全 文 ： 黑莓酒渣中花色苷的超声波辅助酶法提取及其生物活性
李亚辉，马艳弘*，黄开红，张宏志
（江苏省农业科学院农产品加工研究所，南京 210014）
摘要： 本文优化了黑莓酒渣中花色苷的提取方法，并对其生物活性进行了评价。利用
响应面对超声波辅助果胶酶提取黑莓酒渣中花色苷的条件进行了优化，并通过测定所提
花色苷的抗氧化能力和对细菌生长的影响，评价了其生物活性。结果显示，当料液比为
1/15（g/mL）、超声波功率为 300W、pH4.5 时，最佳提取条件为加酶量 0.30%、提取温
度 48℃、提取时间 20min，此条件下花色苷提取量为 4.70mg/g，比酸化乙醇法提高了
114.08%；所提花色苷具有一定的抗猪油氧化能力、羟基自由基清除能力和较强的 DPPH
自由基清除能力，并可有效抑制大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的生长。此研究为黑莓产业
的发展提供了一定的理论依据和技术支持，对提升其经济价值具有重要意义。
关键词：黑莓酒渣；花色苷；超声波；果胶酶；生物活性
中图分类号：S567.2 文献标志码：A

Extraction and Bioactivity Assessment of Anthocyanins from Blackberry wine pomace
by Method of Enzyme assisted with Ultrasonic
LI Yahui, MA Yanhong*, HUANG Kaihong, ZHANG Hongzhi
( Institute of Farm Product Processing, Jiangsu Academy of Agricultural Sciences, Nanjing
210014 )
Abstract: This study was focused on method optimization for anthocyanins extraction from
blackberry wine pomace, also bioactivity of anthocyanins extracted was evaluated. Response
surface was applied to optimize the extraction method of pectinase assisted with ultrasonic.
Antioxidant and antibacterial activities of anthocyanins were assessed to evaluate it’s
bioactivity. Results showed that the optimum extraction condition were enzyme dosage 0.30%,
extraction temperature 48 ℃ and extraction time 20min, under the condition of solid-liquid

1通讯作者：马艳弘，女，1972 年出生，博士，副研究员，主要从事食品功能因子开发利用研究，
Email:ma_yhhyy@126.com
第一作者：李亚辉，男，1985 年出生，博士，助理研究员，主要从事食品生物技术方向研究，
Email: liqianhao217@126.com
资助项目：江苏省博士后基金 1302057B 江苏省自然科学基金 BK2012786
2014-12-12
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网络出版时间：2014-12-12 16:42
网络出版地址：http://www.cnki.net/kcms/detail/11.2206.TS.20141212.1642.038.html
ratio 1/15 (g/mL), ultrasonic power 300W and pH4.5. With such condition, the anthocyanins
yield was 4.70mg/g, which is improved by 19.32% compared to treatment with ethanol.
Anthocyanins extracted showed good antioxidation activity under lard, DPPH and hydroxyl
radical evaluation systems, and high inhibition to E.coli and Staph.aureus. This study
provides a theoretical basis and technical support for the development of blackberry industry,
also it is significant for the improvement of economic value of blackberry.
Key words: blackberry wine pomace; anthocyanins; ultrasonic; pectinase; biological activity

