率 / %
CK 50 30.3 D5 17 32.3 D10 17 29.2
D1 48 31.5 D6 48 29.9 D11 60 30.5
D2 39 30.3 D7 39 28.1 D12 20 30.0
D3 31 31.0 D8 31 29.7
D4 28 30.7 D9 28 29.3





1-芦荟大黄素 2-大黄酸 3-大黄素 4-大黄酚 5-大黄素甲醚
1-aloe-emodin 2-rhein 3-emodin 4-chrysophanol 5-physcion

图 1 混合对照品 (A) 和样品 (晒干，B) 的 HPLC 色谱图
Fig. 1 HPLC chromatograms of mixed reference
substances (A) and sample (sun-drying, B)

78.2 μg/mL、大黄素 75.4 μg/mL、大黄酚 74.8 μg/mL、
大黄酸 42.1 μg/mL，大素素甲醚 33.0 μg/mL 的溶液；
分别精密量取上述对照品溶液各 5 mL，置 25 mL
量瓶中，混匀，制得含芦荟大黄素 15.64 μg/mL、大
黄酸 8.42 μg/mL、大黄素 15.08 μg/mL、大黄酚 14.96
μg/mL、大黄素甲醚 6.6 μg/mL 的混合对照品溶液。
精密吸取混合对照品溶液 1、5、10、15、20 μL
注入高效液相色谱仪，按上述色谱条件测定峰面积。
以进样量（X）对峰面积积分值（Y）进行回归处理，
得回归方程：芦荟大黄素 Y＝65 842.47 X－361.32，
r＝0.999 8；大黄酸 Y＝34 998.15 X＋370.12，r＝
0.999 9；大黄素 Y＝47 950.10 X－1 471.85，r＝
0.999 8；大黄酚 Y＝72 725.53 X－3 175.26，r＝
0.999 9；大黄素甲醚 Y＝10 970.05 X－452.82，r＝
0.999 6；表明芦荟大黄素在 0.031～0.156 μg、大黄
酸在 0.016～0.084 μg、大黄素在 0.030～0.151 μg、
大黄酚在 0.029～0.150 μg、大黄素甲醚在 0.012～
0.066 μg 线性关系良好。
2.2.3 供试品溶液的制备 取各处理大黄粉末（过
4 号筛）约 0.15 g，精密称定，置具塞锥形瓶中，精
密加入甲醇 25 mL，称定质量，加热回流 1 h，放冷，
再称定质量，用甲醇补足减失的质量，摇匀，滤过。
精密量取续滤液 5 mL，置烧瓶中，挥去溶剂，加
8%盐酸溶液 10 mL，超声处理 2 min，再加三氯甲
烷 10 mL，加热回流 1 h，放冷，置分液漏斗中，用
少量三氯甲烷洗涤容器，并入分液漏斗中，分取三
氯甲烷层，酸液再用三氯甲烷提取 3 次，每次 10
mL，合并三氯甲烷液，减压回收溶剂至干，残渣加
甲醇使溶解，转移至 10 mL 量瓶中，加甲醇至刻度，
摇匀，滤过，取续滤液，即得。
2.2.4 精密度、稳定性和重复性试验 精密吸取上
述混合对照品溶液 10 μL，按照上述色谱条件连续
进样 6 次，记录峰面积，即得芦荟大黄素、大黄酸、
大黄素、大黄酚及大黄素甲醚峰面积的 RSD 分别
为 1.2%、1.4%、1.0%、0.8%、0.9%；取晒干样品
供试品溶液，在 0、4、8、12、16、20、24 h，按
上述色谱条件进样，按峰面积计算，芦荟大黄素、
大黄酸、大黄素、大黄酚及大黄素甲醚峰面积的
RSD 分别为 1.1%、1.7%、1.4%、1.5%、1.2%，表
明供试品溶液在 24 h 内稳定；取晒干样品按照供试
品溶液的制备方法平行制备 6 份，按上述色谱条件
测定，得到芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚
及大黄素甲醚质量分数的 RSD 分别为 2.1%、2.3%、
1.9%、0.9%、2.0%。
2.2.5 加样回收率试验 称取已测定的晒干大黄细
粉约 0.1 g，共 6 份，精密称定，分别精密加入芦荟
大黄素、大黄酸、大黄素、大黄酚及大黄素甲醚对
照品适量，按供试品溶液制备方法处理，再按上述
色谱条件进样测定，得芦荟大黄素、大黄酸、大黄
素、大黄酚及大黄素甲醚的回收率分别为 100.6%、
99.8%、99.4%、99.3%、96.7%，RSD 分别为 1.9%、
1.4%、2.6%、1.2%、2.7%。
2.2.6 样品测定 分别精密吸取对照品溶液和不同
干燥方法处理样品的供试品溶液各 10 μL，注入液
相色谱仪，记录芦荟大黄素、大黄酸、大黄素、大
黄酚、大黄素甲醚的峰面积，按外标法计算供试品
1
5
2 3 4
1
4 2
3 5
A
B
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t / min
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中蒽醌的量。结果见表 3。可知，大黄蒽醌量以 D12
最高，为 1.90%，较 CK 高出 0.26%；次之为 D1 和
D6，分别为 1.68%和 1.65%，较 CK 高出 0.04%和
0.01%；蒽醌量最低的为 D5，仅为 1.16%，较 CK
低 0.48%。
2.3 浸出物定量测定
将不同处理大黄样品粉碎，精密称定各处理下
大黄粉（过二号筛），按《中国药典》2010 年版一
部附录（XA）项下热浸法测定[1]。结果见表 3。各
不同干燥方法大黄样品的浸出物量的高低变化规律
与其蒽醌量的变化规律相同。大黄浸出物量也以
D12 最高，为 34.32%，较 CK 高出 5.80%；次之为
D1 和 D6，分别为 33.53%和 32.69%，较 CK 高出
5.01%和 4.17%；浸出物量最低的为 D5，低至
27.75%，较 CK 低 0.77%。

