免费文献传递   相关文献

Research progress in injury model of vascular endothelial cells and protective effect of Chinese materia medica

血管内皮细胞损伤模型及中药保护作用研究进展



全 文 :中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·276·
·综 述·
血管内皮细胞损伤模型及中药保护作用研究进展
马桂鑫,赵文文,陈修平*
中药质量研究国家重点实验室 澳门大学中华医药研究院 澳门大学,澳门特别行政区
摘 要:血管内皮细胞损伤参与了多种心脑血管疾病发生发展的病理过程。合适的内皮损伤模型是探讨内皮细胞损伤的分子
机制、筛选相关保护作用药物的重要工具。引起内皮损伤的因素众多,机制与病理意义各异。氧化低密度脂蛋白(ox-LDL)、
末端晚期糖基化终末产物(AGEs)、过氧化氢(H2O2)、同型半胱氨酸(Hcy)、血管紧张素 II(Ang II)等已被成功应用于
建立内皮细胞损伤模型。总结了目前最为常用的内皮细胞损伤模型。同时,对这些模型具有保护作用的中药进行概述,以期
为靶向内皮细胞的药物筛选以及相关中药的研究和开发提供参考。
关键词:内皮细胞;损伤模型;氧化低密度脂蛋白;末端晚期糖基化终末产物;过氧化氢;同型半胱氨酸;血管紧张素 II;中药
中图分类号:R285 文献标志码:A 文章编号:0253 - 2670(2014)02 - 0276 - 08
DOI: 10.7501/j.issn.0253-2670.2014.02.023
Research progress in injury model of vascular endothelial cells and protective
effect of Chinese materia medica
MA Gui-xin, ZHAO Wen-wen, CHEN Xiu-ping
State Key Laboratory of Quality Research in Chinese Medicine, Institute of Chinese Medical Sciences, University of Macau,
Macao, China
Key words: endothelial cells; injury model; oxidized low density lipoprotein; advanced glycation end products; hydrogen peroxide;
homocysteine; angiotensin II; Chinese materia medica

血管内皮细胞是覆盖于血管内膜表面的单层扁
平或多角形的细胞,在维持血管渗透性、传递血管
信息和分泌血管活性物质等方面起关键作用。内皮
细胞损伤在动脉粥样硬化、高血压、糖尿病、脑血
管疾病等病理过程中起着重要作用。
内皮细胞损伤模型是阐明内皮损伤机制、筛选
内皮保护药物的重要工具。目前,用于损伤模型制
备的内皮细胞主要有原代培养的内皮细胞和内皮细
胞株两类。前者是来源于实验动物(鼠、牛、猪等)
或者人的血管(如主动脉、冠状动脉、脑动脉、肺
动脉、脐静脉等),需原代分离培养,在体外只能传
非常有限的代数。其中,最为常用的是人脐静脉内
皮细胞(human umbilical vein endothelial cells,
HUVECs)。后者类似肿瘤细胞株,可传至多代,且
有商品化的可供直接使用,如 HUVEC-12、CRL-
1730、EA.hy926 等。ECV304 细胞也曾被认为是内
皮细胞,但最近研究显示,该细胞为膀胱癌细胞株[1]。
引起内皮细胞损伤的因素有多种,如氧化低密度脂
蛋白(oxidized low density lipoprotein,ox-LDL)、末
端晚期糖基化终末产物(advanced glycation end
products,AGEs)、同型半胱氨酸(homocysteine,
Hcy)、血管紧张素 II(angiotensin II,Ang II)、细菌
脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)、肿瘤坏死因子-α
(tumor necrosis factor alpha,TNF-α)、白细胞介素等。
目前常用的内皮细胞损伤模型正是利用这些损伤因
素所建立的。

收稿日期:2013-10-19
基金项目:国家自然科学基金资助项目(81160048);澳门科学技术发展基金资助项目(021/2012/A1,077/2011/A3);澳门大学研究基金资助
项目(MRG007/CXP/2013/ICMS)
作者简介:马桂鑫(1989—),男,中药学在读硕士,主要从事心血管药理学方面基础研究。
*通信作者 陈修平(1977—),男,博士,助理教授,博士研究生导师,主要从事心血管药理学、肿瘤药理学研究。
Tel: (0853)83974873 E-mail: xpchen@umac.mo
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·277·
1 ox-LDL 诱导的内皮细胞损伤模型
