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Preparation of bio-vanillin with two-step bioconversion by Aspergillus niger CGMCC0774 and Pycnoporus cinnabarinus CGMCC1115

黑曲霉CGMCC0774和朱红密孔菌CGMCC1115两步转化阿魏酸制备生物香兰素



全 文 :黑曲霉 !"#!!!""#和朱红密孔菌 !"#!!$$$%
两步转化阿魏酸制备生物香兰素
郑 璞$,郑丽蓉$,孙志浩$,王明君$,白彦兵%,汪 军%,过鑫富%
!
($ &江南大学 生物工程学院生物催化研究室,工业生物技术教育部重点实验室,无锡 %$’()*;
% &浙江杭州鑫富药业股份有限公司,杭州 )$$)(()
摘 要:在 %+ , 发酵罐中黑曲霉 !"#$%&’(()" *’&$% !"#!!(--’ 转化阿魏酸可生成香草酸 % .%’ / 0 ,,摩尔转化率
*’ .*1;朱红密孔菌 +,-*.#.%)" -’**/0/%’*)" !"#!!$$$+ 转化提取的香草酸可生成香草醛 $ .’+ / 0 ,,摩尔转化率为
-2 .21。将两步微生物转化有机串联,即用黑曲霉转化液加预先培养的朱红密孔菌 +,-*.#.%)" -’**/0/%’*)" !"#3
!!$$$+菌丝体继续转化,可产香草醛 $ .(* / 0 ,,对原料阿魏酸的摩尔转化率 )’ .(1。用米糠提取的天然阿魏酸做
原料,两步串联微生物转化制备的生物香兰素经$)!同位素的分析,符合生物香草素的等同要求。
关键词:阿魏酸;香草酸;香草醛;黑曲霉;朱红密孔菌;微生物转化
中图分类号:45$2 文献标识码:6 文章编号:$*-% 7 )*-5(%((+)() 7 ((*2 7 (+
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\EP>@A
香兰素,即香草醛,是一种以奶油香草为特征的
风味物质,广泛用于冰淇淋、巧克力、乳制甜点、奶油
糖果、焙烤食品、豆奶、可乐饮料和烈酒等食品制造
中,堪称世界上使用最广的增香剂[$]。目前世界香兰
素的年销量超过 $万吨,其中以愈创木酚和木质素为
原料合成的香兰素占主导[%]。从香子兰花荚植物中
! 收稿日期:%((+3(53$+
基金项目:国家十五攻关项目(%((’H-$)(+(5)
作者简介:郑 璞($2**3),女,副教授,主要研究生物催化与生物转化。
%((+ 年 5 月 许松伟等:6,"3B>M%杂化凝胶固定化多酶体系催化 !M%转化甲醇研究 ·*2·
万方数据
提取的天然香兰素,由于香子兰花荚植物的种植受地
域和气候环境的限制,年产量约 !" #,仅占全球销量
的 "$!%,但价格却是化学合成香兰素的 &""倍[&]。
欧洲的立法机构建议在食品中使用天然香草醛
(’()*+,-. /0),102, 33 4 &33 4 5’’,67 87$ 9:3;,!!.< *=
6(., >?33),美国 @/A(5@B!>)规定由天然原料,通过
生物催化法(酶作用)获得的香料属天然的。对天然
香草醛的需求,加速了生物技术生产香草醛的研究,
其中瑞士的奇华顿罗亚有限公司、德国的哈尔曼及
赖默股份有限公司、法国国家农业研究所等研究组
在生物香草醛的制备方法上取得了一定进展[; C D]。
最近法国 BE*<0- 公司推出了微生物转化阿魏酸生
产的“生物香兰素”产品 BE*2-.0F! 8-#()-F。国内江
南大学生物催化研究室于 !""" 年开始开展了两步
微生物转化阿魏酸生产香草醛[G]和大豆粗酶及微生
物转化异丁香酚制备香草醛的研究,其中郑志强等
研究了黑曲霉 !"#$%&’(()" *’&$% 5HI55"GG;(JKL&&)
转化阿魏酸生成香草酸的条件[3],王明君等对朱红
密孔菌 +,-*.#.%)" -’**/0/%’*(M 5HI55>>>N(JK"!"&)
转化香草酸生成香草醛的条件进行了优化[?]。稻米
加工的副产物米糠中含有丰富的阿魏酸[>"],通过微
生物催化水解方法,提取其中天然阿魏酸,作为生产
原料,在发酵罐水平上利用 5HI55"GG; 转化阿魏酸
生成香草酸、5HI55>>>N 转化香草酸生成香草醛及
两步转化的串联进行研究,为国内“生物香兰素”的
工业生产奠定基础。
! 材料与方法
> $> 材 料
阿魏酸、香草酸、香草醛,标准品购于 J0OP- 化
学试剂公司。生物香草醛(BE*2-.0F! 8-#()-F)、BE*L
<0-特纯香草醛购于法国 BE*<0-公司。合成香草酸、
米糠油脚由浙江鑫富生化股份有限公司提供。米糠
市售。天然阿魏酸:米糠饼和米糠油脚,经微生物或
阿魏 酸 酯 酶 等 水 解,得 到 阿 魏 酸 粗 品(含 量
3G $!%)。!N 9 发酵罐:Q9@!! 型,R:7’8H:8’’BL
:8H。>N 9 发 酵 罐:R:7JSAS 5>"L& 型,R$ R)-(.