表 3 不同干燥方法大黄中蒽醌和浸出物量 (n＝3)
Table 3 Anthraquinone and extract contents of RRR
using different drying methods (n＝3)
处理
代码
蒽醌 /
%
较 CK 增
减量 / %
处理
代码
浸出物 /
%
较 CK 增
减量 / %
CK 1.64 − CK 28.52 −
D1 1.68 0.04 D1 33.53 5.01
D2 1.56 −0.08 D2 30.69 2.17
D3 1.32 −0.32 D3 30.05 1.53
D4 1.29 −0.35 D4 30.05 1.53
D5 1.16 −0.48 D5 27.75 −0.77
D6 1.65 0.01 D6 32.69 4.17
D7 1.55 −0.09 D7 31.62 3.10
D8 1.43 −0.21 D8 30.26 1.74
D9 1.30 −0.34 D9 30.40 1.88
D10 1.25 −0.39 D10 28.50 −0.02
D11 1.61 −0.03 D11 29.69 1.17
D12 1.90 0.26 D12 34.32 5.80

2.4 没食子酸和儿茶素定量测定
2.4.1 色谱条件 Waters C18 色谱柱（250 mm×4.6
mm，5 μm），流动相为甲醇（A）-0.1%磷酸水溶液
（B），梯度洗脱程序：0～10 min，8% A；10～30 min，
30% A；30～35 min，40% A；35～40 min，8% A；
体积流量 1 mL/min，DAD 检测器，检测波长 280
nm，柱温为 30 ℃，进样量 5 μL。相应色谱图见图 2。
2.4.2 对照品溶液的制备和线性关系考察 精密称
取没食子酸与儿茶素对照品适量，加 50%甲醇，定




1-没食子酸 2-儿茶素
1-gallic acid 2-catechin

图 2 混合对照品 (A) 和样品 (晒干，B) 的 HPLC 色谱图
Fig. 2 HPLC chromatograms of mixed reference
substances (A) and sample (sun-drying, B)

