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过量表达GLOase导致转基因拟南芥中维生素C含量和抗逆能力提高



全 文 :植物生理学报 Plant Physiology Journal 2011, 47 (6): 551~556 551
收稿 2010-12-04  修定 2011-02-07
资助 国家重点基础研究发展计划(973)项目(2007CB108805)。
* 通讯作者(E-mail: kxtang1@yahoo.com; Tel: 021-65643552)。
过量表达GLOase导致转基因拟南芥中维生素C含量和抗逆能力提高
李坤岚1, 郭新波1, 康以萌1, 孙小芬1, 唐克轩1,2,*
1复旦大学生命科学学院遗传工程国家重点实验室, 复旦-交大-诺丁汉植物生物技术研发中心, 上海200433; 2上海交通大学
农业与生物学院植物生物研究中心, 上海200240
摘要: L-古洛糖酸-1,4-内酯氧化酶(L-gulono-1,4-lactone oxidase, GLOase)是维生素C合成途径中最后一步关键酶, 小鼠(Mus
musculus)编码GLOase的gulo基因转化拟南芥(Arabidopsis thaliana)的转基因株系中维生素C含量最高为5.74 µmol·g-1 (FW),
是野生型的3.46倍、转p2301空载体对照的3.19倍。30%聚乙二醇(PEG-6000)模拟干旱胁迫的不同时间梯度中, 幼苗期转基
因拟南芥丙二醛含量低于同样处理下野生型和对照组拟南芥。不同NaCl浓度的盐胁迫下, 转基因拟南芥在子叶期比野生
型、对照组平均根长更长、侧根发育更好; 幼苗期莲座叶长势更好、丙二醛含量更低。结果显示过量表达GLOase的转基
因拟南芥在维生素C含量提高的同时, 抗胁迫能力有所增强。
关键词: 维生素C; 拟南芥; L-古洛糖酸-1,4-内酯氧化酶; 干旱胁迫; 盐胁迫
Increase of Vitamin C Level and Stress Tolerance of Transgenic Arabidopsis
thaliana Overexpressing GLOase
LI Kun-Lan1, GUO Xin-Bo1, KANG Yi-Meng1, SUN Xiao-Fen1, TANG Ke-Xuan1,2,*
1State Key Laboratory of Genetic Engineering, School of Life Sciences, Fudan-SJTU-Nottingham Plant Biotechnology R&D Cen-
ter, Fudan University, Shanghai 200433, China; 2Plant Biotechnology Research Center, School of Agriculture and Biology, Shang-
hai Jiao Tong University, Shanghai 200240, China
Abstract: L-gulono-1,4-lactone oxidase (GLOase) was the last key enzyme in native vitamin C synthesis. Gulo
which encoded GLOase in mice (Mus musculus) was transformed into Arabidopsis thaliana. Transgenic A.
thaliana overexpressing GLOase accumulated vitamin C which was 3.46-fold of WT and 3.19-fold of p2301
blank transformed control. During 30% PEG-6000 mocked drought stress, lower malondialdehyde (MDA) con-
tent was witnessed in young transgenic A. thaliana plants, which was a demonstration of better anti-drought
ability. NaCl salt stress assay showed the enhanced salt tolerance of transgenic A. thaliana plants concerning
root development and MDA level. The results indicated that overexpressing GLOase increased vitamin C level
and stress tolerance of transgenic A. thaliana plants.