R0*#,1E :.#,).-#0*.-F。
> $! 微生物菌株
黑曲霉 !"#$%&’(()" *’&$% 5HI55"GG;(JKL&&),朱
红 密 孔 菌 +,-*.#.%)" -’**/0/’*%)" 5HI55>>>N
(JK"!"&),江南大学生物催化研究室选育,均为专
利菌株,保存于中国微生物菌种保藏管理委员会普
通微生物保藏中心。
> $& 培养基及培养条件
斜面培养基:!"%马铃薯浸汁 > """ P9,葡萄糖
!" O,琼脂 !" O,+Q 自然。种子培养基:麦芽糖
!" O 4 9,酒石酸二铵 > $3! O 4 9,TQ!U7; " $! O 4 9,5-5F!
> $&! PO 4 9,IOJ7;·GQ! 7 " $N O 4 9,酵母膏 " $N O 4 9。
黑曲霉 !"#$%&’(()" *’&$% 5HI55"GG; 发酵培养基:同
种子培养基。朱红密孔菌 +,-*.#.%)" -’**/0/%’*)"
5HI55>>>N 发酵培养基:葡萄糖 !" O 4 9,酵母膏 3 O 4
9,TQ! U7; " $! O 4 9,5-5F! > $&! PO 4 9,IOJ7;·GQ! 7
" $N O 4 9,+Q N $"。
> $; 培养与转化方法
>N 9或 !N 9 发酵罐中黑曲霉的培养和对阿魏
酸的转化:装液量 3 9 或 >D 9,罐温 &G V,转速
!"" ) 4 P0.,通 气 量 > 9 4 P0.,接 种 量 >"%,罐 压
" $> IU-。生长约 ;3 E,加入终质量浓度为 > C ; O 4 9
的底物阿魏酸,每 D E 跟踪测定,当香草酸最大时
(;3 C D" E),放罐。(+Q、溶氧等参数为罐上在线显
示)。
!N 9发酵罐中朱红密孔菌的培养和对香草酸的
转化:装液量 >D 9,>"%接种量,温度 &" V,转速 >""
) 4 P0.,发酵阶段通气量 >D 9 4 P0.,培养约 ;3 E,加入
终质量浓度为 ! O 4 9 的底物,同时温度升至 &N V,
通气量降为 N 9 4 P0.,加入底物后 >! E 以 >"%(质量
体积比)加入吸附剂,每 D E 跟踪测定,当香草醛最
大时,放罐。(+Q、溶氧等参数为罐上在线显示)。
> $N 两种微生物的串联转化
黑曲霉转化天然阿魏酸生成的香草酸发酵液过
滤除菌,清液处理后,与培养好朱红密孔菌游离菌丝
体混合,&N V下转化生成香草醛。
> $D 阿魏酸、香草酸和香草醛 QU95测定[>>]
样品进样前用 " $!!!P 的微孔滤膜过滤处理,
滤液立即上 QU95 进行分析,用 5>3 柱(905E)*M+E,)
>"" BUL>3,N!P,>!N W ; PP),检测波长 !3" .P,柱温
&" V,流动相流速为 > P9 4 P0.,由 A、R 两种溶液组
成(A:" $">%的醋酸溶液和 R:甲醇),比例为 G X &,用
外标法进行定量。
> $G 香草醛>&5同位素测定
由中国石化石油勘探开发研究院石油地质研究
所协助测试。
" 结果与讨论
! $> >N 9发酵罐中黑曲霉转化阿魏酸生成香草酸
·G"· 生物加工过程 第 & 卷第 & 期
万方数据
在 !" # 全自动发酵罐中接种黑曲霉 $%&’
$$())* 进行发酵。由图 ! 可见,接种发酵 !( +,溶
氧下降到 ,(-,生物量快速增加;菌体生长 ** + 时,
加入 !( . / # 的无菌阿魏酸钠盐溶液 ! #。同时发酵
