免费文献传递   相关文献

高效液相色谱-串联质谱法分离鉴定黑莓花色苷



全 文 : 2009, Vol. 30, No. 14 食品科学 ※分析检测230
高效液相色谱-串联质谱法分离鉴定
黑莓花色苷
王卫东 1,2,李 超 1,许时婴 2,*
(1.徐州工程学院食品工程学院,江苏 徐州 221008;2.江南大学食品学院,江苏 无锡 214122)
摘 要:利用高效液相色谱与二极管阵列检测器 /电喷雾质谱联用技术研究了黑莓中的花色苷类化合物,分离鉴定
出四种花色苷,均为矢车菊素花色苷。除了一种花色苷是由阿拉伯糖和矢车菊合成苷外,其他花色苷的糖基均为
葡萄糖,并且有两种花色苷和脂肪酸发生酰化。矢车菊 3-O-葡萄糖苷是黑莓中的主要花色苷,占全部色素含量
的 76.92%,矢车菊 3-O-阿拉伯糖苷、矢车菊 3-O-丙二酸酰葡萄糖苷和矢车菊 3-O-草酸酐酰葡萄糖苷含量依次为
5.57%、2.76%和 14.75%。
关键词:黑莓;花色苷;高效液相色谱 -串连质谱(HPLC/ESI-MS/MS)
High Performance Liquid Chromatography-Electrospray Ionization Tandem Mass Spectrometry
for the Analysis of Anthocyanins in Blackberry Fruit
WANG Wei-dong1,2,LI Chao1,XU Shi-ying2,*
(1. College of Food Engineering, Xuzhou Institute of Technology, Xuzhou 221008, China;
2. School of Food Science and Technology, Jiangnan University, Wuxi 214122, China)
Abstract:The anthocyanin compositions in blackberry fruit were isolated using high performance liquid chromatography
(HPLC) equipped with a lichrospher C18 column and a DAD detector and characterized by UV spectrometry, gas chromatography
(GC) and electrospray ionization tandem mass spectrometry (ESI-MS/MS). A total of 4 anthocyanins were found to be isolated
on the C18 column. Among them were cyanidin (Cy) 3-O-glucoside (76.92%) , Cy 3-O-arabinoside (5.57%), Cy 3-O-
malonylglucoside(2.76%)and Cy 3-O-dioxalylglucoside (14.75%).
Key words:blackberry;anthocyanin;high performance liquid chromatography-electrospray ionization tandem mass
spectrometry (HPLC-ESI-MS/MS)
中图分类号:O657.63 文献标识码:A 文章编号:1002-6630(2009)14-0230-05
收稿日期:2008-10-28
作者简介:王卫东(1971-),男,讲师,博士,研究方向为功能性食品添加剂及配料。E-mail:wwd.123@163.com
*通讯作者:许时婴(1940-),女,教授,研究方向为功能性食品添加剂开发与应用。E-mail:syxu2005@hotmail.com
花色苷属于类黄酮化合物,具有黄烊盐离子的基本
结构,是果蔬及其产品呈现从红色到蓝色的物质基础,
具有抑制血小板凝固,预防血栓、心脏病,抗癌,延
缓衰老等作用[1-3]。黑莓(blackberry)富含花色苷和其他多
酚类物质,其提取物在体外具有很强的抗氧化活性[4],据
报道,每100g黑莓果实中的花色苷含量为67.4~230mg[5],
主要属于矢车菊类花色苷,其中含量最多的矢车菊 -3-O-
葡萄糖苷的含量占到花色苷总量的 80%以上[6-8]。此外,
Dugo等[9]在黑莓中发现了天竺葵和锦葵色素的花色苷。
由于黑莓品种繁多,且野生及人工改良的种类、成熟
度、气候以及种植条件都将导致花色苷含量和种类的极
大差异,加之花色苷类物质标准品少,因而,对它进
行检测分析很困难。本实验拟通过高效液相色谱连接光
