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Progress of research on △12 fatty acid desaturases and their coding genes

△12-脂肪酸脱氢酶及其编码基因研究进展



全 文 :书△12脂肪酸脱氢酶及其编码基因研究进展
刘永红1,2,张丽静1,张洪荣1,傅华1
(1.农业部草地农业生态系统学重点开放实验室 兰州大学草地农业科技学院,甘肃 兰州730020;
2.浙江省桐庐县农业技术推广中心,浙江 桐庐311500)
摘要:△12脂肪酸脱氢酶是催化脂肪酸链第12位碳原子形成双键的脱氢酶类,控制着油酸、亚油酸和其他多种不
饱和脂肪酸的合成和含量。△12脂肪酸脱氢酶根据电子供体不同可以分为fad2型和fad6型,fad2又可以分为管
家型fad2和种子特异型fad2,fad2型和fad6型具有相同功能,但亲缘关系较远。fad2型编码基因在植物中一般有
多个拷贝。本研究从△12脂肪酸脱氢酶的结构和功能、分类、系统进化、生理学作用、基因克隆、基因结构和拷贝数
等方面对其研究进展进行了综述,对相关研究领域的未来研究方向进行了展望。
关键词:△12脂肪酸脱氢酶;不饱和脂肪酸;系统进化分析;拷贝数
中图分类号:Q946.33  文献标识码:A  文章编号:10045759(2011)03025612
   △12脂肪酸脱氢酶(△12fattyaciddesaturases)又称油酸脱氢酶(oleatedesaturases),是存在于植物细胞
内质网膜、质体膜和蓝细菌的质膜和类囊体膜上的膜结合蛋白[1,2]。其主要作用是在单不饱和脂肪酸油酸(oleic
acid,OA,18:1△9)的第12和13位碳原子之间插入一个双键,形成含有2个双键的多不饱和脂肪酸-亚油酸
(linoleicacid,LA,18:2△9,12)[3,4]。△12脂肪酸脱氢酶是油酸脱氢形成亚油酸的关键酶,是多不饱和脂肪酸
(polyunsaturatedfattyacid,PUFA)代谢ω3、ω6途径的限速酶,控制着植物细胞中大多数不饱和脂肪的合成,
只存在于植物和微生物中,人和哺乳动物细胞中缺乏在脂肪酸的第9位碳原子以上位置引入不饱和双键的脱氢
酶[5,6]。
油酸(OA)是单不饱和脂肪酸,在人体的脂类代谢中能降低有害胆固醇(低密度脂蛋白),保持有益胆固醇(高
密度脂蛋白),减缓动脉粥样硬化,有效预防冠心病等心血管疾病的发生[7,8]。亚油酸(LA)为多不饱和脂肪酸,具
有降低血清胆固醇和甘油三酯,预防动脉粥样硬化的生理作用,同时,又是α亚麻酸(ALA)、γ亚麻酸(GLA)和
花生四烯酸等重要多不饱和脂肪酸和某些生理调节物质(如前列腺素)的合成前体[9,10]。不饱和脂肪酸(PU
FAs)是生物膜的重要组成成分,膜上磷脂分子中缺少一定数量的不饱和脂肪酸时,细胞膜的完整性与流动性降
低,细胞功能减退[11,12]。PUFAs对于机体调节、动力学、相转移、膜的渗透性以及控制与膜相关的生理生化过程
起关键性的作用,同时,能在细胞水平上通过与核受体和转录因子结合来对不同的基因表达进行调控,从而影响
一些生物过程如脂肪酸合成、癌诱变和胆固醇调节[13,14]。
△12脂肪酸脱氢酶在调节膜脂不饱和脂肪酸组成、不饱和度、生物膜的形成和物理性质等方面起重要作用,
通过改变脂肪酸脱氢酶活性,可以增加生物体抗盐和抗寒能力[1517]。人们越来越认识到不饱和脂肪酸的重要性,
并且常规的生物化学方法很难分离纯化膜结合的△12脂肪酸脱氢酶,研究其在自然环境中的生化特性比较困
难[18],因此,对△12脂肪酸脱氢酶基因的研究也越来越多。该基因在油料作物基因工程、植物抗寒育种和微生
物工程等方面的应用逐渐成为该领域科学研究的热点之一。本研究对△12脂肪酸脱氢酶的结构和功能、分类、
