全 文 :中存在老化等问题,因而利用 TGDTA,XRD,FTIR
等手段评价固体分散体非常重要。
[参考文献]
[1] 邱明丰,吴建兵,王小荣,等.固体分散技术在中药给药系统中
的研究和应用[J].中华医学实践杂志,2006,5(7):742.
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[3] 郭建平,孙其容,姚康德,等.葛根黄酮载药系统表征[J].中国
药学杂志,2001,36(11):745.
Stabilityofphysicalstateoncompoundhawthorndroppingpils
ZHANGWei1,CHENHongyan2,JIANGJianlan1
(1.SchoolofChemicalEngineeringandTechnology,TianjinUniversity,Tianjin300072,China;
2.ShijiazhuangNo.4PharmaceuticalCo.Ltd.,Shijiazhuang050021,China;
3.ChinesePeople'sArmedPoliceForcesAcademy,Langfang065000,China)
[Abstract] Objective:Toevaluatethestabilityofphysicalstatewithacceleratetestanddroppinginprocessbeforeandafteron
compoundhawthorndroppingpils.Method:Scanningelectronmicroscope,TGDTA,FTIRandXRDwereused.Result:Theactive
componentspresentedamorphous,tinycrystalandmolecularstateindroppingpils,andithadnoobviousreactionbetweenPEG4000
andactivecomponents.Withtimeprolonging,alitleofactivecomponentschangedfromamorphousstatetotinycrystalormolecular
state.Conclusion:Soliddispersionimprovedthestabilityanddissolutionofcompoundhawthorndroppingpils.
[Keywords] droppingpil;physicalstateestimate;stability
[责任编辑 鲍 雷]
[收稿日期] 20081008
[通讯作者] 杨伟俊,Tel:(0991)2320292,Email:wil
fred3106@163.com
复方雪莲滴丸中羌活、独活的纯化工艺考察
罗玉琴1,杨伟俊2,徐建国2,邢建国2
(1.中国科学院新疆理化技术研究所,新疆 乌鲁木齐 830011;
2.新疆维吾尔自治区药物研究所,新疆 乌鲁木齐 830004)
[摘要] 目的:考察复方雪莲滴丸中羌活、独活提取物的大孔树脂纯化工艺。方法:以蛇床子素和异欧前胡素
为指标,对树脂型号、上样量、洗脱溶剂进行了筛选;考察了上样液浓度、上样液 pH、柱径高比对吸附的影响。结
果:选择HPD400A大孔树脂,树脂体积与上样量体积比1∶2,pH35(原液),柱径高比1∶7,洗脱溶剂95%乙醇时,
解吸效果较好。结论:可以应用HPD400A大孔树脂纯化羌活、独活提取物。
[关键词] 复方雪莲滴丸;羌活;独活;大孔吸附树脂;纯化
[中图分类号]R283 [文献标识码]A [文章编号]10015302(2008)21247804
复方雪莲滴丸为传统方,由天山雪莲、延胡索、
羌活、川乌(制)、独活、草乌(制)、木瓜、香加皮8味
药组成,具有温经散寒,祛风逐湿,化瘀消肿,舒筋活
络之功能。用于风寒湿邪,痹阻经络所致类风湿性
关节炎,风湿性关节炎。本品原工艺为水提醇沉淀,
服用量大,为减少服用剂量,提高疗效,重新设计了
其提取工艺路线,并进行了纯化。大孔吸附树脂现
已广泛应用于天然产物的分离,近年来逐步用于中
药有效成分的提取分离和复方制剂中杂质的去
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除[12],本研究采用大孔吸附树脂对收膏量大的羌
活、独活进行纯化,纯化后服用量显著降低,有望成
为治疗风湿、类风湿性关节炎的经典维药复方。