电二极管阵列检测器和电喷雾质谱检测器联用技术(即液
质联用,HPLC-DAD-ESI-MS)得到花色苷类物质的紫外
光谱信息、分子量和分子结构的碎片信息,以期测定
黑莓中花色苷的成分及含量,为今后黑莓花色苷的研究
提供了一种准确且简便易行的方法。
1 材料与方法
1.1 材料、试剂与仪器
黑莓单冻(individually quick frozen,IQF),品种为
赫尔(Hull) 南京新得力食品有限公司。
甲醇(色谱纯) 国药集团化学试剂有限公司;L-鼠
231※分析检测 食品科学 2009, Vol. 30, No. 14
李糖、L- 阿拉伯糖、D- 木糖、D- 甘露糖、D- 葡萄糖
和D-半乳糖标准品 Sigma公司;其余化学试剂均为分
析纯。
Waters 2690高效液相色谱 -质谱联用仪、Waters 996
DAD检测器 美国Waters公司;Agilent 6890型气相
色谱仪 美国安捷伦公司;14A型 ShimadzuGC-2010气
相色谱仪(配以氢火焰离子化检测器) 日本岛津公司。
1.2 方法
1.2.1 花色苷提取
花色苷为水溶性色素,在中性或者碱性溶液中不稳
定,因此常用含有 0.1%~1%(V/V)的盐酸甲醇或乙醇溶
液提取,其中酸有利于提高花色苷的稳定性,防止非
酰基化的花色苷的降解。然而在提取液浓缩除去甲醇或
乙醇的过程中,由于盐酸浓度的提高可能导致花色苷的
降解。用丙酮提取花色苷的效率更高,重复性更好,
而且在真空浓缩时使用的温度更低,因此本实验采用丙
酮提取黑莓中的花色苷,提取液用 Sep-Pak C18小柱纯化
后进行HPLC-DAD-ESI-MS分析。
黑莓花色苷和多酚的提取参考 Trappey等[10]的方法
进行。分别称取 1 0g 黑莓果肉、黑莓种子或者黑莓浆
(将冷冻黑莓在 4℃解冻后打浆),加入 20ml 丙酮,超声
10min(超声波功率 350W)。布氏漏斗抽滤后,残渣用
70%(V/V)丙酮重复提取,直到提取液清澈无色。合并
提取液,与氯仿以 1:2(V/V)混合,上层水相在 30℃下真
空浓缩除去丙酮,用水定容到 25ml。
1.2.2 花色苷纯化
将 Sep-Pak-C18固相微萃取小柱依次用含有 0.01%盐
酸的甲醇、乙酸乙酯和 0.01%盐酸的水各 5ml活化,取
2ml花色苷提取液吸附在小柱上,用氮气吹 3min后,先
用 0.01%盐酸的水 10ml洗去柱子上吸附的糖、蛋白等水
溶性物质,再用 5m l 乙酸乙酯洗脱非花色苷多酚类物
质,花色苷用 0.01%盐酸的甲醇洗脱收集。将甲醇洗脱
液在 40℃下浓缩至干,溶解于 1ml含有 0.01%盐酸的甲
醇中,以备液相色谱和质谱的测定。
1.2.3 花色苷水解
将3ml 1.2.1节中所得的提取液用C18小柱纯化后,浓
缩至干,加入 6mol/L的盐酸溶液 3ml,充入氮气并加
塞,在 100℃的水浴中加热水解 45min后立即用冰水冷
却。将水解液吸附在 Sep-Pak-C 18小柱上,糖基部分用
0.01%的盐酸水溶液洗脱收集,花色素部分用 0.01%的
盐酸甲醇溶液回收。
1.2.4 花色苷糖基部分的鉴定
水解回收的含糖基部分冷冻干燥,将干燥后的糖
基加入试管中,再加入 10mg的盐酸羟胺和 0.5ml的吡
啶,摇匀后于 90℃加热 30min,冷却,再加入 0.5ml的
乙酸酐摇匀,在 90℃加热 30min,冷却后用于气相色
谱分析。
色谱分析采用气相色谱仪(配以氢火焰离子化检
测器 );色谱柱为石英毛细管柱( D B - 1 7 0 1,3 0 m ×
0.53mm),汽化室温度 250℃,检测器温度 260℃;空
气流量 400ml/min,H2流量 47ml/min,氮气压力64.9kPa,
流量 10ml/min;分流比为 30:1,进样量 0.5μl;程序升
温:起始温度 120℃,停留 2min,以 10℃/min升温至
190℃,停留 2min,以3℃/min 升温至240℃,停留5min。
1.2.5 液相色谱和质谱条件
液相色谱条件:色谱柱:Lichrospher C18柱(2.0×
250mm,5μm);流动相:A 液为甲醇,B 液为 0.4%
的甲酸。线性梯度洗脱:0~30min,A 液从 5 % 升至
4 0%;3 0~4 0 mi n,A 液从 4 0% 升至 8 0 %。流速:
0.3ml/min。柱温 35℃,进样量 10μl。DAD 检测器,
200~700nm全扫描。
质谱条件:正离子扫描(ESI+,m/z 200~1200),毛
细管电压:3.99kV;锥孔电压:25V;光电倍增器电压:
650V;离子源温度:100℃;脱溶剂气温度:250℃。
2 结果与分析
2.1 黑莓花色苷提取液的液相色谱和紫外光谱
100
50
0
1