ox-LDL 是血浆中低密度脂蛋白(low density
lipoprotein,LDL)经过氧化修饰的产物。制备 LDL
可通过超速离心机密度梯度离心人血浆。LDL 氧化
修饰可通过细胞介导(生物氧化修饰)或过渡金属
离子、自由基等介导(化学氧化修饰)。其中利用
Cu2+等对 LDL 进行化学修饰是体外制备 ox-LDL 的
常用方法[2]。LDL 被氧化成 ox-LDL 后,其组成成
分和生物活性等发生很大变化,在动脉粥样硬化发
病过程中起着重要作用[3]。
ox-LDL 可以从多条途径直接或间接损伤血管
内皮细胞[4]。一是与其受体结合,上调相关基因及
蛋白表达。与 ox-LDL 结合的受体很多,但主要表
达于内皮细胞的是凝集素样 ox-LDL 受体 -1
(lectin-like oxidized low density lipoprotein receptor-
1,LOX-1)。LOX-1 是一种 II 型单链跨膜蛋白,属
C 型选择素家族,介导了 ox-LDL 诱导的内皮损伤:
诱导内皮细胞的凋亡、内皮细胞与单核细胞的黏附、
巨噬细胞转化为泡沫细胞、诱导产生金属蛋白酶降
解胞外基质蛋白等,在动脉粥样硬化的病理过程中
起着重要作用[5]。
ox-LDL 诱导的内皮细胞损伤模型,是最常用
的内皮细胞损伤模型之一。在体外损伤模型中,ox-
LDL 的质量浓度一般需要 50 μg/mL 以上。由于不
同实验室制备的 ox-LDL 存在异质性(氧化程度的
不同),ox-LDL 使用的浓度相差较大。ox-LDL 诱
导的内皮细胞损伤主要有坏死和凋亡 2 种,高质量
浓度(一般在 150 μg/mL 以上)的 ox-LDL 可直接
诱导内皮细胞坏死。ox-LDL 诱导的内皮损伤主要
是氧化损伤,ox-LDL 可通过结合 LOX-1,调节
NADPH 氧化酶、线粒体电子传递链等活性氧
(reactive oxygen species,ROS)源,诱导细胞内生
成大量 ROS。生成的 ROS 一方面可与 NO 结合,
生成过氧亚硝酸阴离子(ONOO−),降低 NO 浓度,
抑制血管舒张;另一方面,ROS 可作为第 2 信使调
节 p38 丝裂素活化蛋白激酶(p38MAPK)、磷脂酰
肌醇 3-激酶(PI3K)、细胞核因子-κB(NF-κB)等
信号途径引起内皮损伤[5-7]。最近研究显示,ox-LDL
也可诱导内皮细胞内质网应激和自噬[8],后者被认
为是区别于凋亡和坏死的另一种细胞死亡方式。值
得一提的是,低浓度的以及低氧化程度的 ox-LDL
不但不引起内皮细胞损伤,却能促进其增殖、迁移
以及血管生成[9-11],其主要机制是激活 DNA 结合抑
制子 1(Id1)和 p53[9]、调节 p27Kip1、激活 RohA[10]、
调节 PI3K/Akt/eNOS 通路[11]等。
研究发现,一些中药及其活性成分对 ox-LDL 诱
导损伤的血管内皮细胞有明显的保护作用,如银杏
叶提取物[12-13]、桔梗提取物以及桔梗皂苷 D[14-15]、石
榴皮提取物[16]、厚朴中的和厚朴酚和木兰醇[17]、芳
香植物中的丁香油酚[18]、大蒜提取物及其主要活性
成分 S-烯丙基半胱氨酸[19]、虎杖中的白藜芦醇[20-23]、
黄连中的小檗碱[24]、多种中药中的槲皮素和异鼠李
素[25]等。
2 AGEs 诱导的内皮细胞损伤模型
AGEs 是由还原性糖的醛基与蛋白质 N 端游离
氨基酸或赖氨酸残基的 ε 氨基团,经非酶促糖基化
反应形成的复杂混合物的统称。其生成过程主要是
蛋白质的氨基与还原糖的羰基在无酶条件下发生反
应,生成不稳定的薛夫碱(Shiff bases),后者重排
生成酮胺,即阿马多里(amadori),再经进一步脱
水、环化、氧化、重组,最终生成 AGEs。目前结
构较明确的 AGEs 成分有:戊糖苷素、交联素、Ncr
羧甲基赖氮酸、羧乙基赖氨酸等[26-27]。AGEs 是糖
尿病、心血管疾病发病的重要病理因子[28]。
目前认为,AGEs 主要通过与其细胞表面特异受
体——晚期糖基化终末产物受体( receptor of
advanced glycation end-products,RAGE)相互作用产
生效应。RAGE 定位于细胞膜,是 I 型单次跨膜蛋白,
属免疫球蛋白超家族受体。AGEs 与受体结合后激活
多条信号转导通路:p44/p42 MAPK、P21ras、
P38MAPK、SAPK/JNK MAPKs、NF-κB、cdc42/rac、
PI3K、JAK/Stat、ROS 等[29-30]。AGEs 作用于不同类
型细胞可经由不同的通路诱导不同的生物学效应。
在体外实验中,AGEs 可通过还原糖(D-葡萄糖、
D-果糖、D-核糖、D-脱氧核糖等)与牛血清白蛋白
在 37 ℃避光孵育制备。通过检测 AGEs 的荧光强度
(Ex/Em,330 nm/416 nm)、游离氨基酸、游离胺量、
羰基量、果糖胺残基等对其进行化学表征[2]。与
ox-LDL 相比,AGEs 诱导损伤血管内皮细胞的效能
较低,大多在 100 μg/mL 以上方显示出较明显的作
用。其中的单体成分毒性相对较大,但分离、纯化
困难,目前研究较少。AGEs 诱导内皮细胞损伤的
机制主要是诱导内质网应激、影响内皮细胞迁移和
黏附、自噬、凋亡等。其中可通过 RAGE 依赖性和
