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大赖草基因组DNA提取方法比较分析



全 文 :湖 北 农 业 科 学 2015 年
收稿日期:2015-01-14
基金项目:国家自然科学基金项目(31160134)
作者简介:寇小霞(1991-),女,重庆人,在读本科生,(电话)18290822382(电子信箱)1639877304@qq.com;通信作者,吾买尔夏提·塔汉(1968-),
男(维吾尔族),副教授,硕士生导师,主要从事植物分类、系统与进化方面的研究,(电话)15099187086(电子信箱)omirshat@sina.com。
第 54 卷第 17 期
2015年 9 月
湖北农业科学
Hubei Agricultural Sciences
Vol. 54 No.17
Sep.,2015
大赖草[Leymus racemosus (Lam.) Tzvel]又名
巨大滨草、巨野麦,禾本科多年生根茎型草本。 主要
分布在新疆准噶尔盆地古尔班通古特沙漠沿额尔
齐斯河两岸的沙丘上及俄罗斯东南部的一些沙漠
中[1,2]。大赖草的耐风蚀、耐高温、耐严寒、耐沙埋、抗
旱等较强的沙生适应特性及其强烈的克隆生长能
力和密集的地上、地下构件等特征使其成为一种优
良的固沙植物,对于增加荒漠地表的粗糙度、防风
固沙等方面有重要的生态价值 [3],是保护干旱荒漠
化土地的重要生物屏障。 然而,由于受自然和人类
活动的长期作用,大赖草种群已严重退化成为濒危
物种,迫切需要恢复与重建。 因大赖草穗大、多花、
茎秆强壮,具有抗干旱、寒冷、盐碱和多种病虫害等
特点,国内外不少学者在小麦育种及转基因工作中
大赖草基因组 DNA提取方法比较分析
寇小霞 1a,代培红 1a,罗淑萍 1a,李玮璐 1a,吾买夏提·塔汗 1b,曲云壮 2
(1. 新疆农业大学, a.农学院; b.草业科学与环境学院, 乌鲁木齐 830052;
2.山东省蓬莱市南王街道办事处农业综合服务站,山东 蓬莱 265600)
摘要:为了研究不同提取方法对大赖草[Leymus racemosus (Lam.) Tzvel]基因组 DNA 提取质量的影响,
以大赖草的嫩叶为材料,采用 CTAB 法、CTAB 改良法、SDS 法、SDS-CTAB 法 4 种提取方法提取大赖草叶
片基因组 DNA,对提取的基因组 DNA 进行琼脂糖凝胶电泳及紫外分光光度计法检测,获得最佳大赖草
DNA 提取方法,并利用 ISSR 标记验证其质量。 结果表明,改良的 CTAB 法提取的大赖草基因组 DNA 纯
度较高、完整性较好,ISSR 扩增条带清晰,多态性高。 最终确定 CTAB 改良法为最佳提取方法,完全适合
于进一步的分子生物学研究。
关键词:大赖草[Leymus racemosus (Lam.) Tzvel]; 基因组 DNA;提取方法 ;CTAB 法 ;CTAB 改良法 ;
SDS 法;SDS-CTAB 法
中图分类号:Q78;S543+.9 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2015)17-4324-04
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.17.057
Comparison of Different Extraction Methods of Genomic DNA
in Leymus racemosus(Lam.)Tzvel
KOU Xiao-xia1a,DAI Pei-hong1a,LUO Shu-ping1a,LI Wei-lu1a,OMIRSHAT Tahan1b,QU Yun-zhuang2
(1a. College of Agronomy;1b. College of Pratacultural and Environmental Sciences, Xinjiang Agricultural University, Urumqi 830052, China;
2. Nanwang Streets Office Comprehensive Agricultural Service Station of Shandong Province Penglai City, Penglai 265600, Shandong, China)
Abstract: In order to research the effects of different extraction methods on the quality of genomic DNA in Leymus racemo-
sus (Lam.) Tzvel and select the optimum method, taking leaves as materials, genomic DNA was extracted by four methods
of CTAB,modified CTAB, SDS, and SDS-CTAB, and the quality was tested and verified by agarose gel electrophoresis and
ISSR analysis. The results showed that the DNA extracted by the modified CTAB method had a high quality and purity, and
was not degraded; in addition,the bands amplified by ISSR-PCR were clear and possessed high polymorphism. In conclusion,
the modified CTAB method has the best extraction effect, and could be used for the subsequent molecular biology research.
