全 文 ：中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 42 卷 第 3 期 2011 年 3 月

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西洋参不同器官中皂苷量与鲨烯合成酶和鲨烯环氧酶基因表达的相关性
蒋世翠，刘伟灿，王 义，孙春玉，李校堃，张美萍﹡
吉林农业大学 生物反应器与药物开发教育部工程中心，吉林 长春 130118
摘 要：目的 探讨西洋参不同组织器官中总皂苷和单体皂苷量的差异及其与人参皂苷合成途径中鲨烯合成酶（SQS）和鲨
烯环氧酶（SQE）基因表达量之间的关系。方法 以 4 年生西洋参的 14 个组织器官为材料，索氏回流法提取总皂苷，采用
HPLC 法测定 6 种单体皂苷（人参皂苷 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2和 Rd）的量，用香草醛-硫酸比色法测定总皂苷量。通过实
时荧光定量 PCR 分析 SQS 和 SQE 基因在西洋参 14 个组织器官中的表达量。结果 总皂苷和单体皂苷量在西洋参不同组织
器官中差异非常显著（P＜0.01）。除人参皂苷 Rb2外，各单体皂苷及总皂苷之间均呈非常显著的正相关关系（P＜0.01）。SQS
和 SQE 基因在 14 个组织器官中的表达量具有非常显著的差异（P＜0.01）并与人参皂苷 Re、Rg1、Rb1、Rd 和总皂苷量之间
有显著的正相关关系（P＜0.05）。结论 西洋参不同组织器官中皂苷的量存在差异，SQS 和 SQE 基因在人参皂苷合成途径
中起着极其重要的作用。
关键词：西洋参；人参皂苷；实时荧光定量 PCR；基因表达；鲨烯合成酶；鲨烯环氧酶
中图分类号：R282.12 文献标志码：A 文章编号：0253 - 2670(2011)03 - 0579 - 06
Correlation between ginsenoside accumulation and SQS and SQE gene expression
in different organs of Panax quinquefolius
JIANG Shi-cui, LIU Wei-can, WANG Yi, SUN Chun-yu, LI Xiao-kun, ZHANG Mei-ping
Engineering Research Center of Bioreactor and Pharmaceutical Development, Ministry of Education, Jilin Agricultural University,
Changchun 130118 , China
Abstract: Objective To examine the biological accumulation of total ginsenosides and their monomers, and determine their
relationships with the expression of squalene synthase (SQS) and squalene epoxidase (SQE) genes that are involved in the ginsenoside
biosynthetic pathway in different organs of Panax quinquefolius. Methods Fourteen organs of four year-old P. quinquefolius were
used as materials. Total ginsenosides were extracted using the Soxhlet ginsenoside extraction method, and the contents of total
ginsenosides and their monomers Rg1, Re, Rb1, Rc Rb2 and Rd in the organs were determined by the Vanillin-sulfuric Colorimetry and
HLPC methods, respectively. The expressions of the SQS and SQE genes in the organs were profiled by real-time quantitative PCR.
Results The biological accumulation of total ginsenosides and each of their monomers varied significantly (P＜0.01) in different
parts of P. quinquefolius.Except for ginsenoside monomer Rb2, there were significantly positive correlations between total ginsenoside
and monomers Re, Rg1, Rb1 and Rd (P＜0.01). The expressions of both SQS and SQE genes were extremely significantly different
among the 14 plant parts（P＜0.01) and significantly positively correlated with the biological accumulation of total ginsenoside and
monomers, Re, Rg1, Rb1 and Rd (P＜0.05). Conclusion The results indicate that the SQS and SQE genes play the important roles in
the biosynthesis of total gingenosides and their monomers.