01逐步下降,当 *2 + 时溶氧接近 3(-,菌体生长进
入稳定期。此时加入底物进行转化的初期(( 4 2 +)
菌体耗氧较少,表明菌体对底物有一个适应的过程,
随着转化的进行,香草酸的生成,溶氧也不断下降,
表明黑曲霉对阿魏酸的转化过程是一个需氧过程。
转化阶段,01维持在 * 5( 4 * 5" 间,菌体量基本保持
稳定。取样观察,菌丝球形态未发生改变,但颜色由
嫩黄变为白色,转化液清亮并可闻到香草酸特有的
气味。发酵罐中菌体的生长与对底物的转化速度都
优于摇瓶水平(表 !)。转化 6* + 时,阿魏酸基本耗
尽,香草酸浓度为 ( 5"! . / #,相应的摩尔转化率为
26 56-,菌体生物量(菌体干重)可达到 * 52 . / #。
—!—生物量;—"—01;—#—溶氧;
—$—阿魏酸;—%—香草酸
图 ! 黑曲霉 $%&$$())* 发酵转化过程
78. 5! 79:;9<=>=8?< ><@ A?A8@ GH !"#$%&’(()"
*’&$% $%&$$())*
表 ! 摇瓶与 !" #发酵罐产香草酸情况比较
I>GF9 ! $?;0>:8C?< ?D B><8FF8A >A8@ H89F@ G9=J99< DF>CK ><@ !" #
D9:;9<=>=8?<
3"( ;#三角摇瓶 !" #发酵罐
生物量(干重)/(. / #) * 53 * 52
香草酸 /(. / F) ( 5*"" ( 5"(,
摩尔转化率 / - ") 52! 26 563
发酵转化周期 / + L, )2
3 53 3" # 发酵罐中黑曲霉对高底物质量浓度的转

虽然黑曲霉 $%&$$())* 菌株在 !" # 发酵罐中
对阿魏酸的摩尔转化率可达 26 56-,但产物香草酸
含量较低,为 ( 5"( . / #。若发酵液作为含香草酸溶
液直接用于朱红密孔菌 $%&$$!!!" 生产香草醛,则
$%&$$!!!" 转化底物香草酸的质量浓度过低。研
究表明 $%&$$!!!" 转化较佳香草酸的质量浓度在
! 4 3 . / #[L],本文对提高黑曲霉转化底物的质量浓
度进行试验。将阿魏酸质量浓度提高到 * . / #,分别
采用直接添加和一次补加方法,在 3" # 发酵罐上进
行比较。M:在菌体生长进入稳定期后,加入 ,* . 阿
魏酸调成的无菌阿魏酸钠盐溶液 ! #(测得底物终质
量浓度 6 56 . / #);N:在菌体生长进入稳定期后,先
加入 6, . 阿魏酸调成的无菌阿魏酸钠盐溶液 ! #
(测得质量浓度 3 5( . / #),转化 6, + 后,再一次性补
加66 .阿魏酸调成的无菌阿魏酸钠盐溶液 ! #。用
1O#$跟踪测定的两种条件下的底物和产物质量浓
度(图 3’M和 3’N)。M条件下,与图 ! 相比提高底物
浓度,转化到 ,( + 时,产物达到高峰,香草酸
! 5"" . / #,摩尔转化率 "*-,继续转化时,产物反而
快速降解,与图 3’N 相比,一次加入过多的底物,转
化前期(( 4 6, +)底物消耗速度减慢,说明高底物质
量浓度对转化存在抑制作用。通过底物两次补加,
虽然转化时间有所延长,但可部分解除抑制作用,转
化 )3 + 时,香草酸质量浓度为 3 53* . / #,摩尔转化率
,* 5,-,此时转化液中阿魏酸含量接近于零。
—$—阿魏酸;—%—香草酸;—&—摩尔转化率
图 3’M 3" #发酵罐中高底物质量浓度的转化时间曲线