黑莓 (Blackberry)，又名覆盆子，是新兴的第三代水果。黑莓商业化栽培始于欧洲
和北美，于 1986 年由江苏省中科院植物研究所首次引入中国[1-2]。目前我国黑莓种植面
积约占世界种植面积的 1/5，其中江苏省黑莓种植面积约占我国种植面积的 80%[1,3]。黑
莓具有较高营养价值，尤其花色苷含量丰富[4-6]，其具有抗菌、抗炎、抗氧化、抗癌、
降血糖、降血压、保护血管和减缓衰老等多种功效[5, 7-12]。
新鲜黑莓保质期短、不易储存，因此对其进行深加工是黑莓产业发展的必由之路。
黑莓果酒最大限度的保留了其营养和生物活性物质，是黑莓深加工的重要途径之一。酒
渣是果酒酿造中重要的副产物，直接排放不仅污染环境，而且造成资源浪费。黑莓酒渣
中含有大量的花色苷，和其目前被用作肥料或动物饲料相比，从中提取花色苷可大大提
高其应用和经济价值。目前，关于浆果类花色苷的提取国内外已有较多报道，提取方法
主要为有机溶剂萃取法，除此之外还有超临界 CO2萃取法、酶法、发酵法、微波辅助和
超声波辅助法等[13-17]。花色苷存在于植物细胞液中，被细胞壁和细胞膜包裹难于溶出[13]。
超声波的机械作用可破坏细胞壁和细胞膜的结构，加速内容物的溶出；果胶酶可破坏植
物细胞壁，提高细胞壁和细胞膜的通透性，也可加速花色苷的溶出[18-19]。目前，关于黑
莓果实花色苷的提取及活性研究虽已有报道[4, 8-11]，但对于黑莓酒酿造中副产物黑莓酒渣
中花色苷的研究还鲜有报道。因此，本试验利用超声波辅助果胶酶法提取黑莓酒渣中花
色苷，通过响应面优化其提取条件，并对所提花色苷的抗氧化性和抑菌活性进行初步研
究。这对黑莓资源的综合利用和黑莓产业的持续发展具有重要意义。
1 材料与方法
1.1 材料与试剂
黑莓酒渣 由句容万山红遍生物科技有限公司提供；果胶酶（5 万 u/g） 无锡明
辉国际贸易有限公司化工分公司；猪油 南京菜市场购买；大肠杆菌、金黄色葡萄球菌
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实验室保存；VC、硫酸亚铁、水杨酸、过氧化氢 购自天津科密欧试剂公司；其他试剂
均为市售分析纯。
1.2 仪器与设备
KQ-2500E 型超声波清洗器 昆山禾创仪器有限公司；UV-3802H 紫外可见分光光
度仪 上海尤尼柯仪器有限公司；真空冷冻干燥机 上海比朗仪器制造有限公司；R-120
型旋转蒸发器 瑞士 BÜCHI 公司； pH 酸度计 梅特勒-托利多；DHG-9070 电热鼓风
干燥箱 上海齐欣科学仪器有限公司；HH-2 数显恒温水浴锅 国华电器有限公司；培
养箱、超净工作台 苏州苏净净化设备厂。
1.3 试验方法
1.3.1 黑莓酒渣前处理
取新压榨分离的黑莓酒渣，用鼓风干燥箱 40℃烘 12～15 小时。将烘干的酒渣放入
粉碎机粉碎并用 200 目筛网过滤，然后置于棕色瓶内在 4℃下密封保存备用。
1.3.2 黑莓酒渣花色苷的提取
超声波辅助果胶酶法提取：将黑莓酒渣干粉按一定料液比加入到蒸馏水中，复水