非依赖性 2 条途径,诱导内皮 ROS 生成、增加丙二
醛(MDA)生成,升高细胞内 Ca2+浓度,降低 NO
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·278·
生成,调节 NF-κB、PI3K/Akt、p38MAPK 通路,
促进糖原合成酶激酶 3β(GSK3β)磷酸化等[31-37]。
研究发现,许多中药的有效成分对 AGEs 诱导
的内皮损伤有抑制作用,如葛根中的毛蕊异黄酮-
7-O-吡喃葡萄糖苷通过逆转 AGEs 诱导的 ERK1/2
激活和 NF-κB 磷酸化,抑制氧化应激、上调 Bcl-2
表达和下调 Bax、Bad 水平等抑制 AGEs 诱导的
HUVEC 凋亡[38];葡萄籽原花青素提取物以及葡萄
籽原花青素 B2 通过激活过氧化物酶体增殖物激活
受体 γ(peroxisome proliferators-activated receptor
gamma,PPARγ)抑制血管细胞黏附分子-1(vascular
cell adhesion molecule-1,VCAM-1)表达、调节 Bax
与 Bcl-2 的比值、促进 GSK3β 磷酸化等保护 AGEs
诱导的内皮细胞损伤[37,39-41]。此外,藏红花中提取
的西红花酸[42]、虎杖中的白藜芦醇[39]等对 AGEs 诱
导的内皮细胞损伤也有保护作用。
3 H2O2 诱导的内皮细胞损伤模型
内皮细胞对氧化应激的损伤非常敏感,过量
ROS 的产生可导致细胞膜、蛋白质和核酸的氧化损
伤。H2O2 是内皮细胞产生的主要 ROS 之一。低浓
度的 H2O2 是维持内皮细胞生长和增殖的必要条件,
但是短时间内大量地生成 H2O2 则会引起内皮细胞
功能损伤。H2O2 很容易透过细胞膜,过量的 H2O2
可诱导内皮炎症、促进内皮细胞凋亡、促进单核细
胞的黏附、抑制 NO 的产生等[43-44]。
H2O2 对内皮细胞毒性较大,且由于来源方便、
价格低廉、损伤效果明显等优点,成为目前广泛应
用的研究氧化损伤的工具药物。内皮细胞对 H2O2
敏感,在微摩尔级浓度即可损伤内皮细胞。然而在
诱导内皮细胞损伤模型中,H2O2 浓度差别巨大,从
数十至数百甚至可达毫摩尔级别[45-47]。其原因部分
是由于实验条件尤其是孵育时间的不同(从数分钟
到 24 h 甚至更长)。不同的内皮细胞对其损伤的敏
感性差异较大也是可能的原因之一。此外,还可能
由于 H2O2 稳定性差,易于分解。故近年来也有采
用 较 稳 定 的 叔 丁 基 过 氧 化 氢 ( tert-butyl
hydroperoxide,TBHP)代替 H2O2 制备该模型。TBHP
损伤的机制基本与 H2O2相同,也主要是氧化损伤。
不少研究应用该模型时利用二氯二氢荧光素-乙酰
乙酸酯(DCFH2-DA)及其类似物作为 ROS 荧光探
针测定细胞内 ROS 的生成,这时需要注意 H2O2本
身就能强烈氧化 DCFH2-DA 成 DCF,产生强烈的荧
光[48],可引起假阳性结果。
利用该模型评价中药保护作用的研究较多,余
甘果提取物在 EA.hy926 细胞中预孵育可明显降低
H2O2 诱导的细胞死亡,增加 ROS 生成、激活
PI3K/Akt 通路,但不影响 NF-κB 水平[47]。在人冠
状动脉内皮细胞,白藜芦醇抑制 H2O2 诱导的细胞
损伤同时增加谷氨酸半胱氨酸连接酶、谷胱甘肽过
氧化物酶、谷胱甘肽还原酶的蛋白表达以及谷胱甘
肽的量[49]。连翘中的金丝桃苷通过激活细胞外调节
蛋白激酶(ERK)、诱导 Bcl-2 表达、降低 Bax 水平、
抑制 H2O2 诱导的 HUVEC 凋亡[50]。在大鼠脑微血
管内皮细胞,丹酚酸B通过PI3K/Akt/Raf/MEK/ERK
途径保护 H2O2 诱导的细胞凋亡[51]。此外,川芎-当
归提取物[52]、丹参酮 IIA[53]、紫萍总黄酮[54]、表没
食子儿茶素没食子酸酯(EGCG)[55]、槲皮素[55-57]、
水飞蓟宾[58]、淫羊藿苷[59]等在该模型中也显示出较
明显的保护作用。
4 Hcy 诱导的内皮细胞损伤模型
Hcy 是蛋氨酸代谢过程中的中间产物,是近年
来特别受重视的血管损伤因素之一。Hcy 血症是血
管内皮细胞损伤的独立危险因素。内皮细胞对 Hcy
损伤较为敏感,Hcy 内皮细胞损伤模型早在 20 世纪
80 年代初即有报道[60]。Hcy 抑制内皮细胞的生长以
及诱导其死亡等损伤机制复杂,可能涉及抑制
cyclin A 的转录以及通过抑制 DNA 甲基转移酶 1
(DNMT1)而抑制 DNA 甲基化[61],通过促进类
花生酸的代谢及黄嘌呤氧化酶系统增加自由基
生成[62]、上调 Noxa 表达[63]、降低 NO 的生物有
效性[64]、通过 IRE1/TRAF2 通路激活 c-jun 氨基末
端激酶(JNK)和转录抑制子 ATF3/LRF1[65]等。最
新研究显示,Hcy 可通过低甲基化 p66shc 启动子的
特异 CpG 二核苷酸上调 p66shv 的表达(位点特异
性表观调节)诱导内皮功能障碍[66];Hcy 可激活酸
性鞘磷脂酰胺通路[67]、诱导二甲基精氨酸甲基精氨
酸二甲胺 2(dimethylarginine dimethylaminohydro-