系统进化、生理作用、基因结构和拷贝数等进行了系统总结,旨在为今后的深入研究提供参考。
1 不饱和脂肪酸的合成途径
植物细胞中不饱和脂肪酸的合成(图1)首先在质体基质中产生饱和脂肪酸硬脂酸(stearicacid,SA,18:0),
256-267
2011年6月
   草 业 学 报   
   ACTAPRATACULTURAESINICA   
第20卷 第3期
Vol.20,No.3
 收稿日期:20100317;改回日期:20100415
基金项目:国家重点基础研究发展计划(973计划)(2007CB108903),国家科技支撑计划(2008BADB3B08)和国家自然科学基金项目
(30800801)资助。
作者简介:刘永红(1985),女,甘肃渭源人,助理农艺师,硕士。Email:yhliu689@yahoo.com.cn
通讯作者。Email:lijingzhang@lzu.edu.cn
然后由可溶的硬脂酰-ACP△9去饱和酶(stearoylACPdesaturase,SAD)在碳链的第9位碳原子上引入双键催
化形成单不饱和脂肪酸油酸[19,20]。多不饱和脂肪酸的代谢从油酸开始,在△12脂肪酸脱氢酶的催化下形成亚油
酸。亚油酸经不同的酶催化分别进入ω3和ω6途径。2条途径中亚油酸和α亚麻酸必须经△6脂肪酸脱氢酶
(图1)的催化才能分别转化成γ亚麻酸和十八碳四烯酸(octadecatetraenoicacid,OTA,C18:4△6,9,12,15),分
向的关键是不同位点的去饱和酶[21,22]。
图1 不饱和脂肪酸生物合成途径
犉犻犵.1 犜犺犲犫犻狅狊狔狀狋犺犲狋犻犮狆犪狋犺狑犪狔狅犳狌狀狊犪狋狌狉犪狋犲犱犳犪狋狋狔犪犮犻犱
 SA:Stearicacid;OA:Oleicacid;LA:Linoleicacid;ALA:αlinolenicacid;GLA:γlinolenicacid;OTA:Octadecatetraenoicacid;DGLA:Diho
moγlinolenicacid;ETA:Eicosatetraenoicacid;AA:Arachidonicacid;EPA:Eicosapentaenoicacid;DPA:Docosapentaenoicacid;DHA:Docosa
hexaenoicacid
2 △12脂肪酸脱氢酶
2.1 △12脂肪酸脱氢酶的结构
△12脂肪酸脱氢酶属于膜结合的细胞质脂酰-脂去饱和酶(acyllipiddesaturase),根据电子供体不同分为
2类:一类位于植物细胞的微粒体中(fad2),定位于内质网,以还原型辅酶Ⅰ(nicotinamideadeninedinucleotide,
NADH)、NADH:细胞色素b5 氧化还原酶和细胞色素b5 组成的系统为电子供体;另一类存在于植物细胞质体和
蓝细菌中(fad6),定位于质体,脱氢时借助还原型辅酶Ⅱ(nicotinamideadeninedinucleotidephosphate,NAD
PH)、NADPH:铁合蛋白氧化还原酶和铁合蛋白[23,24]。△12脂肪酸脱氢酶蛋白序列结构有许多共同特点,如:C
末端和N末端同源性很低,中部序列相对保守,在亲水区具有特征性的3个保守组氨酸富集区[25]。虽然所有膜
结合脱氢酶中都有高度保守的3个组氨酸簇,但是随着脱氢酶引入双键的位置不同,组氨酸基序不同。高等植物
中△12脂肪酸脱氢酶的第1个组氨酸簇为 HXCGH(HisⅠ),第2个为EXXXXXHXXHH(HisⅡ),第3个为
752第20卷第3期 草业学报2011年
HXXHH(HisⅢ),都位于细胞质的一侧,它被认为是作为金属螯合配基与二价铁离子结合,在反应中心结合氧
而构成fad催化的活性中心(图2),有助于脱氢酶与Cytbs的相互作用,为维持酶活性所必需[26]。内质网定位的