30min，调节 pH，加入果胶酶 0.30%（w/w），超声辅助提取，获得花色苷提取液。将提
取液抽滤后在 40℃真空旋转蒸发至体积约 10～15mL，然后-80℃冷冻 24h，最后冷冻干
燥即得花色苷粗提物干品。
酸化乙醇法提取：参照王秀菊等优化的蓝莓酒渣中花色苷的提取条件进行提取[20]。
以体积分数为 70%、含 1%HCl 的乙醇水溶液为提取溶剂，料液比 1/25( g/mL )，提取温
度 70℃，提取时间 60min。
1.3.3 花色苷含量的测定
参照宋德群等报道的 pH 示差法测定提取花色苷的含量[21]。计算公式为：
C( mg/g ) = ( A0 - A1 )×V×n×M / (ε×m) (干重)。
1.3.4 单因素试验
按照 1.3.2.1 所述超声波辅助果胶酶法，分别研究了料液比、超声波功率、pH、加
酶量、提取温度和提取时间对花色苷提取量的影响，单因素试验设计见表 1。
表 1 单因素实验设计
Tab.1 Experimental design for single factor
因素 水平 提取条件
料液比（g/mL） 1/5, 1/10, 1/15, 1/20, 1/25
超声波 400W、加酶量 0.2%、
pH4.0、温度 50℃、时间 40min
超声波功率（W） 100, 200, 300, 400, 500 料液比 1/10、加酶量 0.2%、
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3
pH4.0、温度 50℃、时间 40min
pH 3.0, 3.5, 4.0, 4.5, 5.0
料液比 1/10、超声波 400W、
加酶量 0.2%、温度 50℃、时间 40min
加酶量（%） 0.1, 0.2, 0.3, 0.4, 0.5
料液比 1/10、超声波 400W、
pH4.0、温度 50℃、时间 40min
提取温度（℃） 30, 40, 50, 60, 70
料液比 1/10、超声波 400W、
pH4.0、加酶量 0.2%、时间 40min
提取时间（min） 10, 20, 30, 40, 50
料液比 1/10、超声波 400W、
pH4.0、加酶量 0.2%、温度 50℃、
以上每个单因素试验平行重复 3 次，结果取平均值。
1.3.5 响应面试验设计
在单因素试验结果基础上，选择料液比 1/15（g/mL），超声波功率 300W，pH4.5 条
件下，采用 Box-Behnken 设计，以加酶量、提取温度和提取时间 3 个因素为自变量，进
行响应面分析，以﹣1，0，﹢1 分别代表自变量的低、中、高三个水平，试验因素水平
设计见表 2。
表 2 响应面设计因素与水平
Tab.2 Factors and levels of response surface methodology
水平
因素
加酶量（%） 提取温度（℃） 提取时间（min）
-1 0.2 40 20
0 0.3 50 30
+1 0.4 60 40