Key words: Panax quinquefolius L.; ginsenoside; real-tme quantitative PCR; gene expression; squalene synthase (SQS); squalene
epoxidase (SQE)
西洋参中人参皂苷为次生代谢产物，按其皂苷
元的不同分为：达玛烷型的四环三萜类皂苷、齐墩
果酸型五环三萜皂苷、奥克梯隆型皂苷。此外还有
一些其他类型的皂苷[1-3]。目前为止发现 60 多种人
参单体皂苷。
人参皂苷生物合成途径划分为 3 个阶段：第 1
阶段通过甲羟戊酸（MVA）途径和丙酮酸（MEP）
途径，合成的主要中间产物异戊烯基焦磷酸（IPP）

收稿日期：2010-09-20
基金项目：吉林省科技厅资助项目（20100712，20080715）；长春市科技局资助项目（长科合 2007135 号，长科合 2008138 号）
作者简介：蒋世翠（1982—），女，博士研究生，从事药用植物功能基因组学研究。
*通讯作者 张美萍 E-mail: wzhaoyun@tom.com
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及其异构体二甲基烯丙基焦磷酸（DMAPP）。其中，
MVA 途径是普遍公认的皂苷合成主要途径。在植物
中，2 个合成途径是否完全独立进行还有待研究[4-5]。
第 2 个阶段是 IPP 通过牻牛儿基焦磷酸合成酶
（GPS）、法呢基焦磷酸合成酶（FPS）、鲨烯合成酶
（SQS）和鲨烯环氧酶（SQE）催化合成 2，3-氧化
鲨烯。第 3 阶段是 2，3-氧化鲨烯经过环化、羟基
化、糖基化对三萜碳环骨架进行复杂修饰，最终形
成了不同类型的人参皂苷。目前，代谢途径中的一
些过程尚不清楚，有待于更深入的研究。
本研究对西洋参 14 个组织器官中的 6 种单体
皂苷及总皂苷的量进行分析，并对人参皂苷合成途
径中 SQS 和 SQE 基因表达差异进行分析。探讨了
西洋参中人参皂苷量与 SQS 和 SQE 基因表达量的
关系，为阐明人参皂苷合成途径提供理论依据。
1 材料与仪器
1.1 材料
四年生西洋参 2009 年 9 月采自吉林省靖宇县参
场，经吉林农业大学生命科学学院王义教授鉴定，
14 个组织器官分别是：须根、侧根、根皮（周皮和
韧皮部）、根心（木质部）、芦头、茎、小叶柄、大
叶柄、叶片、果茎、果柄、果肉、种皮、种仁。
人参皂苷 Rg1 对照品（批号 110703-200726），
人参皂苷 Re 对照品（批号 110754-200822），人参
皂苷 Rb1 对照品（批号 111715-200802）均购于中国
药品生物制品检定所。
1.2 仪器
高效液相色谱仪 1100（安捷伦科技有限公司）；
紫外分析仪 755B（上海精密科学仪器有限公司）；
实时定量PCR仪 MX3000P（美国Stratagene公司）；
核酸蛋白测定仪（SmartSpec plus ，Bio-Rad 公司）；
DNase II （MBI 公司）。
2 方法
2.1 单体皂苷量的测定[5]
2.1.1 色谱条件 色谱柱为 Hypersil-C18 柱（250
mm×4.6 mm，5 μm）；流动相：水（A）-乙腈（B），
采用梯度洗脱方式，梯度洗脱程序见表1。柱温35 ℃；
检测波长 203 nm，进样量 20 μL。
2.1.2 供试品溶液的制备 将西洋参 14 个组织器
官烘干研磨成粉，过 0.425 mm 筛；精确称取 1 g，
滤纸包好，加氯仿 80 mL，80 ℃水浴脱脂脱色 6 h，
挥去氯仿。利用索氏提取器，加甲醇 80 mL，加热
回流 8 h；将甲醇提取液减压浓缩至干，残渣加水
表 1 梯度洗脱程序
Table 1 Gradient elution
时间/min 乙腈/% 体积流量/(mL·min−1)
0.00 18.0 1.300
32.00 18.0 1.300
50.00 28.0 1.000
70.00 28.0 1.000
100.00 35.0 1.000
110.00 18.0 1.300
115.00 18.0 1.300
20 mL，用水饱和正丁醇等体积反复萃取 3 次，合
并正丁醇液，80 ℃水浴蒸干；10 mL 甲醇稀释定容，
制备成供试品溶液。
2.1.3 对照品溶液制备 精密称取 6 种人参皂苷对