lase 2,DDAH2)启动子低甲基化诱导内皮细胞凋
亡[68]。此外,反应元件结合蛋白(CREB)通路介
导的果蝇同源蛋白 3( tribbles related protein 3,
TRB3)被认为是 Hcy 阻滞细胞周期的关键分子[69]。
富含 S-烯丙基半胱氨酸的老年大蒜提取物
(aged garlic extract,AGE)可抑制高 Hcy 诱导的
NO 降低[70];淫羊藿苷通过激活 PI3K/AKT-eNOS
信号通路延缓 Hcy 诱导内皮细胞衰老[71];槲皮素通
过降低 MDA 的量、促进内皮素的释放、提高超氧
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·279·
化物歧化酶(SOD)活性和 NO 量以及调节 NF-κB 水
平等抗氧化、抗炎作用,抑制 Hcy 诱导的内皮细胞损
伤[72]。此外,丹参素[73]、大豆提取物[74]、银杏内酯
A[75]、黄芪及其主要成分黄芪皂苷[76-77]、红景天苷[78]
等对 Hcy 诱导的内皮细胞损伤均有保护作用。
5 Ang II 诱导的内皮细胞损伤模型
Ang II 是强烈的缩血管物质,在血管平滑肌细
胞,Ang II 通过其受体 AT1 介导,激活各种细胞内
的蛋白激酶,如受体或非受体酪氨酸激酶,包括表
皮生长因子受体(EGFR)、血小板衍生生长因子受
体(PDGFR)、c-Src、PYK2、FAK、JAK2;激活丝
氨酸/苏氨酸激酶,如丝裂原活化蛋白激酶(MAPK)
家族、P70S6 激酶 Akt 蛋白/蛋白激酶 B 和各种蛋白
激酶 C 亚型等[79]。在内皮细胞,Ang II 可通过 AT1
和 AT2 诱导内皮细胞凋亡[80]。其损伤血管内皮细胞
的机制包括增加血管内皮细胞或其内膜的通透性以
促进脂质的沉积和有害物质的侵入;激活 NF-κB,
加重炎性反应[81];激活细胞膜表面的烟酰胺腺嘌呤
二核苷酸/烟酰胺腺嘌呤二核苷酸磷酸氧化酶,以及
NADPH氧化酶,促进ROS生成,诱导氧化应激[82-83];
激活蛋白激酶 C 途径,促进内皮素 1 和依前列醇释
放[84]以及降低 NO 的量[80]等。
内皮细胞对 Ang II 敏感,纳摩尔级别 Ang II 即
可引起内皮细胞显著损伤。Ang II(1~100 nmol/L)
通过激活 p38 MAPK/HSP27 通路,时间和剂量依赖
性诱导 HUVEC 应力纤维的形成和通透性增加,这
可被 EGCG 所抑制[85]。绿茶多酚(GTP)和黑茶多
酚(BTP)通过下调 NADPH 氧化酶亚基 p22phox
和 p67phox 的表达,降低细胞内 ROS 的生成,改善
Ang II 诱导的牛颈动脉内皮细胞通透性[86]。在猪主
动脉内皮细胞,丹参酮 IIA 抑制 Ang II 诱导的 NO
生成减少和内皮型 NO 合酶(eNOS)表达降低[87]。
其他引起内皮细胞损伤的常见因子还有TNF-α、
LPS、线粒体电子传递链抑制剂鱼藤酮、谷氨酸等。
缺血、缺氧等也可被用来制备内皮细胞损伤模型,
其中 Z-藁本内酯[88]、灯盏花素[89]对 TNF-α 和谷氨酸
诱导的内皮细胞损伤有保护作用。
6 结语与展望
内皮细胞不再被认为是一层单单的细胞屏障,
而是参与了多种疾病的发生、发展的病理过程。内
皮细胞激活、功能失调和损伤可能是多种心脑血管
疾病尤其是动脉粥样硬化的重要始动环节之一。因
此,抑制内皮细胞损伤对防治心脑血管疾病具有重
要意义。多种因子诱导的内皮细胞损伤模型已广泛
应用于内皮细胞损伤机制的探讨和内皮细胞保护药
物的筛选。本文总结了目前常用的血管内皮细胞损
伤模型,制备这些模型的损伤因素均被证实与心血
管疾病的发生、发展具有密切联系,可较好地模拟
在体过程。体外实验中采用的损伤因子如 ox-LDL、
AGEs、H2O2、Hcy 等的浓度比临床病人血液中检测
到的浓度高很多。同时,这些模型具有相同的血管
内皮细胞损伤机制,如诱导 ROS 生成、抑制 eNOS
表达、降低 NO 产生,但也具有各自不同的特点和
优势。因此,可以根据不同的实验需求选取不同的
模型,以期达到较为理想的效果。同所有体外模型
类似,以上模型仅仅以内皮细胞为研究对象,均不
能全面地反映整个病变过程,故需要在体动物实验
的支持。中药是替代医学和补充疗法的杰出代表,是
药物发现的潜在源泉。诸多内皮细胞损伤模型为评
价中药的心血管药理学活性和寻找相关保护药物提
供了简便的方法。目前的研究显示很多的中药成分,
尤其是一些黄酮类化合物在这些模型中具有显著地
保护内皮细胞的作用。对这些有效成分的深入研究
将有助于阐释中药的传统功效,有助于阐明中药的
药效物质基础。
参考文献
[1] Brown J, Reading S J, Jones S, et al. Critical evaluation
of ECV304 as a human endothelial cell model defined by
genetic analysis and functional responses: A comparison
with the human bladder cancer derived epithelial cell line
t24/83 [J]. Lab Invest, 2000, 80(1): 37-45.