1.3.6 黑莓酒渣花色苷的抗氧化性分析
1.3.6.1 抗油脂氧化能力测定
参照李颖畅等所述方法[22]：称取黑莓酒渣花色苷粗提物，按 0.2%、0.4%、0.6%、
0.8%和 1.0%添加量加入到 50g 猪油中进行试验，空白组不加花色苷粗提物，阳性对照
组加相同浓度的 Vc，每个样品重复 3 次。
1.3.6.2 DPPH 自由基清除能力测定
参照 Atoui 等所述方法[23]：分别取 1mL 浓度为 0.1mg/mL、0.2mg/mL、0.3mg/mL、
0.4mg/mL、和 0.5mg/mL 的黑莓酒渣花色苷水溶液进行试验，空白组用水代替样品，对
照组用同等浓度的 Vc 代替，每个样品重复 3 次。
1.3.6.3 羟基自由基清除能力测定
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参照李颖畅等所述方法[24]：分别取 1mL 浓度为 0.1mg/mL、0.2mg/mL、0.3mg/mL、
0.4mg/mL、和 0.5mg/mL 的黑莓酒渣花色苷水溶液进行试验，空白组用水代替样品，对
照组用同等浓度的 Vc 代替，每个样品重复 3 次。
1.3.7 黑莓酒渣花色苷的抑菌活性分析
参照韩永斌等所述方法[25]：将大肠杆菌和金黄色葡萄球菌分别培养至对数生长中
期，按 5%接种量分别接种于 100mL LB 液体培养基中，对照组中不添加花色苷，试验
组添加不同量花色苷，使其终浓度分别为 0.4 mg/mL、0.8 mg/mL、1.2 mg/mL、1.6 mg/mL
和 2.0 mg/mL。37℃培养，24h 后取样在 600nm 下测定其 OD 值。每个样品重复 3 次。
1.4 数据分析
利用 SPSS18.0 和 Design Expert V8.0 数据处理软件进行数据处理及统计分析。
2 结果与分析
2.1 单因素试验结果
在单因素试验中所用提取条件为料液比 1/10（g/mL）、超声波功率为 400W、pH4.0、
加酶量 0.2%、温度 50℃、提取时间 40min。
料液比对花色苷提取量的影响如表 3 所示，随着料液比的减小花色苷提取量逐渐升
高，当料液比为 1/25、1/20 和 1/15 时，花色苷提取量无显著差异，因此选择 1/15 为最
佳料液比。
表 3 料液比对花色苷提取量的影响
Tab.3 Effects of solid/ liquid on anthocyanins extraction yield
料液比/（g/mL） 1/5 1/10 1/15 1/20 1/25
花色苷
提取量/（mg/g）
2.40±0.05c 3.50±0.07b 4.00±0.09a 4.08±0.08a 4.10±0.07a
注：不同字母表示差异显著（P< 0.05），下同。
超声波功率对花色苷提取量的影响如表 4 所示，随着超声波功率的增加花色苷提取
量逐渐增加，当功率为 300W、400W 和 500W 时，花色苷提取量无显著差异，因此选
择 300W 为最佳提取功率。
表 4 超声波功率对花色苷提取量的影响
Tab.4 Effects of ultrasonic power on anthocyanins extraction yield
超声波功率/（W） 100 200 300 400 500
花色苷
提取量/（mg/g）
3.01±0.08c 3.50±0.05b 4.08±0.07a 4.16±0.04a 4.18±0.05a
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pH 对花色苷提取量的影响如表 5 所示，当提取液 pH 小于 4.5 时，花色苷提取量随
pH 的升高逐渐升高，pH 为 5.0 时，花色苷提取量开始降低，因此选择 pH4.5 为提取液
最佳 pH。
表 5 pH 对花色苷提取量的影响
Tab.5 Effects of pH on anthocyanins extraction yield
PH 3.0 3.5 4.0 4.5 5.0
花色苷
提取量/（mg/g）
2.97±0.04d 3.35±0.08c 3.95±0.05b 4.26±0.03a 4.18±0.05a