容，制得含没食子酸 55.2 μg/mL、儿茶素 245.0
μg/mL 的混合对照品溶液。
分别精密吸取上述对照品混合溶液 2、5、10、
20、30、40 μL 注入高效液相色谱仪，按上述色谱
条件测定峰面积。用峰面积的对数值（Y）对进样
量的对数值（X）进行线性回归，得回归方程：没
食子酸 Y＝0.561 0 X＋5.614 1，r＝0.999 5；儿茶素
Y＝0.580 3 X＋5.493 3，r＝0.999 4。表明没食子酸
在 0.106～2.025 μg、儿茶素在 0.465～8.234 μg 线性
关系良好。
2.4.3 供试品溶液的制备 称取各处理大黄药材细
粉约 0.5 g，精密称定，置锥形瓶中，精密加入 25 mL
20%甲醇溶液，超声 40 min，滤过，取续滤液，用
0.45 μm 微孔滤膜滤过，即得。
2.4.4 精密度、稳定性和重复性试验 精密吸取上
述混合对照品溶液 5 μL，按照上述色谱条件连续进
样 6 次，记录峰面积，即得没食子酸的 RSD 为 1.2%，
儿茶素的 RSD 为 0.8%；取晒干样品供试品溶液，在
0、4、8、12、16、20、24 h，按上述色谱条件进样，
按峰面积计算，没食子酸的 RSD 为 3.0%，儿茶素
的 RSD 为 2.5%，表明供试品溶液在 24 h 内稳定；
取晒干样品按照供试品溶液的制备方法平行制备 6
份，按上述色谱条件测定质量分数，得到没食子酸
量的 RSD 为 2.6%，儿茶素量的 RSD 为 2.3%。
2.4.5 加样回收率试验 称取已测定的晒干大黄细
粉约 0.5 g，共 6 份，精密称定，分别精密加入没食
子酸对照品和儿茶素对照品适量，按供试品溶液制
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2
2
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B
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备方法处理，再按上述色谱条件进样测定，得没食
子酸的平均回收率为 97.6%，RSD 为 1.0%；儿茶素
的平均回收率为 98.9%，RSD 为 2.0%。
2.4.6 样品测定 精密吸取对照品混合溶液和不同
干燥方法处理的大黄供试品溶液各 5 μL，注入液相
色谱仪，记录各处理样品中没食子酸和儿茶素的峰
面积，按外标法计算供试品中没食子酸和儿茶素的
量。结果见表 4。结果显示，不同干燥方法的大黄
中儿茶素量较高，在 0.367%～3.696%，没食子酸量
较低，在 0.012%～0.531%；其中，D12 处理的儿茶
素与没食子酸量均为最高，分别达 3.696%与
0.531%，较 CK 高出 2.871%和 0.403%；D11 处理
的儿茶素和没食子酸量次之，分别为 1.922%和
0.308%，较 CK 高出 1.097%和 0.180%；儿茶素和
没食子酸量最低的为 D5 处理，仅为 0.367%和
0.012%，均比 CK 要低。不同温度的恒温烘干处理
中，儿茶素和没食子酸量的大小顺序均为 D1＞D2＞
D3＞D4＞D5，D6＞D7＞D8＞D9＞D10；D6、D7、
D8、D9、D10 各处理中儿茶素量均高于 D1、D2、
D3、D4、D5 各处理，其中 D6、D7 和 D8 儿茶素
量分别为 1.829%、1.661%和 1.538%，均高于 D1
处理。
3 讨论
3.1 不同干燥方法对大黄外观色泽的影响
杀青是通过高温破坏和钝化新鲜植物体中的氧