[2] Chen X, Zhang T, Du G. Advanced glycation end
products serve as ligands for lectin-like oxidized
low-density lipoprotein receptor-1 (LOX-1): biochemical
and binding characterizations assay [J]. Cell Biochem
Funct, 2008, 26(7): 760-770.
[3] Itabe H. Oxidative modification of LDL: its pathological
role in atherosclerosis [J]. Clin Rev Allergy Immunol,
2009, 37(1): 4-11.
[4] 徐娟萍, 张晓峰. 氧化低密度脂蛋白致血管内皮损伤
机制及中药复方防治的研究进展 [J]. 现代药物与临
床, 2011, 26(3): 195-198.
[5] Chen X P, Zhang T T, Du G H. Lectin-like oxidized
low-density lipoprotein receptor-1, a new promising
target for the therapy of atherosclerosis? [J]. Cardiovasc
Drug Rev, 2007, 25(2): 146-161.
[6] Chen X P, Xun K L, Wu Q, et al. Oxidized low density
lipoprotein receptor-1 mediates oxidized low density
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·280·
lipoprotein-induced apoptosis in human umbilical vein
endothelial cells: role of reactive oxygen species [J].
Vascul Pharmacol, 2007, 47(1): 1-9.
[7] Cominacini L, Pasini A F, Garbin U, et al. Oxidized low
density lipoprotein (ox-LDL) binding to ox-LDL
receptor-1 in endothelial cells induces the activation of
NF-kappa B through an increased production of
intracellular reactive oxygen species [J]. J Biol Chem,
2000, 275(17): 12633-12638.
[8] Muller C, Salvayre R, Negre-Salvayre A, et al. Oxidized
LDLs trigger endoplasmic reticulum stress and
autophagy: prevention by HDLs [J]. Autophagy, 2011,
7(5): 541-543.
[9] Qiu J, Wang G, Zheng Y, et al. Coordination of Id1 and
p53 activation by oxidized LDL regulates endothelial cell
proliferation and migration [J]. Ann Biomed Eng, 2011,
39(12): 2869-2878.
[10] Seibold S, Schurle D, Heinloth A, et al. Oxidized LDL
induces proliferation and hypertrophy in human umbilical
vein endothelial cells via regulation of p27Kip1
expression: role of RhoA [J]. J Am Soc Nephrol, 2004,
15(12): 3026-3034.
[11] Yu S, Wong S L, Lau C W, et al. Oxidized LDL at low
concentration promotes in vitro angiogenesis and
activates nitric oxide synthase through PI3K/Akt/eNOS
pathway in human coronary artery endothelial cells [J].
Biochem Biophys Res Commun, 2011, 407(1): 44-48.
[12] Pierre S V, Lesnik P, Moreau M, et al. The standardized
Ginkgo biloba extract Egb-761 protects vascular
endothelium exposed to oxidized low density lipoproteins
[J]. Cell Mol Biol, 2008, 54(Suppl): 1032-1042.
[13] Ou H C, Lee W J, Lee I T, et al. Ginkgo biloba extract
attenuates oxLDL-induced oxidative functional damages
in endothelial cells [J]. J Appl Physiol, 2009, 106(5):
1674-1685.
[14] Wu J, Yang G, Zhu W, et al. Anti-atherosclerotic activity
of platycodin D derived from roots of Platycodon
grandiflorum in human endothelial cells [J]. Biol Pharm
Bull, 2012, 35(8): 1216-1221.
[15] Chung M J, Kim S H, Park J W, et al. Platycodon
grandiflorum root attenuates vascular endothelial cell
injury by oxidized low-density lipoprotein and prevents
high-fat diet-induced dyslipidemia in mice by
up-regulating antioxidant proteins [J]. Nutr Res, 2012,
32(5): 365-373.
[16] Sestili P, Martinelli C, Ricci D, et al. Cytoprotective
effect of preparations from various parts of Punica
granatum L. fruits in oxidatively injured mammalian cells
in comparison with their antioxidant capacity in cell free
systems [J]. Pharmacol Res, 2007, 56(1): 18-26.
[17] Zhang X, Chen S, Wang Y. Honokiol up-regulates
prostacyclin synthease protein expression and inhibits
endothelial cell apoptosis [J]. Eur J Pharmacol, 2007,
554(1): 1-7.
[18] Ou H C, Chou F P, Lin T M, et al. Protective effects of
eugenol against oxidized LDL-induced cytotoxicity and
adhesion molecule expression in endothelial cells [J].
Food Chem Toxicol, 2006, 44(9): 1485-1495.
[19] Ide N, Lau B H. Garlic compounds protect vascular
endothelial cells from oxidized low density lipoprotein-
induced injury [J]. J Pharm Pharmacol, 1997, 49(9):
908-911.
[20] Ou H C, Chou F P, Sheen H M, et al. Resveratrol, a
polyphenolic compound in red wine, protects against
oxidized LDL-induced cytotoxicity in endothelial cells
[J]. Clin Chim Acta, 2006, 364(1/2): 196-204.
[21] Chow S E, Hshu Y C, Wang J S, et al. Resveratrol
attenuates oxLDL-stimulated NADPH oxidase activity
and protects endothelial cells from oxidative functional
damages [J]. J Appl Physiol, 2007, 102(4): 1520-1527.
[22] Lin Y L, Chang H C, Chen T L, et al. Resveratrol protects
against oxidized LDL-induced breakage of the
blood-brain barrier by lessening disruption of tight
junctions and apoptotic insults to mouse cerebrovascular
endothelial cells [J]. J Nutr, 2010, 140(12): 2187-2192.