酶添加量对花色苷提取量的影响如表 6 所示，随着酶添加量的增大，花色苷提取量
逐渐增大，但当添加量大于 0.3%时花色苷提取量没有显著差异，所以选择最佳添加量
为 0.3%。
表 6 酶添加量对花色苷提取量的影响
Tab.6 Effects of enzyme dosage on anthocyanins extraction yield
酶添加量/（%） 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
花色苷
提取量/（mg/g）
3.98±0.06b 4.22±0.08b 4.51±0.05a 4.49±0.07a 4.54±0.04a
提取温度对花色苷提取量的影响如表7所示，50℃时提取量最高选为最佳提取温度；
60℃、70℃时提取量降低可能是因为高温使酶变性，其活力下降造成的。
表 7 提取温度对花色苷提取量的影响
Tab.7 Effects of extraction temperature on anthocyanins extraction yield
提取温度/（℃） 30 40 50 60 70
花色苷
提取量/（mg/g）
3.81±0.07b 4.02±0.06a 4.11±0.04a 3.88±0.05b 3.76±0.06b

提取时间对花色苷提取量的影响如表 8 所示，随着提取时间的延长，花色苷提取量
逐渐增大，当提取时间大于 30min 时提取量没有显著差异，所以选择 30min 为最佳提取
时间。
表 8 提取时间对花色苷提取量的影响
Tab.8 Effects of extraction time on anthocyanins extraction yield
提取时间/（min） 10 20 30 40 50
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花色苷
提取量/（mg/g）
3.45±0.09c 3.98±0.05b 4.23±0.07a 4.25±0.06a 4.27±0.08a
2.2 响应面优化试验结果
2.2.1 回归模型的建立及其显著性检验
响应面试验结果及其预测值如表 9 所示（3 次重复）。对表中试验数据进行多元回归
拟合，获得花色苷提取量对自变量的二次多项回归模拟方程如下：
Y=14.43750x1+0.13975x2–1.62500E-003x3–0.017500x1x2+4.12864E-016x1x3-7.50000E
-005x2x3 -23.00000x12-1.37500E-003x22+5.00000E-005x32-0.60250
式中 Y 表示花色苷提取量，x1、x2、x3分别为果胶酶添加量、提取温度和提取时间
的编码值。利用该方程所得预测值与试验值较为接近，说明该方程合理、拟合度高。
表 9 响应面试验设计及结果
Tab.9 Design and results of response surface methodology
自变量 应变量
顺序
编码值 含量 (mg/g)
x1 x2 x3
实测值
(Y1)
预测值
(Y0)
1 0 -1 1 4.63±0.11 4.61
2 0 1 1 4.58±0.09 4.56
3 0 -1 -1 4.76±0.07 4.77
4 -1 -1 0 4.34±0.10 4.37
5 0 1 -1 4.80±0.09 4.83
6 1 0 1 4.62±0.12 4.61
7 0 0 0 4.79±0.08 4.83
8 0 0 0 4.71±0.07 4.68
9 1 1 0 4.89±0.11 4.83
10 0 0 0 4.63±0.09 4.65
11 -1 1 0 4.55±0.13 4.52
12 1 0 -1 4.44±0.12 4.45
13 1 -1 0 4.70±0.08 4.73
14 -1 0 -1 4.52±0.09 4.51
15 -1 0 1 4.61±0.14 4.61
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所得方程的方差分析如表 10 所示。提取温度（x2）对花色苷提取量影响显著（p≤
0.05），果胶酶添加量二次项（x12）和提取温度二次项（x22）对花色苷提取量影响极显
著（p≤0.01），说明提取温度对花色苷提取量具有较大影响，果胶酶添加量对其有一定
影响，而提取时间对其影响较小。所得模型极显著（p≤0.01），失拟项不显著（0.7293），
且表 1 中预测值与试验值较接近，说明该回归模型合理，可很好解释响应值。
表 10 回归模型方差分析
Tab.10 ANOVA of Response Surface Model
来源 平方和 自由度 均方 F 值 Pr﹥F
x1 4.512×10-3 1 4.512×10-3 1.770 0.2405
x2 0.022 1 0.022 8.660 0.0321*
x3 4.512×10-3 1 4.512×10-3 1.770 0.2405
x1 x2 1.225×10-3 1 1.225×10-3 0.480 0.5187
x1 x3 -2.220×10-16 1 -2.220×10-16 -8.725×10-14 1.0000
x2 x3 2.250×10-4 1 2.250×10-4 0.088 0.7782
x1 2 0.200 1 0.200 76.750 0.0003**
x2 2 0.070 1 0.070 27.430 0.0034**
x3 2 9.231×10-5 1 9.231×10-5 0.036 0.8564
模型 0.280 9 0.032 12.430 0.0063**
残差 0.013 5 2.545×10-3
失拟项 5.325×10-3 3 1.775×10-3 0.480 0.7293
误差 7.400×10-3 2 3.700×10-3
总离差 0.300 14
2.2.2 响应面分析及优化
回归方程响应面结果如图 1～3 所示。由 3 个图可看出，任何两个交互因素的响应
面都存在最高点，酶添加量和提取温度对花色苷提取量的影响较大，而提取时间对其影
响较小。通过 Design Expert V8.0 软件分析得到黑莓酒渣中花色苷的最佳提取条件为加
酶量 0.30%、提取温度 48.39℃、提取时间 20min，在此提取条件下黑莓酒渣中花色苷提
取量的预测值为 4.86mg/g。为了验证该响应面结果的可行性，对所得最佳条件进行了优
化和验证试验。在加酶量、提取温度和提取时间分别为 0.30%、48℃和 20min 下进行 5
次试验，所得花色苷提取量平均值为 4.70mg/g，相对标准偏差为 0.07mg/g，说明该条件
下试验结果稳定；与预测值的相对误差为 3.29%，说明该响应面结果可靠。
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图 1 加酶量和提取温度对黑莓酒渣花色苷提取量影响的响应面图
Fig. 1 Surface model plot showing the effect of enzyme amount and extraction temperature on
anthocyanins content extracted from blackberry wine pomace