1 仪器与试药
高效液相色谱仪,包括 LC-10ATVP二元高压
泵,SPD-10AVP检测器,CTO-10ASVP柱温箱,
SCL-10AVP系统控制器,Class-VP60色谱工作
站(日本岛津制造所);BS110S型电子天平(Sartori
us);Miliporesimplicity185超纯水器(美国密理博
公司);KQ-100DE型数控超声波发生器(昆山市超
声仪器有限公司)。羌活、独活药材购自亳州永刚
药材公司,经新疆药物研究所张彦福教授鉴定,符合
《中国药典》规定。蛇床子素及异欧前胡素对照品
(中国药品生物制品检定所,批号分别为 110822
200406,110827200407);AB-8大孔树脂(南开大
学化工厂);D101大孔树脂(天津农药厂);HPD100
-HPD700大孔树脂(沧州宝恩化工有限公司)。甲
醇、乙腈为美国Fisher公司产色谱纯,其他试剂均为
国产分析纯。
2 方法与结果
2.1 含量测定方法[3]
2.1.1 色谱条件 用十八烷基硅烷键合硅胶为填
充剂;色谱柱 KromasilODS1(46mm×250mm,5
μm),乙腈水(60∶40)为流动相;检测波长320nm;
柱温35℃。
2.1.2 对照品溶液的制备 精密称取蛇床子素和
异欧前胡素对照品各8mg,分别置10mL量瓶中,
用甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,配制对照品储备
液。分别精密吸取对照品储备液各1mL,置10mL
量瓶中,用甲醇溶解并稀释至刻度,摇匀,制成混合
对照品溶液。
2.1.3 供试品溶液的制备 按优选的提取工艺,将
羌活、独活药材用8倍量55%乙醇提取3次,每次1
h,过滤,合并滤液,浓缩成稠膏,稀释使其样品含生
药0098g·mL-1。
精密吸取2mL,置25mL量瓶中,加甲醇至刻
度,用微孔滤膜(045μm)滤过,即得供试品溶液。
精密吸取对照品溶液和供试品溶液各20μL进样,外
标一点法计算,得羌活、独活提取液中蛇床子素和异
欧前胡素的质量浓度分别为0493,0167g·L-1。
2.1.4 线性范围 蛇床子素回归方程 Y=
58474X+63078,r=09991,线性范围85~68mg
·L-1;异欧前胡素回归方程 Y=53267X+14456,
r=09993,线性范围9~72mg·L-1。
2.2 大孔树脂纯化工艺考察
2.2.1 树脂型号的选择 采用静态吸附法,通过测
定吸附残液和解吸液的蛇床子素和异欧前胡素的量
筛选最适树脂。从表1中可以看出,不同型号的树
脂对蛇床子素和异欧前胡素的吸附量差异不显著,
但D101,HPD600和HPD400A对蛇床子素和异欧前
胡素的洗脱率较高,故又考察了三者的动态饱和吸
附量和洗脱率。结果见表2。
表1 8种大孔树脂主要特性和对蛇床子素和异欧前胡素的吸附量(Q)、解吸率(α)
树脂
粒径
/mm
比表面
/m2·g-1
孔径
/nm
Q/mg·g-1
蛇床子素 异欧前胡素
α/%
蛇床子素 异欧前胡素
HPD100 03~125 650~700 9~10 2509 0855 76430 74371
HPD300 03~125 800~870 5~55 2502 0866 76042 75088
HPD400 03~125 500~550 75~8 2489 0865 77647 74864
HPD400A 03~125 550~600 9~10 2507 0859 82621 83410
HPD600 03~125 500~550 10~12 2518 0868 82865 76599
HPD700 03~125 650~700 85~9 2480 0861 63120 58934
AB-8 03~125 480~520 13~14 2473 0856 79085 78660
D101 03~125 420~500 13~14 2503 0859 92125 91622
表2 3种树脂动态饱和吸附量和洗脱率的比较
树脂
Q/mg·g-1
蛇床子素 异欧前胡素
α/%
蛇床子素 异欧前胡素
D101 2786 0938 82767 85585
HPD400A 2792 0940 96416 97998
HPD600 2791 0938 90658 93341
由表2可见,HPD400A对蛇床子素和异欧前胡
素的吸附和洗脱效果最好,故选用之。
2.2.2 上样量的确定 取 20mLHPD400A大孔树