△12脂肪酸脱氢酶(fad2)C末端有一段类似于芳香族氨基酸富集基序(YXXL或W/YX23W/F/Y)的序列,符
合ФXXK/R/D/EФCOOH(其中Ф代表大的疏水氨基酸残基)规则,该保守基序是使其定位到内质网膜上和
从高尔基体上恢复所必需的[27]。fad2与fad6基本结构模型相同(图2),它们的区别在于fad2N末端为信号肽,
fad6N末端为不同长度的质体前导肽(包含高含量的含有羟基的氨基酸如:Ser,Thr和Tyr;低含量的酸性氨基
酸和保守的N末端MetAla二肽);fad2C末端为内质网定位的芳香族氨基酸富集基序(YXXL或W/YX23W/
F/Y),fad6C末端没有;fad2有2段长的疏水区和2段短的疏水区,形成4次跨膜结构和2个膜嵌合结构,而
fad6酶则只有3个跨膜结构域(以油橄榄为例)[28,29]。与同为内质网膜整合蛋白fad3相比,fad2缺少C末端内
质网内在膜蛋白滞留信号KDEL或KXKXX基序[30]。
图2 犳犪犱2拓扑结构模式图
犉犻犵.2 犕狅犱犲犾狅犳狋犺犲狆狉狅狆狅狊犲犱狋狅狆狅犾狅犵狔狅犳狋犺犲犳犪犱2
2.2 △12脂肪酸脱氢酶系统进化分析
Alonso等[1]通过在结构和功能上对脂肪酸脱氢酶进行系统进化研究认为,△9脂肪酸脱氢酶由于其存在的
广泛性和饱和脂肪酸链中的第1次脱氢而成为所有脱氢酶的共同祖先,这当然也包括△12脂肪酸脱氢酶。Her
nandez等[31]通过分析△12脂肪酸脱氢酶的系统进化,将△12脂肪酸脱氢酶分为3种类型,分别是在所有组织中
均有表达的管家型(housekeepingtype)fad2、仅在种子中特异性表达的种子特异型(seedtype)fad2和fad6型。
本研究将已报道的不同种植物及同种植物不同拷贝的△12脂肪酸脱氢酶氨基酸序列通过CLUSTALX1.83和
TreeView进行了序列分析和构建系统进化树(图3),发现△12脂肪酸脱氢酶的分类同 Hernandez等[31]报道的
基本一样,在进化上呈3个群,fad6在进化上与种子特异型fad2更近一些,不过Li等[32]认为fad6与管家型fad2
更近。从进化树图还可以看出,fad21属于种子特异型fad2,fad22和fad23属于管家型fad2,同种植物fad22
和fad23基因高度同源。fad2与fad6形成一个大的进化分支,表明它们之间的分歧并非发生在最近。Martin
ezrivas等[33]认为管家型fad2和种子特异型fad2之间的分支是由于fad2在复制过程中DNA发生分离,进而独
自进化产生的结果。管家型fad2,种子特异型fad2和fad6有相同的功能,但形成了不同的进化枝,它们在进化
过程中可能产生了若干次彼此不同的进化,管家型fad2内部存在的分歧,可能是由于某些物种基因进化方式不
同[32,34,35]。
2.3 △12脂肪酸脱氢酶的生理学作用
2.3.1 对生物体脂肪酸含量的影响 △12脂肪酸脱氢酶对植物脂肪酸的含量具有明显的调控作用,其基因正
852 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.3
图3 植物△12脂肪酸脱氢酶氨基酸序列的系统进化分析
犉犻犵.3 犘犺狔犾狅犵犲狀犲狋犻犮犪狀犪犾狔狊犻狊狅犳△12犳犪狋狋狔犪犮犻犱犱犲狊犪狋狌狉犪狊犲狊犪犿犻狀狅犪犮犻犱狊犲狇狌犲狀犮犲犳狉狅犿狏犪狉犻狅狌狊狆犾犪狀狋狊狊狆犲犮犻犲狊
 图中△12脂肪酸脱氢酶氨基酸序列的来源和基因库登录号见表1ThesourcesandGenBankaccessionnumbersof△12fattyaciddesaturasesami
noacidsequencesusedfortheanalysisarefromTable1