Key words: Leymus racemosus(Lam.) Tzvel;genomic DNA;CTAB method;modified CTAB method;SDS method;SDS-CTAB
method
第 17 期
对大赖草的优良种质进行了大量的应用[3-7],并将大
赖草列为改良成多年生谷物或饲料候选物种。 刘宇
等 [8]进行了多次野外调查,发现种子的初始萌发时
间长,萌发速率低,虽然穗大、花多,异花受粉且具
有自交不亲和性[9],可以产生种子,但其结实率并不
高,种子产量仅为开花数量的 25%左右,且自然生
境中干旱少雨、水分缺少,导致种子萌发后易“闪
苗”。 这些因素导致大赖草有性繁殖更新率低 [10]。
目前对大赖草进行分子生物学研究的报道较少,
特别是大赖草 DNA 提取相关的研究。基因组 DNA
的提取质量直接影响到后期的分子生物学试验结
果,为使所得的 DNA 纯度高,断裂降解程度小、量
足,在提取时应根据不同研究需要,保证其结构的
相对完整性, 尽量排除其他大分子成分如蛋白质、
多糖等的污染 [11]。 目前植物基因组 DNA 提取常用
的方法有 CTAB 法、SDS 法、SDS-CTAB 法、 高盐低
pH 法等[12-15]。 针对研究目的和试验材料的不同,提
取植物基因组 DNA 的方法侧重点也不同, 各有其
优缺点。 而获取高质量的 DNA是进行限制性酶切、
PCR 扩增、分子杂交、遗传多样性分析以及基因组
学等分子生物学研究的基础。 因此,本研究拟通过
不同的 DNA 提取方法比较, 旨在获得提取质量较
高的大赖草总 DNA 方法, 以期为后续的分子生物
学研究奠定一定的基础。
1 材料与方法
1.1 材料
供试材料大赖草于 2013 年 5 月采自新疆阿尔
泰地区,用硅胶干燥,带回实验室备用。
DNA 抽提缓冲液 : ① CTAB 抽提缓冲液 。
100 mmol / L Tris-HCl(pH 8.0)、20 mmol / L EDTA
(pH 8.0)、350 mmol / L NaCl、2% CTAB 抽提缓冲液、
2% β-巯基乙醇。 ②CTAB 改良法抽提缓冲液。 溶
液Ⅰ:100 mmol / L Tris-HCl(pH 8.0)、2 mmol / L ED-
TA(PH 8.0)、14 mmol / L NaCl、0.35 mmol / L 葡糖糖、
PVP40; 溶液Ⅱ:100 mmol / L Tris-HCl (pH 8.0)、20
mmol / L EDTA (pH 8.0)、1.4 mmol / L NaCl、2%
CTAB、2% PVP40、0.1% VC。 ③SDS 抽提缓冲液 。
100 mmol / L Tris -HCl (pH 8.0)、50 mmol / L EDTA
(PH 8.0)、500 mmol /L NaCl、3% SDS、2% β-巯基乙醇。
④SDS-CTAB抽提缓冲液:100 mmol / L Tris-HCl(pH
8.0)、50 mmol / L EDTA (pH 8.0)、500 mmol / L NaCl、
20% SDS、40% PVP40。
试验所使用的试剂均为国产分析纯。 Taq DNA
聚合酶、Mg2+、dNTP 等均购自北京鼎国昌盛生物技
术有限公司;ISSR 引物选用哥伦比亚大学公布的
UBC815,由上海生工生物技术有限公司合成。
1.2 方法
1.2.1 DNA 提取方法
1)CTAB 法。 称取 0.02 g 干燥的大赖草叶子置
于液氮中速冻, 用研钵磨成细粉。 装入 1.5 mL 的
Eppendorf 管, 迅速加入 700 μL 65 ℃预热的 CTAB
抽提缓冲液,轻轻混匀,于 65 ℃条件下保温 10 min,
4 ℃、12 000 r / min 离心 10 min。 吸取上清液移入到
新的 1.5 mL Eppendorf 管中, 加入等体积的三氯甲
烷 /异戊醇(体积比为 24∶1)混合溶液混匀 2 min,
4 ℃、12 000 r / min 离心 10 min。 重复上一步骤。 之
后,吸取上清液移入到新管中,加入 2 倍体积预冷
的无水乙醇,混匀,于- 20 ℃条件下静置 10 min,4℃、
10 000 r / min 离心 10 min,弃上清。 用 70%乙醇洗涤
沉淀 1 次,待自然风干后,加入 20 μL ddH2O 溶解
DNA,-20 ℃贮存备用。
2)CTAB 改良法。 称取 0.02 g 干燥的大赖草叶
子置于液氮中速冻,用研钵磨成细粉。 装入 1.5 mL
Eppendorf 管, 迅速加入 700 μL 溶液Ⅰ,2%β-巯基