Key words: vitamin C; Arabidopsis thaliana; L-gulono-1,4-lactone oxidase; drought stress; salt stress
维生素C (L-ascorbic acid, AsA)是植物抗氧化
系统中非酶抗氧化物质的重要成员之一。它协同
相关作用酶清除植物在正常生理状态、干旱、盐
渍等逆境胁迫中产生的活性氧(reactive oxygen
species, ROS), 保护机体免受氧化损伤(Conklin和
Barth 2004; Pavet等2005)。人类及部分动物由于
自身缺乏有活性的L-古洛糖酸-1,4-内酯氧化酶(L-
gulono-1,4-lactone oxidase, GLOase, EC 1.1.3.8), 无
法正常合成维生素C, 必须通过日常饮食补充
(Chatterjee 1973; Roig等1993; Nishikimi和Yagi
1994; Inai等2003)。研究高等植物维生素C的合成
与代谢对提高植物的特殊营养品质和抵御胁迫能
力, 均具有重要意义。
前人研究表明过量表达维生素C代谢途径的
关键酶, 能提高拟南芥、生菜、烟草等植物的维
生素C含量。1963年, Loewus提出植物中存在维生
素C合成的古洛糖途径。GLOase是古洛糖途径中
最后一步关键酶, 催化L-古洛糖酸-1,4-内酯(L-gu-
lono-1,4-lactone, GulL)转变为维生素C。Jain和
Nessler (2000)用大鼠(Rattus norvegicus) gulo基因
研究报告 Original Papers
植物生理学报552
转化烟草(Nicotiana tabacum)和生菜(Lactuca sati-
va), 获得比未转化组高达4倍和7倍的转基因植
株。大鼠(R. norvegicus)的GLOase在拟南芥中异源
表达能恢复拟南芥v t c突变体中维生素C含量
(Radzio等2003); 在马铃薯(Solanum tuberosum)中
异源表达不仅能将维生素C含量提高到转化前的
1.41倍, 还能提高抵抗如NaCl、甘露醇等非生物胁
迫的能力(Hemavathi等2010)。但用小鼠(Mus mus-
culus) GLOase转化拟南芥及获得转基因植株的抗
逆能力至今未见报道。
本研究以小鼠gulo基因转化拟南芥 , 结合
HPLC、Real-Time PCR分析转基因拟南芥的维生
素C含量及gulo基因表达水平, 并通过聚乙二醇
(PEG-6000)模拟干旱胁迫和NaCl盐胁迫处理, 从
拟南芥子叶期、幼苗期的根长、膜脂过氧化损伤
指标丙二醛(malondialdehyde, MDA)含量的变化入
手, 探讨转基因拟南芥的抗逆能力。
材料与方法
1 实验材料
野生型拟南芥(Arabidopsis thaliana) 为Co-
lombia生态型, 转空质粒对照拟南芥为本实验室提
供。大肠杆菌DH5α、根癌农杆菌EHA105为本实
验室提供。带MYC标签的p2301-myc为本实验室
保存, 用于gulo基因的植物表达载体构建。限制性
内切酶和T4 DNA 连接酶购自NEB公司, PCR DNA
聚合酶、RT-PCR试剂盒、荧光定量PCR试剂盒购
自宝生物公司(TaKaRa), RNA抽提采用华舜柱离
心式小量总RNA抽提试剂盒。
动物材料为小鼠(Mus musculus)品系C57BL/6,
由本实验室提供。采用华舜柱离心式小量总RNA
抽提试剂盒抽提小鼠肝脏总RNA。参考已经Gen-
bank公布的小鼠L-古洛糖酸-1,4-内酯氧化酶(Gene
登录号为20380022)编码区序列, 设计引物Gulo_F
(5 ATACTAGTATGGTCCATGGGTACAAAGGGG
3, 下划线部分为SpeI酶切位点)和Gulo_R (5 TTG-
GATCCGTAGAAAACCTTTTCCA 3, 下划线部分
为BamHI酶切位点)。
2 实验方法
2.1 转基因拟南芥的获得及分子检测
gulo基因编码区序列的RT-PCR克隆采用Ta-
KaRa One Step RNA PCR Kit (AMV)试剂盒, 体系
按照说明书配制。反应条件: 50 ℃ 30 min, 94 ℃ 2
min; 94 ℃ 30 s, 56 ℃ 30 s, 72 ℃ 90 s, 32个循环;
72 ℃ 7 min。克隆产物连入pMD18-T simple载体
测序。测序正确的质粒经SpeI/BamHI双酶切, 回收
1 323 bp gulo基因片段, 插入经同样双酶切的载体
p2301-myc。
采用EHA105农杆菌介导的浸花法(Zhang等
2006)转化拟南芥, 子代种子经过75%和95%酒精
分别表面消毒5 min后无菌水洗3次, 均匀铺在含
100 mg·L-1卡那霉素的1/2MS固体培养基上。4 ℃
春化3 d, 置于光周期为16 h /8 h、光照强度为75
μmol·m-2·s-1、温度为(24±1) ℃的状态下萌发, 约1
周后移栽至蛭石:草炭:珍珠岩体积比为9:3:1的营
养土中。植物基因组DNA的提取和转基因植株的
PCR鉴定时, 取0.1 g拟南芥叶片, 置于液氮中速冻,
采用CTAB法提取叶片核基因组DNA。取1 μL提
取的基因组DNA做为模板, 用前述gulo基因特异引