义表达能提高亚油酸和其他多不饱和脂肪酸的含量,反义表达能提高油酸含量,在不同的启动子调控下表达活性
有差异。Stoujesdijk等[36]将携带油酸脱氢酶基因的共抑制质粒转化油菜(犅狉犪狊狊犻犮犪狀犪狆狌狊),使得内源油酸脱氢
酶沉默,转基因野芥菜(犅狉犪狊狊犻犮犪犼狌狀犮犲犪)和甘南型油菜的油酸含量分别增加到73%和89%。Liu等[37]使用dsR
NA基因沉默技术诱导棉花(犌狅狊狊狔狆犻狌犿犺犻狉狊狌狋狌犿)种子中犳犪犱21基因的沉默,成功地将棉籽油的油酸含量由
15%提高到75%以上,将亚油酸含量由60%降低到4%。Hitz等[38]报道,将大豆(犌犾狔犮犻狀犲犿犪狓)反义的△12脂
肪酸脱氢酶基因在种子特异性的大豆储藏蛋白(conglycinin)启动子调控下转化大豆体细胞胚,使其油酸含量从
21.5%上升到78.9%,而在转基因Canola油菜中使用Napin基因启动子调控下从63%上升到83%。向日葵
(犎犲犾犻犪狀狋犺狌狊犪狀狀狌狌狊)人工诱发△12脂肪酸脱氢酶基因突变种,葵花籽油的亚油酸含量从66%下降到了30%(单
基因突变体)和12%(双基因突变体),油酸含量从20%分别上升到了60%和80%,使得葵花籽油的脂肪酸组分
相当于高价值的橄榄油[39]。Saeki等[40]将菠菜(犛狆犻狀犪犮犻犪狅犾犲狉犪犮犲犪)△12脂肪酸脱氢酶基因转入猪体内,转基因
猪脂肪组织中亚油酸含量为野生型猪的10倍,白脂肪组织中亚油酸含量为野生型猪的20倍,存活的首代和第2
代转基因猪均表现正常。
2.3.2 对植物生理与农艺学性状的影响 △12脂肪酸脱氢酶与植物低温生存、病理性损伤反应等机制有关,基
因表达受低温和损伤等外界压力的影响,为生物体适应外界温度的变化提供分子基础,对于生物体必不可少[41]。
膜脂不饱和程度对生物体在低温下的生长有重要作用。膜脂不饱和脂肪酸含量增高,植物的抗寒性相应提
高[42]。Wada等[43]从抗寒蓝藻(犃狀犪犮狔狊狋犻狊狀犻犱狌犾犪狀狊)中克隆了△12脱饱和酶基因犱犲狊犃,并将其导入寒敏感的蓝
952第20卷第3期 草业学报2011年
藻,结果不饱和脂肪酸含量大为增加,受体对低温的抗性明显增强。不同生物体△12脂肪酸脱氢酶对脂肪酸组
成的温度调节存在不同机制。大豆fad21基因在发育种子中强力表达,而fad22基因无论在营养组织或是发育
种子均为组成型表达,冷处理并不能使fad21和fad22基因转录增强[44]。Watanabe等[45]从酵母(犛犪犮犮犺犪狉狅犿狔
犮犲狊犽犾狌狔狏犲狉犻)中克隆了△12脂肪酸去饱和酶全长基因(狊犽犳犪犱2),该基因在低温10℃处理时前2hmRNA水平
增高,然后表达水平下降,表明狊犽犳犪犱2转录首先被低温激活后被抑制,能够响应低温胁迫。
△12脂肪酸脱氢酶基因的突变或沉默对植物营养生长和生殖生长会造成一些不利的影响。拟南芥(犃狉犪犫犻
犱狅狆狊犻狊狋犺犪犾犻犪狀犪)的fad2突变株在低温下不能生长,植株矮小,高度小于野生型植株的1/10,生长在高温下将缓解
突变对生长和发育的影响而不改变其脂肪酸组成,在4℃培养时生长停止[46]。甘蓝型油菜2个fad2基因拷贝的
同时突变使突变体种子油脂中多不饱和脂肪酸总量下降至5%左右,油酸含量从单突变体的78%增加到
86%[47],有营养体生长变缓、花蕾死亡、低结实率、低耐冷性等一些不利的农艺学性状产生[48]。McConn和
Browse[49]研究发现拟南芥fad2突变株只能积累单不饱和脂肪酸,在自养条件下不能生长并高度缺绿,在补充蔗
糖情况下其生物形态学上与野生型一致,进而指出尽管植物的生长发育一般不依赖于细胞膜上的不饱和脂肪酸
的水平,但很可能光合作用需要不饱和脂肪酸的存在。王敬乔等[50]研究发现fad2基因的突变改变了叶片表面
蜡的沉积结构,增大了叶片表层的溶液渗透性。
3 △12脂肪酸脱氢酶基因