脂装柱(柱径高比为1∶7,15cm×30cm),不断向
树脂柱上样,收集下口流出液每10mL为1份,测定
每份中蛇床子素和异欧前胡素的量。结果见图1。
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1蛇床子素;2异欧前胡素
图1 吸附曲线
图 1表明,HPD400A大孔树脂柱可处理 4BV
0098g生药·mL-1的羌活、独活提取液而无明显
泄漏,达到饱和吸附时可处理6BV提取液,即湿态
HPD400A树脂对羌活、独活提取液中蛇床子素和异
欧前胡素的吸附量为0427,0134g·L-1,达到饱
和时的吸附量为0854,0267g·L-1。
2.2.3 上样液质量浓度对回收率的影响 装4根
HPD-400A大孔树脂柱,树脂体积均为20mL,将
40mL上样液(合392g生药)分别稀释0,15,2,
25倍后上样,用3倍水洗柱后,用4倍95%乙醇洗
脱。测定每份洗脱液中蛇床子素和异欧前胡素的含
量,分别计算蛇床子素和异欧前胡素回收率,回收率
(%)=洗脱液中的量/上样液中的量 ×100%,结果
稀释0,15,2,25倍上样液中的蛇床子素收率分别
为9437%,8959%,8080%,6453%。异欧前胡
素 收 率 分 别 为 9698%,8846%,8374%,
6023%。
上样液质量浓度在稀释15~2倍时,对收率影
响不大,但稀释25倍时,树脂收率下降。故确定上
样液质量浓度范围在:蛇床子素03~04g·L-1、
异欧前胡素008~01g·L-1。
2.2.4 上样液pH对回收率的影响 取6份40mL
上样液(合392g生药)用1mol·L-1盐酸或1mol
·L-1氢氧化钠调pH分别为10,20,35(原液),
50,70,80上样,用3倍水洗柱后,用4倍95%乙
醇洗脱。测定每份洗脱液中蛇床子素和异欧前胡素
的含量,分别计算蛇床子素和异欧前胡素回收率,结
果见表3。
2.2.5 洗脱溶剂的确定 样品溶液 40mL,上
HPD400A20mL的树脂,吸附流速为1BV·h-1,吸
附12h,分别用水,20%,30%,40%,50%,60%,
70%,80%,95%的乙醇进行洗脱,分别收集洗脱液,
表3 上样液浓度对吸附的影响
上样液 蛇床子素收率 异欧前胡素收率
原液 9437 9698
15倍稀释 8959 8846
20倍稀释 8080 8374
25倍稀释 6453 6023
计算洗脱液中蛇床子素和异欧前胡素的回收率,结
果见表4。
表4 上样液pH及洗脱溶剂的确定
条件 考察项目 蛇床子素回收率 异欧前胡素回收率
pH 10 74069 66604
20 83098 73954
35 91463 84600
50 84449 76130
70 85820 77910
80 80971 75661
洗脱溶剂 水 0 0
20%乙醇 0 0
30%乙醇 0 0
40%乙醇 0 0
50%乙醇 1067 0891
60%乙醇 2482 1726
70%乙醇 3668 1134
80%乙醇 4198 4088
95%乙醇 9685 9606
2.2.6 不同径高比对吸附量的影响 分别向径高比
为1∶4,1∶7,1∶10,1∶13的树脂柱上样,树脂体积均为
20mL,上样液40mL,吸附流速为1BV·h-1,吸附12
h,3倍量水洗后,4倍量95%乙醇洗脱。测定洗脱液
中蛇床子素和异欧前胡素量,结果径高比为1∶7时蛇
床子素和异欧前胡素量最高,故选择1∶7。
2.2.7 树脂柱重复使用次数考察 HPD-400A大
孔树脂柱,径高比为1∶7,上样液质量浓度蛇床子素
0493g·L-1,异欧前胡素0167g·L-1,树脂体积
20mL,上样液40mL,4倍量95%乙醇洗脱。洗脱
结束后直接用3倍水洗(不经酸碱再生),进行下次
上样,共反复进行10次上样和洗脱。使用9次后,
蛇床子素和异欧前胡素回收率下降约10%。故在
前面确定的上样量和洗脱条件下,树脂可重复使用
8次。
3 讨论
大孔树脂纯化原理为吸附作用和分子筛,吸附
的产生是由于范德华力或氢键,分子筛作用是由于
其多孔结构,故吸附力较弱,有机溶剂容易洗脱。因
此用水或低体积分数乙醇预洗除杂时应考察其用
量,以免目标成分的损失。实验中发现50%以下的
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乙醇不能将蛇床子素和异欧前胡素洗出,故若需蛇
床子素和异欧前胡素达到较高的聚集程度时,可采
用50%以下的乙醇预洗除杂。本实验中95%乙醇