物Gulo_F和Gulo_R进行PCR检测。PCR条件为:
94 ℃ 5 min; 94 ℃ 40 s, 55 ℃ 40 s, 72 ℃ 90 s, 30个
循环; 72 ℃ 10 min。逐代筛选直至获得纯系。
植物叶片蛋白提取采用液氮速冻后加入5%
(W/V) SDS研磨, 沸水浴5 min, 11 000×g离心10 min
后取上清。SDS-PAGE、Western Blot步骤参照
《分子克隆试验指南》(第3版)。碱性磷酸酶标记
的羊抗鼠免疫球蛋白、鼠抗MYC蛋白单克隆抗体
购自Santa Cruz公司。PVDF膜购自Millipore公司,
检测底物的Western Blue Stabilized Substrate for
Alkaline Phosphatase购自Promega公司。
用华舜公司植物总RNA小型抽提试剂盒提取
拟南芥RNA。TaKaRa公司 Prime Script RT Re-
agent Kit试剂盒反转为cDNA。体系参照说明书,
反应程序为37 ℃ 15 min, 85 ℃ 5 s。采用TaKaRa
公司SYBR Premix Ex Taq (Perfect Real Time, Lot:
BKA504) 试剂盒, Bio-Rad公司i-Cycler定量PCR仪
分析不同株系中gulo基因表达水平, 用2-ΔΔCt分析相
对表达量的差别。定量PCR引物分别为Gulo-F (5′
TGGGACTATGCCATTGGGTTCTA 3′)和Gulo-R
(5′ GCAGTTGAACAGCCAGAAG 3′)。以泛素基
因作为内参, 引物分别为Ubiquitin_F (5′ TGCGC-
TGCCAGATAATACACTATT 3′)和Ubiquitin_R (5′
TGCTGCCCAACATCAGGTT 3′)。 以10倍为梯度
稀释模板cDNA, 摸索实时定量 PCR适合的模板浓
李坤岚等: 过量表达GLOase导致转基因拟南芥中维生素C含量和抗逆能力提高 553
度, 并最终以1/10原液浓度的cDNA作为模板, 做3
次平行。体系参照说明书, 反应程序为95 ℃ 30 s,
95 ℃ 5 s, 60 ℃ 30 s, 循环40次。
2.2 胁迫处理
子叶期盐胁迫处理方法如下。将拟南芥种子
播种于含0、50、100、150和200 mmol·L-1 NaCl的
1/2MS培养基中。萌发8 d后每株系每浓度随机挑
选6株拟南芥拍照并用精确到0.5 mm钢尺测量根
部长度, 再过6 d后每株系每浓度随机挑选6株拍照
纪录其侧根发育情况。
幼苗期盐胁迫处理方法如下。将拟南芥移栽
到土壤中并正常灌溉2周后, 用0、50、100、150
和200 mmol·L-1 NaCl 水溶液每4 d浇灌1次, 处理2
周后拍照, 并测定MDA含量。
聚乙二醇(PEG-6000, 北京鼎国)模拟干旱胁
迫方法如下。拟南芥移栽到土壤中4周后, 用30%
的PEG-6000水溶液分别处理0、90和120 min, 测
定MDA含量。
2.3 指标测定
用日立公司Hitachi L-2000高效液相色谱仪测
定维生素C含量, 色谱柱symmetry shield RP18柱(5
μm, 150×4.6 mm)。流动相为甲醇:0.1%草酸=5:95,
检测波长为245 nm, 柱温为30 ℃ , 流速为1.0
mL·min-1, 外标法定量, 保留时间为2.44 min。生长
4周, 取0.01 g新鲜叶片用液氮充分研磨后, 用1 mL
0.1% (W/V)草酸悬浮, 4 ℃保存1 h以上。超声处理
30 min, 破碎细胞。11 000×g离心10 min, 取上清,
过0.2 μm水性滤膜, 3次重复。
MDA含量测定按照硫代巴比妥酸法(李合生
2000; Verma和Dubey 2003), 略有改动。取单位
重量拟南芥叶片, 加入4倍体积0.25%硫代巴比妥
酸(溶于10%三氯乙酸)溶液后充分研磨, 于95 ℃
水浴加热30 min, 冰浴快速冷却, 11 000×g离心10
min, 取上清液测定OD532、OD600和OD450。按照
下列公式计算MDA浓度, 并换算成单位鲜重叶片
的MDA含量: MDA (μmol·L-1)=6.45(OD532–OD600) –
0.56OD450。
结果与讨论
1 gulo基因的克隆
抽提经饥饿处理的小鼠C57肝脏总RNA (图
1-A), 采用Gulo_F和Gulo_R引物对总RNA进行RT-
PCR, 获得1 323 bp gulo基因片段(图1-B)。将gulo
插入p2301-myc构建植物表达载体(图2)。
图2 gulo表达框
Fig.2 Expression box of gulo
图1 gulo基因的分子克隆
Fig.1 Molecular clone of gulo
A: 小鼠肝脏总RNA提取; B: RT-PCR克隆gulo基因; M: DNA
分子量标准, 条带由大到小分别是2 000、1 000、750、500、250
和100 bp。
2 转基因拟南芥PCR和Western Blot鉴定
用农杆菌EHA105介导的浸花法转化拟南芥,
共获得21个独立转化株系。PCR检测21个转基因
株系植株总DNA, 均扩增出与目标片段大小一致
的条带(图3), 表明外源基因gulo成功整合到拟南芥
基因组中。对21个株系拟南芥Western Blot分析表