3.1 △12脂肪酸脱氢酶基因的分离
△12脂肪酸脱氢酶基因是控制油酸向亚油酸转化的关键基因,内质网定位的△12脂肪酸脱氢酶的编码基
因为fad2基因,质体定位的为fad6基因。△12脂肪酸脱氢酶全长基因目前已经在多种植物、动物、藻类、真菌和
细菌得到了分离。表1列出了部分已分离到△12脂肪酸脱氢酶基因的植物。
表1 植物△12脂肪酸脱氢酶
犜犪犫犾犲1 △12犳犪狋狋狔犪犮犻犱犱犲狊犪狋狌狉犪狊犲狊犳狉狅犿狏犪狉犻狅狌狊狆犾犪狀狋狊
基因类别Genetype 物种Species 基因名称Genename 基因库登录号GenBankaccessionNo. 参考文献References
fad2
拟南芥犃.狋犺犪犾犻犪狀犪 犃狋犉犃犇2 L26296 [41]
甘蓝型油菜犅.狀犪狆狌狊 犅狀犉犃犇2 AF243045 [51]
白菜型油菜犅.狉犪狆犪 犅狉犉犃犇2 AJ459107 [52]
玻璃苣犅狅狉犪犵狅狅犳犳犻犮犻狀犪犾犻狊 犅狅犉犃犇2 AF074324 [53]
旱金莲犜狉狅狆犪犲狅犾狌犿犿犪犼狌狊 犜犿犉犃犇2 AY780572 [54]
大豆犌犾狔犮犻狀犲犿犪狓 犌犿犉犃犇21 L43920 [44]
犌犿犉犃犇22 L43921
烟草犖犻犮狅狋犻犪狀犪狋犪犫犪犮狌犿 犖狋犉犃犇2 AY660024 [55]
西葫芦犆狌犮狌狉犫犻狋犪狆犲狆狅 犆狆犲犉犃犇2 AY525163 [53]
大戟犈狌狆犺狅狉犫犻犪犾犪犵犪狊犮犪犲 犈犾犉犃犇2 AY486148 [56]
还阳参犆狉犲狆犻狊狆犪犾犪犲狊狋犻狀犪 犆狆犉犃犇2 Y16284 [57]
欧芹犘犲狋狉狅狊犲犾犻狀狌犿犮狉犻狊狆狌犿 犘犮犉犃犇2 U86072 [58]
花生犃狉犪犮犺犻狊犺狔狆狅犵犪犲犪 犃犺犉犃犇2犃 AF030319 [59]
犃犺犉犃犇2犅 AF272950
芝麻犛犲狊犪犿狌犿犻狀犱犻犮狌犿 犛犻犉犃犇2 AF192486 [60]
向日葵犎.犪狀狀狌狌狊 犎犪犉犃犇21 AF251842 [33]
犎犪犉犃犇22 AF251843
犎犪犉犃犇23 AF251844
062 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.3
 续表1 Continued
基因类别Genetype 物种Species 基因名称Genename 基因库登录号GenBankaccessionNo. 参考文献References
fad2
棉花犌.犺犻狉狊狌狋狌犿 犌犺犉犃犇21 X97016 [61]
犌犺犉犃犇22 Y10112
犌犺犉犃犇23 AF331163
玉米犣犲犪犿犪狔狊 犣犿犉犃犇2 DQ496227 [62]
油桐犞犲狉狀犻犮犻犪犳狅狉犱犻犻 犞犳犉犃犇2 AF525535 [34]
菠菜犛.狅犾犲狉犪犮犲犪 犛狅犉犃犇2 AB094415 [40]
油橄榄犗犾犲犪犲狌狉狅狆犪犲犪 犗犲犉犃犇21 AY733076 [31]
犗犲犉犃犇22 AY733077
马铃薯犛狅犾犪狀狌犿狋狌犫犲狉狅狊狌犿 犛犮犉犃犇2 X92847 [32]
亚麻犔犻狀狌犿狌狊犻狋犪狋犻狊狊犻犿狌犿 犔狌犉犃犇2 EU660502 [63]
苦瓜犕狅犿狅狉犱犻犮犪犮犺犪狉犪狀狋犻犪 犕犮犉犃犇2 AF182521 [64]
石榴犘狌狀犻犮犪犵狉犪狀犪狋狌犿 犘犵犉犃犇2 AJ437139 [65]
凤仙花犐犿狆犪狋犻犲狀狊犫犪犾狊犪犿犻狀犪 犐犫犉犃犇2 AF182520 [64]
金盏菊犆犪犾犲狀犱狌犾犪狅犳犳犻犮犻狀犪犾犻狊 犆狅犉犃犇2 AF343065 [66]
斑鸠菊犞犲狉狀狅狀犻犪犵犪犾犪犿犲狀狊犻狊 犞犵犉犃犇21 AF188263 [67]
犞犵犉犃犇22 AF188264
中间锦鸡儿犆犪狉犪犵犪狀犪犻狀狋犲狉犿犲犱犻犪 犆犪犉犃犇21犃 EU433557 [68]