洗脱下蛇床子素和异欧前胡素的转移率最高,超过
90%,故确定95%乙醇为洗脱剂。且4倍量的95%
乙醇可完全将目标成分洗净,大孔树脂冲洗的较为
干净,有利于树脂的再生及规模化生产。
羌活、独活是中药处方中常用的对药,其主要有
效成分为挥发油和香豆素类成分,其中主要是蛇床
子素和异欧前胡素,与本方功能相关。为最大程度
地保留有效成分并减少服用剂量,以香豆素类成分
蛇床子素和异欧前胡素作为指标,对大孔树脂纯化
工艺进行优选,纯化后蛇床子素和异欧前胡素保留
率分别为 9498%,9101%(n=3);干膏收率从
325%降为53%(n=3)。
适宜的上样量是有效而经济地纯化目标成分的
重要因素,既能保证有效成分不流失,又能保证树脂
不浪费,还可缩短生产周期。实验中确定的上样量
距离泄漏点较远,故树脂柱可重复使用较多次而吸
附力不下降。若确定的上样量距离泄漏点较近,虽
可提高上样量,但树脂重复使用次数可能会下降。
应根据具体情况确定一个平衡点。
树脂纯化的主要步骤为上样、吸附、洗脱,在纯
化过程中还考察不同pH的洗脱液对蛇床子素和异
欧前胡素的影响,结果发现未经调过的洗脱液量最
高。本实验围绕这几个步骤进行了考察,设定的工
艺参数便于实际操作和应用。在用大孔树脂进行其
他中药的纯化时,还应针对具体目标成分的性质进
行其他影响因素的考察,例如温度等,以保证纯化效
果。
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囊中异欧前胡素和蛇床子素的含量[J].中国中药杂志,2004,
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PurificationtechnologyofRhizomaetRadixNotopterygi
andRadixAngelicaePubescentisinFufangXueliandroppingpils
bymacroporousresin
LUOYuqin1,YANGWeijun2,XUJianguo2,XINGJianguo2
(1.XinjiangTechnicalInstituteofPhysicsandChemistry,ChineseAcademyofSciences,Urumqi830011,China;
2.InstituteofMateriaMedicaofXinjiangUiyghurAutonomousRegion,Urumqi830004,China)
[Abstract] Objective:TostudythepurificationtechnologyofRhizomaetRadixNotopterygiandRadixAngelicaePubescentis
inFufangXueliandroppingpilsbymacroporousresin.Method:Takingosthole,isomperatorinasindexingredients,thetypeofresin
samplingamountandelutionsolventweredecided,andtheinfluenceofsampleconcentrationpHofsampleandratioofdiameterto
heightofcolumntoadsorptionwerestudied.Result:HPD400Awaschosentopurify,thesuitablesamplingratioofresinvolumtoraw
materialwas1∶2;pH35(crudedrug)andratioofdiametertoheightwas1∶7;95% ethanoloftheelutionsolventwassatisfactory
eluantfordesorption.Conclusion:HPD400AmacroporousresincanbeusedtopurifyRhizomaetRadixNotopterygiandRadixAngel
icaePubescentis.
[Keywords] FufangXueliandroppingpils;RhizomaetRadixNotopterygi;RadixAngelicaePubescentis;macroporousab
sorptionresin;purification
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