(%
)
时间(min)
5 10 15 20 25 30
23
4
图1 黑莓花色苷提取物的高效液相色谱图(检测波长520nm)
Fig.1 HPLC chromatogram of blackberry anthocyanin extract
(detected at 520 nm)
图 1为黑莓花色苷提取物以 520nm为检测波长时的
高效液相色谱图,检测到 4个主要的色谱峰,各个色谱
峰的保留时间、光谱信息和相对含量见表 1。由表 1可
峰 保留时间 λVis-max* A440/Aλ 相对含量
号 (min) (nm) (×100) (%)
1 15.5 516 33.81 76.92
2 18.0 519 32.57 5.57
3 18.7 519 33.31 2.76
4 19.2 519 31.86 14.75
表1 黑莓花色苷提取物的液相色谱和光谱特性
Table 1 Liquid chromatographic and spectral characteristics of
anthocyanins from blackberry
注:* .可见光区最大吸收波长。
Vis-max
2009, Vol. 30, No. 14 食品科学 ※分析检测232
100
50
0
222.6




(%
)
波长(nm)
200 400 600
279.6
515.6
峰 1
100
50
0
199.6




(%
)
波长(nm)
200 400 600
峰 2
220.6
279.6
518.6
100
50
0




(%
)
波长(nm)
200 400 600
峰 3
220.6 279.6
518.6
100
50
0




(%
)
波长(nm)
200 400 600
峰 4
518.6
280.6
212.6
图2 色谱峰1、2、3、4的紫外-可见吸收图谱
Fig.2 UV-Vis spectra of peaks 1, 2, 3 and 4 (see Fig.1)
100
50
0




(%
)
m/z
200 400 600
100
50
0




(%
)
5 10 15 20 25 30
时间(min)
20.45
213.3
287.3
图3 花色苷水解后花色素的HPLC(检测波长520nm)和ESI+-MS图
Fig.3 HPLC chromatogram and ESI+-MS spectrum of cyanidin in
blackberry anthocyanins (detected at 520 nm)
30
26
22
18
14
10
6
2


(m
V
)
时间(min)
9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22
11
.5
63
16
.2
30
图4 花色苷经酸水解后糖基的气相色谱图
Fig.4 Gas chromatogram of sugar moiety in blackberry anthocyanins
合物。
花色苷的紫外吸收光谱还可提供花色苷元、糖基取
代模式的信息。花色苷分子中 C3羟基总是以糖基化形
式存在,进一步的糖基化可以发生在 C5上的羟基,也
可能发生于 C7、C3、C5上的羟基。根据 Harborne[11]
的研究,花色苷的 A440与 AλVis-max的比值与糖基的取代位
置有关,C3,C5取代双糖花色苷的 A440/AλVis-max值是C3
取代单糖花色苷的一半,因此根据 AλVis-max与A440的比值,
结合查阅相关文献就可以判断糖基的位置。由表 1 可
见,四种花色苷的 A 440/AλVis -max值都在 30%以上,根据
Hong等[12]的研究,双糖花色苷的 A440/AλVis-max值小于 20%,
因此这些较高的值表明糖取代基处在花色苷的C3或C7
上的羟基。四个色谱峰在 300~330nm处都没有明显的
吸收峰存在,说明花色苷分子中的糖没有和羟基苯乙烯
酸发生酰化,有可能存在脂肪酸酰化(如果有酰化基团
存在) [11 ,13]。
2.2 花色苷酸水解后的糖基和配基
花色苷在盐酸的作用下,糖基被水解,糖苷配基
(水解产物的非糖部分,即花色素)的液相色谱图见图 3。
从图 3 可以看出,黑莓中花色苷的糖苷配基只有一种。
由于花色素分子中不再含有糖基,极性减弱,所以保
留时间延长到 20.45min。从质谱图中可以看出,此花色
素的分子离子[M]+为m/z287.3,对应于矢车菊花色素的
分子量。黑莓中只有矢车菊类花色苷存在,使得在鉴
别黑莓产品的真伪上更为方便,因为在其中掺入葡萄或
草莓的成分,都会出现更多种类的花色苷。
见,峰 1(保留时间 15.5min)占了总峰面积的 76.92%, 峰
2、3、4分别占总峰面积的 5.57%、2.76%和 14.75%。
紫外 -可见光谱很早就被人们应用于花色苷的结构
鉴定。花色苷是类黄酮化合物,在 280nm和 520nm左
右的两个波长处有特征吸收峰,而干扰花色苷分析的其
他类黄酮化合物(如黄酮、黄烷酮、黄酮醇、黄烷醇等)
在紫外区 300~350nm和 240~285nm有特征吸收峰,因
此通过测定多酚类物质的最大吸收波长即可判断其是否
为花色苷类多酚。图 1中四个色谱峰的紫外 -可见光谱
图见图 2。由图 2可知,这四个色谱峰在 510~520nm
处都有最大吸收,因此可以确定它们都是花色苷类化
233※分析检测 食品科学 2009, Vol. 30, No. 14
100
50
0