犆犪犉犃犇22犃 EF503621
犆犪犉犃犇21犅 EU433558
犆犪犉犃犇22犅 AY957394
蓖麻犚犻犮犻狀狌狊犮狅犿犿狌狀犻狊 犚犮犉犃犇2 EF071863 [69]
鳄梨犘犲狉狊犲犪犪犿犲狉犻犮犪狀犪 犘犪犉犃犇2 AY057406 [70]
毛白杨犘狅狆狌犾狌狊狋狅犿犲狀狋狅狊犪 犘狋犉犃犇2 DQ316788 [71]
绿独行菜犔犲狆犻犱犻狌犿犮犪犿狆犲狊狋狉犲 犔犮犉犃犇2 FJ907546 [72]
马齿苋犘狅狉狋狌犾犪犮犪狅犾犲狉犪犮犲犪 犘狅犉犃犇2 FJ472350 [73]
橡胶树犎犲狏犲犪犫狉犪狊犻犾犻犲狀狊犻狊 犎犫犉犃犇2 DQ023609 [74]
fad6
拟南芥犃.狋犺犪犾犻犪狀犪 犃狋犉犃犇6 U09503 [75]
甘蓝型油菜犅.狀犪狆狌狊 犅狀犉犃犇6 L29214 [76]
大豆犌.犿犪狓 犌犿犉犃犇6 L29215 [76]
菠菜犛.狅犾犲狉犪犮犲犪 犛狅犉犃犇6 X78311 [77]
油橄榄犗.犲狌狉狅狆犪犲犪 犗犲犉犃犇6 AY772187 [35]
播娘蒿犇犲狊犮狌狉犪犻狀犻犪狊狅狆犺犻犪 犇狊犉犃犇6 DQ904566 [78]
马齿苋犘.狅犾犲狉犪犮犲犪 犘狅犉犃犇6 EU376530 [79]
高粱犛狅狉犵犺狌犿犫犻犮狅犾狅狉 犛犫犉犃犇6 XM_002445518 [80]
麻风树犑犪狋狉狅狆犺犪犮狌狉犮犪狊 犑犮犉犃犇6 EU106889 [78]
3.2 △12脂肪酸脱氢酶基因的结构特点
fad2基因5′UTR一般具有1个大的内含子,不同植物5′UTR的内含子大小和位置不同。如:拟南芥内含
子长1130bp,位于起始密码子上游4bp处[41],而大豆内含子仅320bp,位于起始密码子下游4bp处[3]。同种
植物不同拷贝的fad2基因的差异也主要体现在5′UTR内含子的大小和位置上,如:陆地棉中犳犪犱21内含子长
1133bp,位于起始位点上游9bp处,犳犪犱23内含子长2967bp,位于起始密码子上游12bp处,犳犪犱21在种子
中特异表达,犳犪犱23组成型表达[29]。对5个棉花品种fad21基因研究初步发现5′UTR内含子在大小和位置上
162第20卷第3期 草业学报2011年
是保守的[3]。fad2和fad6具有相同的功能,但它们的催化方式和基因结构差异较大,表2表示以去饱和酶基因
(fad8除外)都是单拷贝的拟南芥[41]为代表,介绍了fad2和fad6之间的差异。植物fad2基因具有公认的转录起
始统一序列(AACAATGGC)[81],但不同植物可能有若干碱基的不同。Jung等[82]分析花生犪犺犳犪犱2犪和犪犺犳犪犱2犫
基因序列,发现二者读码框序列之间存在限制性酶切位点的多态性(RsaI位点)。
表2 拟南芥△12脂肪酸脱氢酶及基因特点[29,83]
犜犪犫犾犲2 △12犳犪狋狋狔犪犮犻犱犱犲狊犪狋狌狉犪狊犲狊犪狀犱犵犲狀犲犮犺犪狉犪犮狋犲狉犻狊狋犻犮狊犻狀犃.狋犺犪犾犻犪狀犪
基因
Gene
位置
Location
电子供体
Electrondonor
前体
Precursor
产物
Product
内含子
Intron
OFR
(bp)
5′UTR
(bp)
3′UTR
(bp)
氨基酸残基数
Aminoacidresiduenumbers
fad2 微粒体 Microsome 细胞色素b5Cytochromesb5 18:1(9) 18:2(9,12) 1 1155 156 307 384
fad6 质体Plasmid 铁氧还蛋白Ferredoxin 18:1(9) 18:2(9,12) 9 1347 115 303 448
 OFR:开放阅读框Openreadingframe;5′UTR:5′非翻译区5′untranslatedregion;3′UTR:3′非翻译区3′untranslatedregion.