照品 Rg1、Re、Rb1、Rc、Rb2和 Rd 各适量置于 5 mL
量瓶中，用甲醇（色谱级）溶解、定容。稀释成质
量浓度为 0.960、0.970、0.980、0.992、0.103、0.107
mg/mL 的混合溶液，作为标准储备液备用。
2.1.4 样品测定 取 14 个组织器官样品供试品溶
液，按上述色谱条件测定，记录色谱峰面积，计算
各单体皂苷的量。对照品的 HPLC 图谱见图 1。

1-Rg1 2-Re 3-Rb1 4-Rc 5-Rb2 6-Rd
图 1 人参皂苷对照品 HPLC 图
Fig. 1 HPLC chromatogram of reference ginseng saponins
2.2 香草醛-硫酸比色法测定总皂苷[6]
2.2.1 标准曲线的绘制 精密称取人参皂苷 Re，用
甲醇配制成质量浓度为 2 mg/mL 的对照品储备液。
将储备液稀释成质量浓度为 0.01、0.05、0.2、0.5、
1.0、1.5 mg/mL 的对照品溶液，各取 0.1 mL 分别置
于 10 mL 比色管中，冰水浴，分别加入 16%香草醛
醇溶液 0.5 mL，77%硫酸 5 mL，摇匀，60 ℃水浴
10 min，再冰水浴 15 min，记录 544 nm 波长处的吸
光度（A）值，绘制标准曲线。以 A 值为纵坐标，
人参皂苷 Re 质量浓度为横坐标，进行回归，得方
程 Y＝0.409 5X＋0.096 2，r＝0.998 8。

20 40 60 80 100
t / min
1 2
3
4 5
6
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2.2.2 总皂苷的测定 精密吸取各样品溶液 0.1 mL，
方法同“2.2.1”项。按 A 值计算各组织器官中总皂
苷量。
2.3 基因表达量测定
2.3.1 RNA 提取 利用 Trizol 法提取 14 个部位的
总 RNA：取样品 100 mg 至液氮预冷研钵中，加液
氮研成粉，置预冷离心管中加 1 mL Trizol 试剂，混
匀室温放置 5 min。加 200 μL 氯仿，振荡混匀后室
温放置 15 min。12 000 r/min，4 ℃离心 10 min，上
清液转至新离心管中，加 0.5 mL异丙醇混匀，−20 ℃
静置 5～10 min。12 000 r/min，4 ℃离心 10 min，
弃上清。75%乙醇洗涤 2 次，室温晾干。DEPC 处
理水溶解 RNA 样品至一定体积。总 RNA 用
DNase II 处理，用核酸蛋白测定仪进行质量分数
与浓度测定。
2.3.2 RNA 反转录 参考 RevertAidTM first strand
cDNA Synthesis Kit（MBI 公司）反转录试剂的说明，
合成 cDNA 第一链，反应总体积为 20 μL。
2.3.3 引物的合成 引物由北京华大基因组合成。
SQS 引物序列：5’-CAGAGGGGTAGTGAAAATGA
GACG-3’，5’-TGTCAACCTTGGACTTCAGCATAC
3’；SQE 引物序列：5’-CGTGGCTATCTATGGCGTT
G-3’，5’-GGGAGCTCTGTAGTAAGCAG-3’。
2.3.4 实时定量 PCR PCR 反应体系：MasterMix
（ABI） 20 μL，正向引物 2 μL，反向引物 2 μL，cDNA
模板 16 μL，共 40 μL。PCR 反应循环参数：95 ℃、
5 min，95 ℃、30 s，50～60 ℃、30 s，72℃、30 s。
每个模板重复 3 次。数据的收集和分析通过软件
SDS v2.3（ABI）实现。样品 A 相对于样品 B 的基
因表达水平通过公式计算。
2−ΔΔT=2−[(CT 目的基因－CT 内参)样品 A－(CT 目的基因－CT 内参)样品 B]
3 结果与分析
3.1 西洋参不同组织器官中单体皂苷量的比较
6 种单体皂苷的量在 14 个组织器官间差异明
显。主要集中在根部、叶片和果实，茎和种子（种
皮和种仁）中皂苷量很低。在根心中，Rc 和 Rb2
的量接近于 0；在种皮和种仁中，单体皂苷量均近
于 0。单体皂苷在各部分分布情况见表 2。
3.2 西洋参不同组织器官中总皂苷量的比较
西洋参 14 个部位中总皂苷量的分布见表 3。
3.3 西洋参中人参皂苷成分相关关系分析