(%
)
m/z
200 400 600 800 1000 1200
213.3
287.2
449.2
OH
OH
OH
OH
OH
OH
HOO
O
OH
O+
峰 1
图5 黑莓花色苷(峰1和峰2)ESI+-MS图及结构
Fig.5 ESI+-MS spectra and structure of blackberry anthocyanins
(peaks 1 and 2)
100
50
0




(%
)
m/z
200 400 600 800 1000 1200
287.2
535.3
OH
OH
OH
OH
OH
OH
OH
O+
HOO
O
O
O O
峰 3
100
50
0




(%
)
m/z
200 400 600 800 1000 1200
287.3 峰 4
593.4
OH
OH
OH
OH
OH
OH
OH
HO
OO
O
OOOO
O
O+
图6 黑莓花色苷(峰3和峰4)ESI+-MS图及结构
Fig.6 ESI+-MS spectra and structure of blackberry anthocyanins
(peaks 3 and 4)
100
50
0




(%
)
m/z
200 400 600 800 1000 1200
285.1
447.1
591.3
609.3
623.3 934.5 1185.8
图7 黑莓花色苷(峰4)ESI- MS图
Fig.7 ESI-MS spectrum of blackberry anthocyanin (peak 4)
花色苷水解后的糖基部分用气相色谱检测,结果
如图 4所示,图 4中两个色谱峰的保留时间为 11.563min
和 16.230min。根据标准糖样的保留时间,确定糖基是
阿拉伯糖和葡萄糖。对峰面积进行归一化定量,其含
量分别占总糖基的 8.25%和 91.75%。
2.3 花色苷的质谱分析
图 1中峰 1的质谱图见图 5,其分子离子[M+H]+为
m/z 449.2,碎片离子为 m/z 287.2,是由分子离子失去
了一个质量数为 162的中性碎片(脱水六碳糖基)而得。对
应于矢车菊葡萄糖苷或者其他六碳糖苷。由于花色苷用
盐酸水解后的糖中六碳糖只有葡萄糖,因此峰 1所代表
的花色苷是葡萄糖和矢车菊形成的苷。花色素分子中的
游离 3-羟基可破坏发色团的稳定性,因此它总是以糖基
化形式存在。综上所述,确定峰 1为矢车菊 3-O -葡萄
糖苷。到目前为止,矢车菊 3-O-葡萄糖苷被认为是黑
莓中最常见和含量最高的花色苷[8]。
峰 2的分子离子[M+H]+为m/z 419.2(图 5),碎片离
子为 m/z 287,是由 m/z 419.2失去一个质量数为 132的
中性碎片而形成。132正是五碳糖和花色素成苷时失去
一分子水时的质量数。结合花色苷水解物的气相色谱
图,可知此五碳糖为阿拉伯糖。和峰 1 的花色苷一样,
只有一个糖时,成苷位置在 3位,因此峰 2为矢车菊 3-
O-阿拉伯糖苷。Dugo等[9]和Wada等[14]也认为黑莓中与
矢车菊成苷的五碳糖是阿拉伯糖,但 Sapers等[15]则认为
五碳糖是木糖。
峰 3的分子离子[M+H]+为m/z 535.3(图 6),碎片离
子为 m/z 287,由 m/z 535失去一个质量数为 248的中性
碎片而形得。由于黑莓花色苷水解后的糖基只有葡萄糖
和阿拉伯糖,所以这个中性碎片中的糖基可能是葡萄糖
或者阿拉伯糖。如果是葡萄糖,则这个中性碎片可能
为葡萄糖(质量数 162)和丙二酸(质量数 86)酰化形成的;
如果 248的中性碎片由阿拉伯糖形成,则它可能与苹果
酸(质量数 116)发生酰化。迄今为止,关于黑莓中的酰
化花色苷尚未有苹果酸酰化的报道,因此推断峰 3为矢
车菊 3-O-丙二酸酰葡萄糖花色苷,与 Fang-Chiang[16]的
报道一致。
峰 4的分子离子[M+H]+为m/z 593.4(图 6),碎片离
子为 m/z 287,由m/z 593失去一个质量数为 306的中性
碎片而得。由于花色苷正离子质谱图中碎片信息很少,
所以对峰 4的分析又参照了其负离子质谱图(图 7)。从负
100
50
0