乙醇,剧烈振荡,4 ℃、12 000 r / min离心 10 min。弃上
清液, 迅速加入 700 μL 溶液Ⅱ及 2%β-巯基乙醇,
轻轻混匀,65 ℃水浴 50 min, 期间摇动,4 ℃,12 000
r / min 离心 5 min。 吸取上清液移入到新的 1.5 mL
Eppendorf管中,加入等体积的三氯甲烷 /异戊醇(体
积比为 24∶1)混合溶液和 200 μL 3 mol/L NaAc 溶
液,混匀 2 min,4 ℃、12 000 r / min 离心 5 min。 重复
上一步骤。 吸取上清液移入到新管中, 加入 2 倍
体积预冷的无水乙醇, 混匀, 于-20 ℃条件下静置
20 min,4 ℃、10 000 r / min 离心 15 min,弃上清。 用
500 μL 75%乙醇漂洗沉淀, 短暂离心, 待自然风干
后,加入 20 μL ddH2O溶解 DNA,-20 ℃贮存备用。
3)SDS法。 称取 0.02 g 干燥的大赖草叶子置于
液氮中速冻, 用研钵磨成细粉。 加入 650 μL 预热
65 ℃的 SDS 抽提缓冲液混匀,65 ℃保温 40 min,其
间缓慢颠倒 4 次, 取出, 于-20 ℃条件下静置 10
min,4 ℃、10 000 r / min 离心 10 min。 吸取上清液移
入到新的 1.5 mL Eppendorf 管中, 加入等体积三氯
甲烷 /异戊醇(体积比为 24∶1)混合溶液缓慢颠倒混
匀 2 min,4 ℃、10 000 r / min 离心 10 min。 重复上述
步骤 1 次。 吸取上清液, 加入 2 倍体积无水乙醇,
于-20 ℃条件下静置 20 min,4 ℃、12 000 r / min 离心
10 min,弃上清液。 沉淀用 70%乙醇洗涤 2 次,待自
然风干后,沉淀加 ddH2O溶解,-20 ℃贮存备用。
4)SDS-CTAB 法。 称取 0.02 g 干燥的大赖草叶
子置于液氮中速冻,用研钵磨成细粉。 加入 600 μL
预热 65 ℃的 SDS-CTAB 抽提缓冲液,临时加 80 μL
寇小霞等:大赖草基因组 DNA 提取方法比较分析 4325
湖 北 农 业 科 学 2015 年
20% SDS 以及 150 μL 40% PVP 混匀,65 ℃保温 60
min,其间缓慢颠倒 4 次,然后于-20 ℃条件下静置
10 min,4 ℃、12 000 r / min离心 10 min。吸取上清液,
加入等体积三氯甲烷 /异戊醇(体积比为 24∶1)混合
溶液抽提, 缓慢颠倒混匀至乳状,4 ℃、12 000 r / min
离心 10 min。重复上述步骤 1次。加入 2倍体积无水
乙醇,于-20 ℃条件下静置 20 min,4 ℃、12 000 r / min
离心 10 min,弃上清液。 沉淀用 70%乙醇洗涤 2次,
待自然风干后,加 ddH2O溶解,-20 ℃贮存备用。
1.2.2 DNA 的紫外分光光度法及琼脂糖凝胶电泳
检测 用紫外分光光度计测定 230、260、280 nm 的
吸光度, 根据 OD260 nm/OD280 nm、OD260 nm/OD230 nm的比值
判断纯度。 吸取 4 μL DNA,加 1 μL上样缓冲液,在
1.0%琼脂糖凝胶上进行电泳,电压 80 V,电泳时间
20 min,电泳结果经溴化乙锭染色液染色后,在凝
胶成像系统中观察拍照,检测其完整性。
1.2.3 ISSR-PCR 扩增产物检测 以所选取最佳的
方法提取的 DNA为模板进行 ISSR-PCR检测。 PCR
反应体系为 25 μL, 其中 10×PCR Buffer 2.5 μL,10
mmol / L dNTPs 混合液 0.5 μL,10 mmol / L 引物 0.5
μL,2.5 U Taq DNA 聚合酶 0.5 μL,30 ng /μL DNA
1 μL, ddH2O 20 μL。 扩增程序:94 ℃预变性 5 min;
94 ℃变性 30 s,53 ℃退火 45 s,72 ℃延长 45 s,
35 个循环;72 ℃延伸 7 min;4 ℃保存。 用ISSR引物
UBC815 检验不同 DNA 模板的 PCR 效果,产物在
1.0%琼脂糖凝胶上进行电泳,电泳结果在EB 染色
液中染色,凝胶成像系统中观察。
2 结果与分析
2.1 大赖草 DNA样品的纯度鉴定
使用紫外分光光度计分别测定 260、280、230
nm波长下 4种方法所提 DNA样品的吸光度, 每个
方法获取的样品测 3次值,平均结果见表 1。 从表 1
可以看出, 用 CTAB改良法提取的 DNA纯度较高、
污染度低,为下一步进行大批量提取大赖草基因组
DNA奠定一定的基础。
2.2 大赖草 DNA样品的琼脂糖凝胶电泳结果