78. 53’M I8;9 A?E:C9C ?D B><8FF8A >A8@ D?:;>=8?< J8=+ +8.+ CEG’
C=>=8?< 8< 3" # D9:;9<=>=8?<
3 56 3" # 发酵罐中朱红密孔菌转化香草酸生产香
草醛
3((" 年 2 月 郑 璞等:黑曲霉 $%&$$())* 和朱红密孔菌 $%&$$!!!" 两步转化阿魏酸制备生物香兰素 ·)!·
万方数据
朱红密孔菌属白腐真菌,其生产香草醛的过程
可分生长和转化两个阶段。生长阶段的目的是获得
最大量的有最佳转化香草酸能力的菌体。当加入底
物香草酸后即进入转化阶段。朱红密孔菌 !"#$
!!%%%& 在发酵罐中培养,当转速过慢时菌丝体会结
为棉花状粘于罐壁上,过快会把菌体打得太碎,选择
转速 %’’ ( ) *+,,在温度、种量、培养基确定的情况
下,通气量是影响发酵的主要因素之一。分别按通
气比 % - ’ .&,% - ’ ./,% - % 在 0& 1 发酵罐中培养菌体,
将生长好的菌液转到摇瓶中于摇床上进行香草酸的
转化,同时以摇瓶生长的菌体为对照,进行转化香草
酸的能力比较(表 0)。
—!—阿魏酸;—"—香草酸;—#—摩尔转化率
图 0$2 0& 1发酵罐中流加底物的转化时间曲线
3+4 .0$2 5+*6 789(:6: 8; <=,+>>+7 =7+? ;8(*=@+8, A+@B :9C:@=,76
:9DD>6*6,@6? +, 0& 1 ;6(*6,@=@+8,
表 0 不同生长通气比对朱红菌生产香草醛的影响
5=C>6 0 E;;67@ 8; <=(+89: =6(=@+8, (=@6: 8, <=,+>>+, F+6>?
与摇瓶对照比 生长通气比
产物质量浓度 )
(4 ) 1)
摩尔转化率 )
G
HIG
% - ’ .& ’ .//0 ’ .J/H
摇瓶对照 % .%%’ ’ .K%0
H0G
% - ’ ./ ’ ./HL ’ .J/0
摇瓶对照 % .0%’ ’ .KKI
IKG
% - % % .’’J ’ .&&&
摇瓶对照 % .’JK ’ .&H/
生长阶段 !"#!!%%%& 对氧的要求较高,加底物
进入转化阶段后,由于从香草酸到香草醛是还原的
过程,通气比需减小。转化阶段选择通气比 % - ’ .L
与 % - ’ .&(通气量分别为 & 1 ) *+,、/ 1 ) *+,)进行比
较,结果产香草醛分别达到 % .JJ 4 ) 1 和 % .LJ 4 ) 1。
可见减小通气比有利于转化。但因朱红密孔菌的代
谢途径还存在香草醛与香草醇间转换反应[%0],通气
量也不能过小,以免香草醛的进一步还原。在摇瓶
试验中则要控制装液量[%0]。
确定生长和转化两阶段的通气量后,按 % .J 方
法试验朱红密孔菌 !"#!!%%%& 在 0& 1 发酵罐中转
化香草酸生产香草醛,发酵转化过程如图 L,转化 &’
M K’ B 时,香草醛达 % .J& 4 ) 1,摩尔转化率为
HI .IG。
—$—生物量;—%—DN;—"—香草酸;—&—香草醛
图 L 朱红密孔菌 !"#!!%%%& 发酵转化过程
3+4 .L 36(*6,@=@+8, =,? 78,<6(:+8, 8; <=,+>>+7 =7+? CF !"#$%&%’()
#*$$+,+’*$() !"#!!%%%&
0 .J 黑曲霉 !"#!!’HHJ 和朱红密孔菌 !"#!!%%%&
串联转化阿魏酸生产香草醛
朱红密孔菌自身具有代谢阿魏酸生成少量香草
醛和香草酸的能力,同时还存在代谢阿魏酸的其它