明, 带MYC标记的GLOase蛋白在11个株系中有不
同丰度的表达(图4)。其中gulo-12和gulo-21获得纯
系, 用于后续分析。
3 gulo基因表达量与维生素C含量分析
过量表达gulo基因拟南芥株系中, 最高为gu-
lo-21, 其维生素C含量达到5.74 µmol·g-1 (FW), 是野
生型(WT)的3.46倍, 空质粒转化对照组(CK)的3.19
倍(图5)。株系gulo-21与gulo-12相比, 维生素C含
量前者为后者的2.27倍, gulo转录水平前者为后者
的18.4倍。
植物生理学报554
4 转基因拟南芥抗逆性分析
4.1 抗盐能力
拟南芥种子分别在含0、50、100、150和200
mmol·L-1 NaCl的1/2MS培养基中萌发8 d后, 转gulo
基因的拟南芥株系平均根长长于WT和对照; 同一
处理浓度下WT与对照根长的差异未达到显著水
平。在50 mmol·L-1 NaCl浓度下, 转gulo基因的拟
南芥株系的平均根长显著高于WT (P<0.05); 维生
素C含量更高的株系gulo-21根长长于gulo-12, 暗示
维生素C含量的提高有助于拟南芥子叶期抗盐能
力的增强。100 mmol·L-1 NaCl浓度下, 维生素C含
量最高的gulo-21相比WT表现出极显著的根长优
势(P<0.01); 而维生素C含量仅为WT 1.52倍的gulo-
12无法有效耐受盐胁迫, 根长与WT差异未达显著
水平。150 mmol·L-1 NaCl浓度下, 4种基因型拟南
芥根长趋于一致, 表明该浓度超出了转基因拟南
芥可调节的范围(图6)。在200 mmol·L-1 NaCl的
1/2MS培养基上, 4种基因型拟南芥均发黄死亡, 表
明200 mmol·L-1 NaCl为拟南芥萌发的致死盐浓度
(图未显示)。在萌发14 d时, 侧根生长形态出现明
显差异。WT、对照拟南芥侧根数量、长度明显
低于gulo-12和gulo-21 (图7)。总之, 提高维生素C
含量能够增强拟南芥子叶期对盐胁迫的耐性。
幼苗期拟南芥在各浓度NaCl浇灌下, 维生素C
含量更高的gulo-21组叶片生长状态优于gulo-12
组, 后者优于WT、对照, 具体表现在相同盐浓度
处理下高维生素C含量组叶片更绿、莲座叶叶面
图3 转基因拟南芥PCR鉴定
Fig.3 PCR identification of transgenic Arabidopsis plant
PCR 检测转基因拟南芥T1代植株gulo基因转入情况。M:
DNA分子量标准, 为Takara公司DL2000。WT: 野生型; C+: 质粒
p2301-gulo ; 1~21: 1~21株系。
图4 Western Blot检测GLOase表达情况
Fig.4 Western Blot of GLOase
转基因拟南芥T1代1~21号植株Western Blot检测GLOase蛋白
表达情况。M: 蛋白分子量标准, 为NEB Prestain Marker, 条带由大
到小分别为175、80、58、46 kDa。2、3、9~13、15、16、20、
21为阳性; WT为野生型, CK为转p2301空载体对照。
图5 拟南芥维生素C含量及gulo相对转录水平
Fig.5 Vitamin C level and relative gulo
transcript level of Arabidopsis
图6 盐胁迫下拟南芥根长
Fig.6 Root length of Arabidopsis under salt stress
*和**分别代表同浓度NaCl处理后各株系根长在P<0.05和
P<0.01水平有显著差异。
李坤岚等: 过量表达GLOase导致转基因拟南芥中维生素C含量和抗逆能力提高 555
图7 盐胁迫下拟南芥侧根形态
Fig.7 Lateral roots of Arabidopsis under salt stress
图8 盐胁迫下拟南芥叶片形态
Fig.8 Leaves of Arabidopsis under salt stress
积更大、枯黄坏死现象更少(图8), MDA含量更低
(图9), 表明提高维生素C含量有助于增强拟南芥子
叶期对盐胁迫的耐性。
4.2 抗干旱能力
30% PEG-6000模拟的干旱条件下, 随着时间
的推移, WT、对照拟南芥叶片中MDA含量增加量
大于转基因组拟南芥gulo-12和gulo-21。其中, 高
维生素C含量组gulo-21在各取样时间的MDA含量
均为最低(图10)。由此可见, 维生素C水平的提高
有助于增强拟南芥的耐旱性。
本实验初步探讨了过量表达GLOase对拟南
芥维生素C含量的影响及其对增强拟南芥抗逆能
图9 拟南芥幼苗期盐胁迫下MDA含量
Fig.9 MDA level of Arabidopsis under salt stress
力的作用。我们的研究结果表明, 过量表达GLOa-
se的拟南芥维生素C含量最高为野生型的3.46倍、
转化空载体对照的3.19倍。NaCl模拟盐胁迫实验
图10 30% PEG-6000处理下拟南芥MDA含量
Fig.10 MDA level of Arabidopsis under 30% PEG-6000
植物生理学报556
中, 子叶期的转基因拟南芥相比于对照平均根长
更长, 侧根发育更充分; 幼苗期的转基因拟南芥莲