(%
)
m/z
200 400 600 800 1000 1200
287.2 峰 2
419.2
OH
OH
OH
OH
OH
OH
HO
O
O+
O
213.2
2009, Vol. 30, No. 14 食品科学 ※分析检测234
离子质谱图可以看出,峰 4的[M-H]- m/z为 591.3,碎
片离子m/z 285是矢车菊素的负离子,m/z 447是矢车菊
素 -脱水葡萄糖的负离子,由分子离子失去质量数为 144
的碎片形成,因此推断峰 4为矢车菊 3-O-草酸酐酰葡萄
糖花色苷。
3 结 论
采用高效液相色谱 -电喷雾质谱联用技术可有效地
分离分析黑莓中花色苷类物质。实验结果表明,黑莓
中存在的花色苷为矢车菊 3-O-葡萄糖苷、矢车菊 3-O-阿
拉伯糖苷、矢车菊 3-O-丙二酸酰葡萄糖花色苷和矢车菊
3-O-草酸酰葡萄糖花色苷。矢车菊 3-O-葡萄糖苷为主要
的花色苷,其含量约占黑莓花色苷总量的 80%。
参考文献:
[1] CACACE J E, MAZZA G. Optimization of extraction of anthocyanins
from black currants with aqueous ethanol[J]. J Food Sci, 2003, 68(1):
240-248.
[2] BRIDLE P, TIMBERLAKE C F. Anthocyanins as natural food colours-
selected aspects[J]. Food Chem, 1997, 58(1): 103-109.
[3] KONG J M, CHIA L S, GOH N K, et al. Analysis and biological
activities of anthocyanins[J]. Phytochemistry, 2003,64: 923-933.
[4] WANG S Y, LIN H. Antioxidant activity in fruits and leaves of blackberry,
raspberry, and strawberry varies with cultivar and developmental stage
[J]. J Agric Food Chem, 2000(8): 140-146.
[5] MOYER R A, HUMMER K E, FINN C E, et al. Anthocyanins, phenolics,
and antioxidant capacity in diverse small fruits: Vaccinium, Rubus, and
Ribes[J]. J Agric Food Chem, 2002, 50(2): 519-525.
[6] LIDIJA J, MARIJAN S, MARTINA M K, et al. Anthocyanin content
and antioxidant activity of various red fruit juices[J]. Dtsch Lebensm-
Rundsch, 2007, 103(2): 58-64.
[7] SELLAPPAN S, AKOH C C, KREWER G. Phenolic compounds and
antioxidant capacity of Georgia-grow blueberries and blackberries[J]. J
Agri Food Chem, 2002, 50(8): 2432-2438.
[8] STINTZING F C, STITZING A S, CARLE, et al. A novel zwitterionic
anthocyanin from evergreen blackberry (Rubus laciniatus Willd.)[J]. J
Agric Food Chem, 2002, 50: 396-399.
[9] DUGO P, MONDELLO L, RRANTE G. Identification of Anthocyanins
in berries by narrow-bore high- performance liquid chromatography with
electrospray ionization detection[J]. J Agric Food Chem, 2001, 49(8):
3987-3992.
[10] TRAPPEY II A, BAWADI H A, BANSODE R R,et al. Anthocyanin
profile of mayhaw (Cretaegus opaca)[J]. Food Chem, 2005, 91(4): 665-
671.
[11] HARBORNE J B. Comparatibe biochemistry of the flavonoids[M].
New York: Academic Press, 1967.
[12] HONG V, WROLSTAD R E.Characterization of anthocyanin-contain-
ing colorants and fruit juices by HPLC/photodiode array detection[J]. J
Agric Food Chem, 1990a, 38: 698-708.
[13] HONG V, WROLSTAD R E. Use of HPLC separation/photodiode array
detection for characterization of anthocyanins[J]. J Agric Food Chem,
1990, 38(3): 708-715.
[14] WADA L, OU B. Antioxidant activity and phenolic content of Oregon
caneberries[J]. J Agric Food Chem, 2002, 50(12): 3495-3500.
[15] SAPERS G M, HICKS K B, BURGHER A M, et al. Anthocyanin
patterns in ripening thornless blackberries[J]. J Am Soc Hortic Sci,
1985, 111(6): 945-950.
[16] FANG-CHIANG H J. Anthocyanin pigments,nonvolatile acid and sugar
composition of blackberries[D]. Corvalllis: Oregon State Univeersity,
2000.