[23] Guo H, Chen Y, Liao L, et al. Resveratrol protects
HUVECs from oxidized-LDL induced oxidative damage
by autophagy upregulation via the AMPK/SIRT1 pathway
[J]. Cardiovasc Drugs Ther, 2013, 27(3): 189-198.
[24] Hsieh Y S, Kuo W H, Lin T W, et al. Protective effects of
berberine against low-density lipoprotein (LDL)
oxidation and oxidized LDL-induced cytotoxicity on
endothelial cells [J]. J Agric Food Chem, 2007, 55(25):
10437-10445.
[25] Bao M, Lou Y. Flavonoids from seabuckthorn protect
endothelial cells (EA.hy926) from oxidized low-density
lipoprotein induced injuries via regulation of LOX-1 and
eNOS expression [J]. J Cardiovasc Pharmacol, 2006,
48(1): 834-841.
[26] Thomas M C. Advanced glycation end products [J].
Contrib Nephrol, 2011, 170: 66-74.
[27] Cho S J, Roman G, Yeboah F, et al. The road to advanced
glycation end products: a mechanistic perspective [J].
Curr Med Chem, 2007, 14(15): 1653-1671.
[28] Prasad A, Bekker P, Tsimikas S. Advanced glycation end
products and diabetic cardiovascular disease [J]. Cardiol
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·281·
Rev, 2012, 20(4): 177-183.
[29] Zhou Z M, Wang K, Penn M S, et al. Receptor for AGE
(RAGE) mediates neointimal formation in response to
arterial injury [J]. Circulation, 2003, 107(17): 2238-2243.
[30] Rojas A, Delgado-Lopez F, Gonzalez I, et al. The receptor
for advanced glycation end-products: a complex signaling
scenario for a promiscuous receptor [J]. Cell Signal,
2013, 25(3): 609-614.
[31] Li H, Zhang X, Guan X, et al. Advanced glycation end
products impair the migration, adhesion and secretion
potentials of late endothelial progenitor cells [J].
Cardiovasc Diabetol, 2012, 11: 46-55.
[32] Wang S S, Xu Y H, Feng L, et al. A PKC-beta inhibitor
prompts the HUVECs apoptosis-induced by advanced
glycation end products [J]. Pharmazie, 2011, 66(11):
881-887.
[33] Zhan Y, Sun H L, Chen H, et al. Glucagon-like peptide-1
(GLP-1) protects vascular endothelial cells against
advanced glycation end products (AGEs)-induced
apoptosis [J]. Med Sci Monit, 2012, 18(7): 286-291.
[34] Adamopoulos C, Farmaki E, Spilioti E, et al. Advanced
glycation end-products induce endoplasmic reticulum
stress in human aortic endothelial cells [J]. Clin Chem
Lab Med, 2014, 52(1): 151-160.
[35] Xie Y, You S J, Zhang Y L, et al. Protective role of
autophagy in AGE-induced early injury of human
vascular endothelial cells [J]. Mol Med Rep, 2011, 4(3):
459-464.
[36] Min C, Kang E, Yu S H, et al. Advanced glycation end
products induce apoptosis and procoagulant activity in
cultured human umbilical vein endothelial cells [J].
Diabetes Res Clin Pract, 1999, 46(3): 197-202.
[37] Li B Y, Li X L, Gao H Q, et al. Grape seed procyanidin
B2 inhibits advanced glycation end product-induced
endothelial cell apoptosis through regulating GSK3beta
phosphorylation [J]. Cell Biol Int, 2011, 35(7): 663-669.
[38] Xu Y, Feng L, Wang S, et al. Phytoestrogen
calycosin-7-O-beta-D-glucopyranoside ameliorates advanced
glycation end products-induced HUVEC damage [J]. J
Cell Biochem, 2011, 112(10): 2953-2965.
[39] Yang J C, Lu M C, Lee C L, et al. Selective targeting of
breast cancer cells through ROS-mediated mechanisms
potentiates the lethality of paclitaxel by a novel diterpene,
gelomulide K [J]. Free Radical Bio Med, 2011, 51(3):
641-657.
[40] Ma L, Gao H Q, Li B Y, et al. Grape seed
proanthocyanidin extracts inhibit vascular cell adhesion
molecule expression induced by advanced glycation end
products through activation of peroxisome proliferators-
activated receptor gamma [J]. J Cardiovasc Pharmacol,
2007, 49(5): 293-298.
[41] Hou Y Y, Yang Y, Yao Y, et al. Neuroprotection of
Glycyrrhizin against ischemic vascular dementia in vivo
and glutamate-induced damage in vitro [J]. Chin Herb
Med, 2010, 2(2): 125-131.
[42] Xiang M, Yang M, Zhou C, et al. Crocetin prevents
AGEs-induced vascular endothelial cell apoptosis [J].
Pharmacol Res, 2006, 54(4): 268-274.
[43] Tang X Y, Yang X D, Peng Y F, et al. Protective effects of
lycopene against H2O2-induced oxidative injury and
apoptosis in human endothelial cells [J]. Cardiovasc
Drugs Ther, 2009, 23(6): 439-448.
[44] Wang Y K, Hong Y J, Wei M, et al. Curculigoside
attenuates human umbilical vein endothelial cell injury
induced by H2O2 [J]. J Ethnopharmacol, 2010, 132(1):
233-239.
[45] Jolliet P, Polla B, Donath A, et al. Early hydrogen
peroxide-induced pulmonary endothelial cell dysfunction:
detection and prevention [J]. Crit Care Med, 1994, 22(1):
157-162.