表 4 不同干燥方法的大黄中儿茶素和没食子酸量 (n＝3)
Table 4 Contents of catechin and gallic acid in RRR
using different drying methods (n＝3)
处理
代码 儿茶素 / %
较 CK 增
减量 / %
处理
代码
没食子
酸 / %
较 CK 增
减量 / %
CK 0.825 − CK 0.128 −
D1 1.461 0.636 D1 0.181 0.053
D2 0.919 0.094 D2 0.075 −0.053
D3 0.886 0.061 D3 0.071 −0.057
D4 0.551 −0.274 D4 0.065 −0.063
D5 0.367 −0.458 D5 0.012 −0.116
D6 1.829 1.004 D6 0.123 −0.005
D7 1.661 0.836 D7 0.067 −0.061
D8 1.538 0.713 D8 0.083 −0.045
D9 1.201 0.376 D9 0.034 −0.094
D10 0.933 0.108 D10 0.038 −0.090
D11 1.922 1.097 D11 0.308 0.180
D12 3.696 2.871 D12 0.531 0.403
化酶的活性，本实验对大黄采用杀青处理，以期能
够抑制药材中氧化酶的活性和保留原药材浓郁的药
香味[6-8]。大黄外观色泽是以《中国药典》2010 年
版中“断面淡红棕色或黄棕色”为考察标准。观察
可知，低于 65 ℃烘干、阴干、晒干和熏干的大黄
色泽良好，断面呈黄棕色，而高于 65 ℃烘干的大
黄断面呈深棕色；杀青处理后的大黄有黑色斑点出
现，但清香气和苦味较为浓郁。
3.2 不同干燥方法对干燥时间的影响
干燥时间随着温度的升高而缩短，其中阴干和
熏干等干燥方法所需干燥时间过长，需要将近 2 个
月的时间，晒干需要 20 d 左右，而采用 45 ℃烘干
的干燥方法仅需要 2 d 左右，能大大提高大黄的干
燥效率；杀青处理后，大黄的折干率较不杀青处理
明显减小，这可能与杀青温度过高大黄有效成分散
失有关。
3.3 不同干燥方法对大黄浸出物和蒽醌量的影响
大黄浸出物和蒽醌量以晒干最高，45 ℃烘干的
次之。杀青处理与其他各处理在大黄浸出物上无明
显差异；在高于 55 ℃烘干的大黄中，蒽醌量均达
不到《中国药典》2010 年版中蒽醌总量不得低于
1.5%的要求，烘干温度过高，蒽醌量明显降低，可
能是由于蒽醌在高温下分解，或者发生结构和状态
的改变，从而致使蒽醌量下降。因此，大黄采用烘
干法干燥时，温度不可过高。
3.4 不同干燥方法对没食子酸和儿茶素量的影响
大黄中鞣质的量较高，约为 10%～30%[9]。现
代药理实验表明，儿茶素、没食子酸等鞣质为大黄
收敛止血作用的主要有效成分[10-13]。从不同干燥方
法大黄中没食子酸和儿茶素量的研究结果可以看
出，儿茶素与没食子酸量以晒干大黄最高，45 ℃烘
干的次之，最低为 85 ℃烘干的；儿茶素和没食子
酸的量随着温度升高，呈递减趋势；与未杀青处理
比较，杀青后各处理中大黄儿茶素量均高于未杀青
处理，由于大黄杀青后抑制其氧化酶活性，防止和
减弱了儿茶素等物质的氧化。
通过以上研究结果发现，在大黄干燥过程中，
伴随着大黄内水分的散失，其生理活性和物理形态
也发生着显著的变化，不同干燥方法对大黄的品质
影响较大。晒干和 45 ℃烘干的大黄，在外观和有
效成分量上均不比传统干燥方法（熏干）干制的大
黄差，且耗时少、干燥效率高。这与王俊英等[14]对
当归和黄芪的干制方法的研究结果相似。结合大黄
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 44 卷 第 4 期 2013 年 2 月 ·429·
药材的外观色泽、干燥耗时、折干率、浸出物、蒽
醌以及鞣质的量等方面综合分析，大黄适宜的干燥
方法是 45 ℃恒温烘干或晒干。这两种干燥方法经
济适用，适宜于进行大规模的大黄药材加工，也可
考虑应用到其他根茎类药材的工业化生产上。
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