途径,如其漆酶可作用阿魏酸生产二聚体等,发酵液
成分复杂[%L]。先采用黑曲霉将阿魏酸转化为香草
酸,再利用朱红密孔菌代谢香草酸的能力,可减少转
化液中的成分,提高产物香草醛的产量,并且产物易
于提取。实验中将两步微生物转化有机的串联,既
可省去了香草酸的提取过程,缩短整个转化的周期,
又可减少香草酸在提取过程的损失。
取黑曲霉 !"#!!’HHJ 发酵转化 J/ B 的过滤液,
其含香草酸质量浓度为 % .IK’ 4 ) 1,残留的阿魏酸质
量浓度为’ ./IH 4 ) 1,经调 DN& .’,补加终质量浓度为
& .’ 4 ) 1 的葡萄糖灭菌后,接入 %’G的培养 J/ B 的
朱红密孔菌菌丝体进行串联转化,其转化时间曲线
如图 J,当转化 &K B 时,产香兰素最高为 % .% 4 ) 1,对
香草酸摩尔转化率 K’ .%G,对阿魏酸的摩尔转化率
达 LJ .’%G。香兰素的产量略低于分步转化,其原
因可能是黑曲霉发酵转化液中阿魏酸残留的过多。
按文献[I]的方法对转化液中的香草醛提取,所
得香草醛样品的含量由 NO1! 测定为 I/ .’G,进行
%L!同位素测定,其碳%L! ) %0!比率明显不同于愈创木
酚原料化学合成的香草醛,与 PB8<=,+>’ Q=@9(=>(天
然等同)一致(表 L)。经%L ! 同位素的分析结果表
明:将米糠饼和米糠油脚经微生物催化水解得到的
·H0· 生物加工过程 第 L 卷第 L 期
万方数据
阿魏酸作为原料制备的香草醛,符合生物香兰素的
等同要求。
—!—香草醛;—"—香草酸;—#—阿魏酸;
—$—对香草酸转化;—%—对阿魏酸转化
图 ! 朱红密孔菌对黑曲霉发酵转化液的转化过程
"#$ %! &#’( )*+,-( *. /01#22#1 "*,’03#*1 .,*’ 2#4+#5 *. /01#22#) 0)#5
6#37 !"#$%&’(()" *’&$% 89 +,-*.#.%)" -’**/0/%’*)"
表 : 香兰素同位素;:<特征
&082( : &7( ;:< #-*3*=( )70,0)3(,#-3#) *. *. /0,#*+- /01#22#1
种类 ;:<
合成香兰素(愈创木酚原料)[;!] >?@ %AA
B7*5#0特纯香兰素 >:@ %C@
B7*/01#2& D03+,02(天然等同)B7*5#0 >:@ %@C
本课题以天然米糠阿魏酸前体研制香兰素 >:@ %;;
! 结论
由农副产品加工副产物米糠中提取的阿魏酸为
起始原料,在 ?E F发酵罐中进行黑曲霉 转化生成香草酸的试验,采用补加底物的方式进行
转化。C? 7香草酸质量浓度达到 ? %?! $ J F,摩尔转
化率为 @! %@K。在 ?E F 发酵罐中进行了朱红密孔
菌培养试验,控制培养阶段高通气量转化阶段低通
气量有利于产物的生成,最高香草醛达到 ; %!E $ J F,
摩尔转化率达到 CL %@ K。
由黑曲霉转化生成的香草酸溶液经过处理,与
朱红密孔菌的游离菌丝体混合,进行转化香草醛的
反应,两步微生物转化的有机结合,香草醛的质量浓
度达到 ; %; $ J F,对原料阿魏酸的摩尔转化率为
:! %I;K。本研究应用生物转化可再生植物资源技
术生产香草醛,不用苯基石化原料,简化操作步骤,
减少了原材料和溶剂的消耗,生产香草醛的过程对
环境友好。
参考文献:
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