[46] Valen G, Sonden A, Vaage J, et al. Hydrogen peroxide
induces endothelial cell atypia and cytoskeleton
depolymerization [J]. Free Radic Biol Med, 1999,
26(11/12): 1480-1488.
[47] Wongpradabchai S, Chularojmontri L, Phornchirasilp S,
et al. Protective effect of Phyllanthus emblica fruit extract
against hydrogen peroxide-induced endothelial cell death
[J]. J Med Assoc Thai, 2013, 96(Suppl 1): 40-48.
[48] Chen X, Zhong Z, Xu Z, et al. 2′, 7′-Dichlorodihydro-
fluorescein as a fluorescent probe for reactive oxygen
species measurement: Forty years of application and
controversy [J]. Free Radic Res, 2010, 44(6): 587-604.
[49] Sayin O, Arslan N, Guner G. The protective effects of
resveratrol on human coronary artery endothelial cell
damage induced by hydrogen peroxide in vitro [J]. Acta
Clin Croat, 2012, 51(2): 227-235.
[50] Li Z L, Liu J C, Hu J, et al. Protective effects of
hyperoside against human umbilical vein endothelial cell
damage induced by hydrogen peroxide [J]. J
Ethnopharmacol, 2012, 139(2): 388-394.
[51] Liu C L, Xie L X, Li M, et al. Salvianolic acid B inhibits
hydrogen peroxide-induced endothelial cell apoptosis
through regulating PI3K/Akt signaling [J]. PLoS One,
2007, 2(12): e1321.
[52] Hou Y Z, Zhao G R, Yang J, et al. Protective effect of
Ligusticum chuanxiong and Angelica sinensis on
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·282·
endothelial cell damage induced by hydrogen peroxide
[J]. Life Sci, 2004, 75(14): 1775-1786.
[53] Lin R, Wang W R, Liu J T, et al. Protective effect of
tanshinone IIA on human umbilical vein endothelial cell
injured by hydrogen peroxide and its mechanism [J]. J
Ethnopharmacol, 2006, 108(2): 217-222.
[54] Wang B, Peng L, Zhu L, et al. Protective effect of total
flavonoids from Spirodela polyrrhiza (L.) Schleid on
human umbilical vein endothelial cell damage induced by
hydrogen peroxide [J]. Colloids Surf B Biointerfaces,
2007, 60(1): 36-40.
[55] Choi Y J, Kang J S, Park J H, et al. Polyphenolic
flavonoids differ in their antiapoptotic efficacy in
hydrogen peroxide-treated human vascular endothelial
cells [J]. J Nutr, 2003, 133(4): 985-991.
[56] Kaindl U, Eyberg I, Rohr-Udilova N, et al. The dietary
antioxidants resveratrol and quercetin protect cells from
exogenous pro-oxidative damage [J]. Food Chem Toxicol,
2008, 46(4): 1320-1326.
[57] Chuenkitiyanon S, Pengsuparp T, Jianmongkol S.
Protective effect of quercetin on hydrogen peroxide-
induced tight junction disruption [J]. Int J Toxicol, 2010,
29(4): 418-424.
[58] Wang Y K, Hong Y J, Huang Z Q. Protective effects of
silybin on human umbilical vein endothelial cell injury
induced by H2O2 in vitro [J]. Vascul Pharmacol, 2005,
43(4): 198-206.
[59] Wang Y K, Huang Z Q. Protective effects of icariin on
human umbilical vein endothelial cell injury induced by
H2O2 in vitro [J]. Pharmacol Res, 2005, 52(2): 174-182.
[60] Wall R T, Harlan J M, Harker L A, et al. Homocysteine-
induced endothelial cell injury in vitro: a model for the
study of vascular injury [J]. Thromb Res, 1980, 18(1/2):
113-121.
[61] Jamaluddin M D, Chen I, Yang F, et al. Homocysteine
inhibits endothelial cell growth via DNA hypomethylation
of the cyclin A gene [J]. Blood, 2007, 110(10):
3648-3655.
[62] Blundell G, Jones B G, Rose F A, et al. Homocysteine
mediated endothelial cell toxicity and its amelioration [J].
Atherosclerosis, 1996, 122(2): 163-172.
[63] Lee S J, Kim K M, Namkoong S, et al. Nitric oxide
inhibition of homocysteine-induced human endothelial
cell apoptosis by down-regulation of p53-dependent Noxa
expression through the formation of S-nitrosoho-
mocysteine [J]. J Biol Chem, 2005, 280(7): 5781-5788.
[64] Welch G N, Loscalzo J. Homocysteine and
atherothrombosis [J]. N Engl J Med, 1998, 338(15):
1042-1050.
[65] Zhang C, Kawauchi J, Adachi M T, et al. Activation of
JNK and transcriptional repressor ATF3/LRF1 through
the IRE1/TRAF2 pathway is implicated in human
vascular endothelial cell death by homocysteine [J].
Biochem Biophys Res Commun, 2001, 289(3): 718-724.
[66] Kim C S, Kim Y R, Naqvi A, et al. Homocysteine
promotes human endothelial cell dysfunction via
site-specific epigenetic regulation of p66shc [J].
Cardiovasc Res, 2011, 92(3): 466-475.
[67] Lee J T, Peng G S, Chen S Y, et al. Homocysteine induces
cerebral endothelial cell death by activating the acid
sphingomyelinase ceramide pathway [J]. Prog
Neuropsychopharmacol Biol Psychiatry, 2013, 45: 21-27.
[68] Jia S J, Lai Y Q, Zhao M, et al. Homocysteine-induced
hypermethylation of DDAH2 promoter contributes to
apoptosis of endothelial cells [J]. Pharmazie, 2013, 68(4):
282-286.