座叶显著优于对照, 并且叶片所含MDA含量更低,
暗示了转基因拟南芥的耐盐性有所提高。用30%
PEG-6000模拟干旱胁迫, 不同时间梯度下转基因
拟南芥MDA含量低于同样处理下野生型拟南芥。
这表明着转基因拟南芥随着维生素C含量提高抗
干旱能力得到增强。在上述两组环境胁迫实验中,
通过比较过量表达GLOase的不同转基因株系gulo-
12和gulo-21可以发现, 随着维生素C含量的提高拟
南芥抗胁迫的能力进一步得到了改善。因此, 过
量表达GLOase对提高拟南芥的维生素C含量和抗
胁迫能力有一定的参考价值。
参考文献
李合生(2000). 植物生理生化实验原理和技术. 北京: 高等教育出
版社, 260~261
Chatterjee IB (1973). Evolution and the biosynthesis of ascorbic acid.
Science, 182: 1271~1272
Conklin PL, Barth C (2004). Ascorbic acid, a familiar small molecule
intertwined in the response of plants to ozone, pathogens, and
the onset of senescence. Plant Cell Environ, 27: 959~970
Hemavathi, Upadhyaya CP, Akula N, Young KE, Chun SC, Kim
DH, Park SW (2010). Enhanced ascorbic acid accumulation in
transgenic potato confers tolerance to various abiotic stresses.
Biotechnol Lett, 32: 321~330
Inai Y, Ohta Y, Nishikimi M (2003). The whole structure of the human
nonfunctional L-gulono-gamma-lactone oxidase gene - the gene
responsible for scurvy and the evolution of repetitive sequences
thereon. J Nutr Sci Vitaminol, 49: 315~319
Jain AK, Nessler CL (2000). Metabolic engineering of an alternative
pathway for ascorbic acid biosynthesis in plants. Mol Breeding, 6:
73~78
Loewus FA (1963). Tracer studies on ascorbic acid formation in
plants. Phytochemistry, 2: 109~128
Nishikimi M, Yagi K (1991). Molecular basis for the deficiency in hu-
mans of gulonolactone oxidase, a key enzyme for ascorbic acid
biosynthesis. Am J Clin Nutr, 54: 1203~1208
Pavet V, Olmos E, Kiddle G, Mowla S, Kumar S, Antoniw J, Alvarez
ME, Foyer CH (2005). Ascorbic acid deficiency activates cell
death and disease resistance responses in Arabidopsis. Plant
Physiol, 139 (3): 1291~1303
Radzio JA, Lorence A, Chevone BI, Nessler C (2003). L-Gulono-1,4-
lactone oxidase expression rescues vitamin C-deficient Arabi-
dopsis (vtc) mutants. Plant Mol Biol, 53: 837~844
Roig MG, Rivera ZS, Kennedy JF (1993). L-Ascorbic acid: an over-
view. Int J Food Sci Nutr, 44: 59~72
Verma S, Dubey RS (2003). Lead toxicity induces lipid peroxidation
and alters the activities of antioxidant enzymes in growing rice
plants. Plant Sci, 164: 645~655
Zhang XR, Henriques R, Lin SS, Niu QW, Chua NH (2006). Agrobac-
terium-mediated transformation of Arabidopsis thaliana using
the floral dip method. Nat Protoc, 1: 1~6