3.3 △12脂肪酸脱氢酶基因的拷贝数
高等植物中fad2基因是以多拷贝形式存在的,不同fad2基因拷贝具有不同的序列特征、编码区、内含子、5′
UTR和3′UTR长度、表达特性和功能。同一植物中不同的fad2基因拷贝同源性较低,而不同植物中相同功能
或细胞器定位相同的fad2基因拷贝同源性较高。棉属植物二倍体中至少含有2个fad2基因拷贝,而在异源四倍
体中可能含有5个拷贝,陆地棉的基因组中存在4个fad2基因拷贝,其中犳犪犱21在胚发育时期的种子中特异表
达,在叶片中没有检测到转录物,被认为是种子中油脂去饱和的主要fad2基因[3];犳犪犱22[61]在所有组织中都有
表达,但表达量很低;犳犪犱23和犳犪犱24有98%的同源性,在所有组织中都有表达,包括种子、幼苗组织、幼小和成
熟的叶片、根、发育的花蕾和胚珠纤维[84]。Martinezrivas等[33]从正常型和高油酸突变种不同发育阶段的向日葵
胚中分离得到3个fad2基因,其中犳犪犱21种子特异表达并控制着胚发育阶段油酸向亚油酸的转变,犳犪犱22和
犳犪犱23在所有组织中均有表达,表达量一致且均较低,但犳犪犱23在发芽后2d的子叶及根中表达量较高,因此
Martinezrivas等[33]认为前者可能控制存储脂脱饱和,与种子油酸含量直接相关,而后两者与膜脂脱饱和有关。
在大豆中有4个fad2基因,其中犳犪犱21犪和犳犪犱21犫同源性为93.8%,在种子中特异表达,决定种子储存油脂中
多不饱和脂肪酸的成分和含量[18];犳犪犱22和犳犪犱23组成型表达,同源性为95.3%,催化产生组织和种子发育过
程膜脂中多不饱和脂肪酸[32]。Mikkilineni和Rocheford[85]研究表明,在玉米植株中至少存在3个fad2功能基
因,其中2个在胚中表达,另1个在其他组织中表达,胚中的fad2基因在授粉后14d时表达量最高。花生中有
2个微粒体fad2基因(犪犺犳犪犱2犪和犪犺犳犪犱2犫),起源于2个不同二倍体种的同源非等位基因,编码的氨基酸只有4
个不同,犪犺犳犪犱2犪包含2种不同的等位基因,其中1个(犪犺犳犪犱2犪2)产生功能性的酶,另1个(犪犺犳犪犱2犪1)产生活
性低得多的酶[6,82]。林萍等[68]从中间锦鸡儿未成熟种子和枝叶中克隆了4个fad2基因:犳犪犱21犪、犳犪犱22犪、
犳犪犱21犫和犳犪犱22犫,序列同源性比较结果表明,犳犪犱21犪与犳犪犱21犫同源性很高,犳犪犱22犫与犳犪犱21犪的氨基酸
序列同源性最低,只有64.7%,初步推测犳犪犱21犪、犳犪犱21犫是种子特异性表达的基因,犳犪犱22犪、犳犪犱22犫是组成
型表达。甘南型油菜的fad2多基因家族被认为是基因倍增的结果,在单倍体基因组中有4~6个拷贝[86]。油橄
榄有2个fad2基因,其中狅犲狆犳犪犱21负责幼嫩种子中贮存脂的去饱和,狅犲狆犳犪犱22负责成熟种子和中果皮贮存
脂的去饱和[31]。fad2基因在拟南芥中只有1个拷贝,在芸薹和芝麻中各含1~2个拷贝。
4 展望
通过基因工程手段将△12脂肪酸脱氢酶基因正义表达可以提高植物亚油酸、γ亚麻酸和多不饱和脂肪酸含
量,反义表达可以提高植物油酸含量、植物种子脂肪酸中油酸/亚油酸(O/L)及植物油稳定性。利用基因工程对
油料植物品质改良具有极大的潜力,但同时也存在许多挑战。首先,△12脂肪酸脱氢酶基因在一些物种中以多
拷贝形式存在,有些拷贝为fad2假基因[87],因此,人们在利用突变筛选高油酸及高O/L的植物品种时必须完全
了解所研究植物中所有拷贝的结构和功能,这给育种工作带来了很大的困难,同时也对该酶在分子水平上的活性
262 ACTAPRATACULTURAESINICA(2011) Vol.20,No.3
调控造成了影响。其次,目前对△12脂肪酸脱氢酶基因的调节机制和催化机理还不十分明确,该基因的突变或
沉默虽然能改变不饱和脂肪酸的含量和组成,但对植物营养生长和生殖生长会造成一些不利的影响。再次,控制