图 1 为 4 种方法提取的大赖草 DNA 的琼脂糖
凝胶检测结果。 由图 1可以看出,CTAB改良法提取
的 DNA 亮度均匀一致、条带清晰、整齐、几乎无拖
尾现象, 质量较好;SDS 法与 CTAB 法提取的 DNA
出现降解现象且降解严重;而 SDS-CTAB 法提取的
DNA 条带不明显。 相比较而言,改良的 CTAB 法的
提取效果最好,说明该方法对于大赖草中的多糖和
次生代谢产物去除效果相对其他 3 种方法的效果
较好,所提取 DNA的完整性较好。 对 CTAB 改良法
提取 DNA 的效果进行进一步验证, 结果如图 2 所
示。 由图 2 可知,CTAB 改良法所提取的 24 份大赖
草 DNA 条带整齐、完整、无降解,表明其质量较高,
完全可以满足后续试验需要。
2.3 大赖草 DNA样品的 ISSR扩增反应检测结果
以 CTAB改良法提取的总 DNA为模板,用引物
UBC815进行 ISSR-PCR扩增,进一步验证 CTAB 改
良法所提取 DNA的可靠性,结果如图 3所示。 由图
3 可知,CTAB 改良法提取的总 DNA 的扩增效果图
谱清晰、多态性高。
3 小结与讨论
植物 DNA 的提取方法较多, 基本上是比较成
熟的,但对不同的植物来说,由于其各自的生物化
学成分和结构不同, 在具体操作中存在较大的差
异。 多酚、多糖、蛋白质等物质的含量是 DNA 提取
质量的关键影响因素。 一般来说,CTAB缓冲液比较
适用于草本植物和不含酚类或含酚类较少的植物
表 1 不同方法提取大赖草基因组 DNA 的纯度比较
方法
CTAB 改良法
CTAB 法
SDS 法
SDS-CTAB 法
A260 nm/A280 nm
1.84
1.95
1.98
1.65
A260 nm/A230 nm
2.05
1.90
1.85
1.23
M.DL10 000 DNA Marker;1-2.CTAB 改良法;4-5.CTAB 法;7-
8.SDS 法;10-11.SDS-CTAB 法
图 1 不同方法提取大赖草总 DNA琼脂糖凝胶电泳检测结果
M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
图 2 CTAB 改良法提取的大赖草 DNA 的琼脂糖
凝胶电泳验证结果
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24
图 3 CTAB 改良法获得 DNA 模板的 ISSR-PCR 电泳结果
2 000 bp
1 600 bp
1 000 bp
750 bp
500 bp
250 bp
M 1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 0 11 12 13 14
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第 17 期
DNA提取[15,16]。
本研究根据试验材料大赖草所具有的特性,选
用了 4 种常见的方法提取了基因组 DNA,在试验过
程中为了提高 DNA 的质量,首先,提取前在抽提缓
冲液中加入了 EDTA、PVP40 等能络合多种酚类物
质的试剂,可以防止 DNA 发生褐变;其次,加入了
β-巯基乙醇以降解蛋白质并抑制多种酶的氧化活
性;再次,考虑到细胞裂解的充分性,在水浴的过程
中,将水浴时间延长到了 50 min;此外,利用三氯甲
烷 /异戊醇(体积比为 24∶1)混合溶液抽提时,可根
据大赖草叶子的老与嫩选择抽提的次数,老叶子适
当增加抽提次数。 如果琼脂糖凝胶电泳图谱的点样
孔有残留杂质, 说明该 DNA 样品中含有较多的未
被去除的蛋白质、 多糖及一些其他次生代谢产物,
由于这些物质具有黏连特性, 常与 DNA 结合成复
合物, 使得 DNA 分子无法离开点样孔或电泳速度
较慢。 试验利用 ISSR-PCR 检测 CTAB 改良法提取
的基因组 DNA 质量,发现扩增效果图谱清晰、多态
性高,说明此方法在提取的过程中蛋白质、多糖等
物质除去的较干净,从而提高了对 PCR 反应体系中
TaqDNA聚合酶的活性以及引物结合模板的能力。
综上可知, 采用 CTAB 法、CTAB 改良法、SDS
法、SDS-CTAB 法 4 种方法提取大赖草叶片基因组
DNA 时,以 CTAB 改良法提取的效果最佳,可以满
足后续的分子生物学研究。
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(责任编辑 吕海霞)
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