图 2 加酶量和提取时间对黑莓酒渣花色苷提取量影响的响应面图
Fig. 2 Surface model plot showing the effect of enzyme amount and
extraction time on anthocyanins content extracted from blackberry wine pomace







40.00
45.00
50.00
55.00
60.00
0.20
0.25
0.30
0.35
0.40
4.3
4.4
4.5
4.6
4.7
4.8
4.9
花
色
苷
含
量


加酶量 A:
提取温度 B:
20.00
25.00
30.00
35.00
40.00
0.20
0.25
0.30
0.35
0.40
4.3
4.4
4.5
4.6
4.7
4.8
4.9
花
色
苷
含
量


加酶量 A:
提取时间 C:
20.00
25.00
30.00
35.00
40.00
40.00
45.00
50.00
55.00
60.00
4.3
4.4
4.5
4.6
4.7
4.8
4.9
花
色
苷
含
量


提取温度 B:
提取时间 C:
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图 3 提取温度和提取时间对黑莓酒渣花色苷提取量影响的响应面图
Fig. 3 Surface model plot showing the effect of extraction temperature
and time on anthocyanins content extracted from blackberry wine pomace
2.3 超声波辅助果胶酶法与酸化乙醇法的比较
利用优化的超声波辅助果胶酶法提取黑莓酒渣中花色苷提取量为 4.70±0.11mg/g，
与常用的酸化乙醇法所得提取量 4.12±0.06mg/g 相比提高了 14.08%。这可能是因为花
色苷存在于黑莓皮渣细胞内部的液泡中，果胶酶酶解掉黑莓细胞壁中的果胶，促使细胞
破裂；另外，超声波的空化效应和振动作用，也促使黑莓细胞破裂；同时，超声波还有
助于果胶酶与细胞壁中果胶充分结合和作用[18-19]。因此在果胶酶和超声波的双重作用，
大大加速了黑莓细胞壁的溶解和细胞的破裂，从而促进了细胞内部花色苷的溶出。
2.4 黑莓酒渣中花色苷的抗氧化性分析
黑莓酒渣中花色苷的抗氧化能力测定结果如图 4 所示。图 4A 显示的是花色苷的抗
猪油氧化能力测定结果，随着花色苷添加量的增加，其抗猪油氧化的能力逐渐增强；添
加量为 0～0.8%时，随着添加量的增加，其抗氧化能力增加较快，添加量大于 0.8%时其
对猪油的抗氧化能力达到最大；和 Vc 相比，略小于同等添加量下 Vc 的抗猪油氧化能
力。图 4B 和 4C 分别显示的是提取花色苷的羟基自由基清除能力和 DPPH 自由基清除
能力测定结果。由两图可看出，随着花色苷浓度的增加其羟基自由基清除能力和 DPPH
自由基清除能力均逐渐增强；花色苷浓度在 0～0.4mg/mL 时，随着浓度的增加其羟基自
由基和 DPPH 自由基清除能力增加较快，浓度大于 0.4mg/mL 时两清除率均达 70%以上；
和同浓度的 Vc 相比其羟基自由基清除率略小，而其 DPPH 自由基清除率略大。这些结
果说明黑莓酒渣中花色苷具有一定的抗猪油氧化能力、羟基自由基清除能力和较强的
DPPH 自由基清除能力。









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图 4 黑莓酒渣中花色苷的抗氧化性
A：抗猪油氧化能力；B：羟基自由基清除能力；C：DPPH 自由基清除能力
注：不同字母表示差异显著（P< 0.05）
Fig. 4 Anti-oxidation activity of anthocyanins extracted from blackberry wine pomace
2.5 黑莓酒渣中花色苷的抑菌活性分析
黑莓酒渣中花色苷对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌生长影响的测定结果如图 5 所示。
由图可知，接种于 LB 液体培养基培养 24h 后，随着培养基中花色苷浓度的增加，大肠
0
30
60
90
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
浓度/mg/mL
DP
PH
自
由
基
清
除
率
/%
黑莓花色苷 Vc
0
3
6
9
12
15
0 0.2 0.4 0.6 0.8 1.0
添加量/%
PO
V/
mm
ol
/k
g
黑莓花色苷 Vc
0
20
40
60
80
100
0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5
浓度/mg/mL
羟
基
自
由
基
清
除
率
/%
黑酶花色苷 Vc
C
A
B
a
a
b
b
c
c
d
c c c
e
e
a a
b
b
c
c
d
d
e
e
e
e
a a
b
b
c
c
d
d
e
e
e
e
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杆菌和金黄色葡萄球菌的 OD600值均逐渐减小，在 0～1.2mg/mL 浓度范围内金黄色葡萄
球菌的 OD600 值下降更为明显；金黄色葡萄球菌和大肠杆菌在花色苷浓度分别大于
1.2mg/mL 和 1.6mg/mL 时，OD600值接近于 0（说明其没有生长）。这些结果说明了黑莓
酒渣中花色苷对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌具有一定的抑制作用；对金黄色葡萄球菌的
最低抑制浓度为 1.2mg/mL，对大肠杆菌的最低抑制浓度为 1.6mg/mL；在一定浓度范围
内对金黄色葡萄球菌的抑制作用要明显于对大肠杆菌的抑制作用。











图 5 黑莓酒渣花色苷对大肠杆菌和金黄色葡萄球菌生长的抑制作用
注：不同字母表示差异显著（P< 0.05）
Fig. 5 Inhibition effect of anthocyanins from
blackberry wine pomace on growth of E.coli and Staph.aureus
3 结论
响应面优化超声波辅助果胶酶法提取黑莓酒渣中花色苷得：当料液比为 1/15
（g/mL）、超声波功率为 300W、pH4.5 时，最佳提取条件为果胶酶添加量 0.30%、提取
温度 48℃、提取时间 20min，此条件下花色苷提取量为 4.70mg/g，和常用的酸化乙醇法
相比提高了 14.08%。所提花色苷具有一定的抗猪油氧化能力、羟基自由基清除能力和
较强的 DPPH 自由基清除能力，并可有效抑制大肠杆菌和金黄色葡萄球菌的生长。此研
究对提高黑莓酿酒副产物的经济价值和促进黑莓产业的发展具有重要意义。
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0
0.3
0.6
0.9
1.2
0 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0
浓度(mg/mL)
OD
值
/6
00
nm
大肠杆菌 金黄色葡萄球菌
a
b
b
c
c
d
d
a
d
c c c
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