[69] Zou T, Liu W J, Li S D, et al. TRB3 mediates
homocysteine-induced inhibition of endothelial cell
proliferation [J]. J Cell Physiol, 2011, 226(11):
2782-2789.
[70] Weiss N, Papatheodorou L, Morihara N, et al. Aged garlic
extract restores nitric oxide bioavailability in cultured
human endothelial cells even under conditions of
homocysteine elevation [J]. J Ethnopharmacol, 2013,
145(1): 162-167.
[71] Duan X H, Xu C Q, Huang J H, et al. Icariin delays
homocysteine-induced endothelial cellular senescence
involving activation of the PI3K/AKT-eNOS signaling
pathway [J]. Pharm Biol, 2013, 51(4): 433-440.
[72] Lin R, Liu J, Gan W, et al. Protective effect of quercetin
on the homocysteine-injured human umbilical vein
vascular endothelial cell line (ECV304) [J]. Basic Clin
Pharmacol Toxicol, 2007, 101(3): 197-202.
[73] Chan K, Chui S H, Wong D Y, et al. Protective effects of
Danshensu from the aqueous extract of Salvia
miltiorrhiza (Danshen) against homocysteine-induced
endothelial dysfunction [J]. Life Sci, 2004, 75(26):
3157-3171.
[74] Fuchs D, Dirscherl B, Schroot J H, et al. Soy extract has
different effects compared with the isolated isoflavones
on the proteome of homocysteine-stressed endothelial
cells [J]. Mol Nutr Food Res, 2006, 50(1): 58-69.
[75] Zhou W, Chai H, Courson A, et al. Ginkgolide A
attenuates homocysteine-induced endothelial dysfunction
in porcine coronary arteries [J]. J Vasc Surg, 2006, 44(4):
853-862.
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 45 卷 第 2 期 2014 年 1 月

·283·
[76] Zhang B Q, Hu S J, Qiu L H, et al. Effects of Astragalus
membranaceus and its main components on the acute
phase endothelial dysfunction induced by homocysteine
[J]. Vascul Pharmacol, 2007, 46(4): 278-285.
[77] Qiu L H, Xie X J, Zhang B Q. Astragaloside IV improves
homocysteine-induced acute phase endothelial
dysfunction via antioxidation [J]. Biol Pharm Bull, 2010,
33(4): 641-646.
[78] Leung S B, Zhang H, Lau C W, et al. Salidroside
improves homocysteine-induced endothelial dysfunction
by reducing oxidative stress [J]. Evid Based Complement
Alternat Med, 2013, 2013: 679635.
[79] Nakashima H, Suzuki H, Ohtsu H, et al. Angiotensin II
regulates vascular and endothelial dysfunction: recent
topics of angiotensin II type-1 receptor signaling in the
vasculature [J]. Curr Vasc Pharmacol, 2006, 4(1): 67-78.
[80] Dimmeler S, Rippmann V, Weiland U, et al. Angiotensin
II induces apoptosis of human endothelial cells.
Protective effect of nitric oxide [J]. Circ Res, 1997, 81(6):
970-976.
[81] Yang L X, Guo R W, Liu B, et al. Role of TRPC1 and
NF-kappa B in mediating angiotensin II-induced Ca2+
entry and endothelial hyperpermeability [J]. Peptides,
2009, 30(7): 1368-1373.
[82] Zhang H, Schmeisser A, Garlichs C D, et al. Angiotensin
II-induced superoxide anion generation in human vascular
endothelial cells: Role of membrane-bound NADH-/
NADPH-oxidases [J]. Cardiovasc Res, 1999, 44(1):
215-222.
[83] Lee D Y, Wauquier F, Eid A A, et al. Nox4 NADPH
oxidase mediates peroxynitrite-dependent uncoupling of
endothelial nitric oxide synthase and fibronectin
expression in response to angiotensin II. Role of
mitochondrial reactive oxygen species [J]. J Biol Chem,
2013, 288(40): 28668-28686.
[84] Oriji G K. Angiotensin II-induced ET and PGI (2) release
in rat aortic endothelial cells is meditated by PKC [J].
Prostag Leukotr Ess, 1999, 61(2): 113-117.
[85] Yang D, Liu J, Tian C, et al. Epigallocatechin gallate
inhibits angiotensin II-induced endothelial barrier
dysfunction via inhibition of the p38 MAPK/HSP27
pathway [J]. Acta Pharmacol Sin, 2010, 31(10):
1401-1406.
[86] Ying C J, Xu J W, Ikeda K, et al. Tea polyphenols
regulate nicotinamide adenine dinucleotide phosphate
oxidase subunit expression and ameliorate angiotensin
II-induced hyperpermeability in endothelial cells [J].
Hypertens Res, 2003, 26(10): 823-828.
[87] 李永胜, 梁黔生, 王 进. 丹参酮 IIA 对猪主动脉内皮
细胞受血管紧张素 II 作用时产生 NO 及 eNOS 基因表
达的影响 [J]. 中国中西医结合杂志 , 2007, 27(7):
637-639.
[88] 王迎超, 黄 怡, 王 毅, 等. Z-藁本内酯对人脐静脉
内皮细胞保护作用及其机制研究 [J]. 中草药, 2013,
44(9): 1157-1161.
[89] 叶 立, 李建宇, 李月鹏, 等. 灯盏花素对大鼠脑微血
管内皮细胞损伤的保护作用 [J]. 中草药, 2011, 42(5):
955-957.