油酸的基因除了1个主基因外,还存在3个或更多的微效多基因[88],因此,△12脂肪酸脱氢酶基因在转基因作
物中的表达和遗传稳定性还有待于进一步研究。
从代谢工程角度来看,仅依靠单一的△12脂肪酸脱氢酶调控相关脂肪酸含量的力度很有限,若能从整个脂
肪酸代谢网络的代谢流方面进行调控和分析,从整个生化反应系统来关注不饱和脂肪酸合成,则可以更科学的利
用△12脂肪酸脱氢酶的作用,更大程度提高亚油酸和其他不饱和脂肪酸的产率。在基因功能的表达调控方面,
△12脂肪酸脱氢酶基因可能受光、植物生长激素和还原性辅酶的调控并参与植物对逆境的应答,因此,对△12
脂肪酸脱氢酶基因的研究不应局限于植物组织中脂肪酸组成的变化以及不饱和脂肪酸改变所引起的生物膜的变
化,应拓展到激素调控、光调控、电子传递和逆境应答等更广泛的领域,将有助于更深入地了解△12脂肪酸脱氢
酶基因所参与的植物生理和生化反应。
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犘狉狅犵狉犲狊狊狅犳狉犲狊犲犪狉犮犺狅狀△12犳犪狋狋狔犪犮犻犱犱犲狊犪狋狌狉犪狊犲狊犪狀犱狋犺犲犻狉犮狅犱犻狀犵犵犲狀犲狊
LIUYonghong1,2,ZHANGLijing1,ZHANGHongrong1,FUHua1
(1.KeyLaboratoryofGrasslandAgroecosystem,MinistryofAgriculture,ColegeofPastoral
AgricultureScienceandTechnology,LanzhouUniversity,Lanzhou730020,China;
2.TongluAgroTechExtensionCenterofZhejiangprovince,Tonglu311500,China)
犃犫狊狋狉犪犮狋:△12fattyaciddesaturases(fad2)arekeyenzymeswhichcatalyzetheintroductionofdoublebondsat
thedelta12positioninthehydrocarbonchainandtherebyconvertoleicacidtolinoleicacid.Theycontrolthe
synthesisofoleicacid,linoleicacidandotherpolyunsaturatedlipidsinplantcels.△12fattyaciddesaturases
arecategorizedintofad2andfad6typeaccordingtotheirdifferentelectrondonors.fad2typecanbefurthercat
egorizedintohousekeepingtypeandseedtypefad2.fad2andfad6typeshavethesamefunctionalitybutdiffer
entgeneticrelationship.Inthisarticle,recentresearchadvanceson△12fattyaciddesaturasesintermsoftheir
structureandfunction,classification,evolutionarysystem,physiologicalfunction,genecloning,genestruc
tureandcopynumberinplantsarereviewed.Thedirectionsoftherelativeresearchfieldarealsodiscussed.
犓犲狔狑狅狉犱狊:△12fattyaciddesaturases;unsaturatedfattyacid;phylogeneticanalysis;copynumber
762第20卷第3期 草业学报2011年