对 14 个组织器官中的各单体皂苷及总皂苷成
分进行单因素方差分析，分析结果 P 值均为 0（P＜
0.001），达到非常显著水平。西洋参 14 个组织器官
间的各种皂苷成分均具有非常显著差异。对不同单
体皂苷和总皂苷量进行相关性分析，结果见表 4。两
个对象之间相关密切程度的统计分析指标用相关系
数 r 表示。r 值的范围在−1～＋1。r＞0 为正相关，
表 2 西洋参不同组织器官中单体皂苷的量（ sx ± ）
Table 2 Contents of monomer saponins in different organs of P. quinquefolius ( sx ± )
编号 部 位 Rg1/% Re/% Rb1/% Rc/% Rb2/% Rd/%
1 须根 0.38±0.02 2.71±0.28 4.52±0.40 2.06±0.13 0.28±0.03 2.41±0.13
2 支根 0.12±0.00 1.09±0.02 2.85±0.01 0.61±0.00 0.09±0.01 1.24±0.01
3 根皮 0.14±0.01 0.76±0.02 2.02±0.02 0.24±0.00 0.04±0.00 0.42±0.00
4 根心 0.05±0.01 0.51±0.01 1.57±0.09 0.00±0.00 0.00±0.00 0.36±0.01
5 芦头 0.23±0.04 1.59±0.02 3.89±0.21 0.23±0.01 0.07±0.01 1.69±0.05
6 茎 0.02±0.00 0.18±0.01 0.08±0.00 0.00±0.00 0.02±0.00 0.14±0.01
7 大叶柄 0.03±0.00 0.37±0.03 0.05±0.00 0.01±0.00 0.09±0.00 0.52±0.16
8 小叶柄 0.09±0.01 0.69±0.08 0.08±0.01 0.02±0.00 0.14±0.02 0.48±0.07
9 叶片 0.38±0.02 1.71±0.06 0.32±0.01 0.19±0.02 0.48±0.01 1.45±0.07
10 果茎 0.08±0.01 0.68±0.02 0.19±0.01 0.08±0.00 0.21±0.02 0.93±0.08
11 果柄 0.14±0.00 1.83±0.02 0.45±0.01 0.30±0.01 0.78±0.02 1.52±0.01
12 果肉 0.04±0.00 1.63±0.06 0.14±0.00 0.58±0.01 1.16±0.05 0.85±0.00
13 种皮 0.00±0.00 0.03±0.00 0.00±0.00 0.01±0.00 0.02±0.00 0.02±0.01
14 种仁 0.00±0.00 0.02±0.01 0.03±0.00 0.00±0.00 0.01±0.00 0.02±0.00
低于检出限不能定量的计为 0，下同
Results which are lower than the detection limits and can not be fixed quantity.were made as 0, same as below
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表 3 总皂苷质量分数
Table 3 Contents of total saponins
编号 部 位 总皂苷/%
1 须根 12.95±1.52
2 支根 6.08±0.14
3 根皮 4.44±0.23
4 根心 2.96±0.16
5 芦头 8.30±0.45
6 茎 0.56±0.13
7 大叶柄 1.24±0.24
8 小叶柄 1.73±0.54
9 叶片 9.87±0.34
10 果茎 2.95±0.32
11 果柄 6.50±0.12
12 果肉 5.37±0.21
13 种皮 0.00±0.00
14 种仁 0.00±0.00
表 4 西洋参组织器官中皂苷成分相关性分析
Table 4 Correlation of ginseng saponins in different
organs of P. quinquefolius
成分 Rg1 Re Rb1 Rc Rb2 Rd TS
Rg1 1 0.817** 0.573** 0.625** 0.173 0.823** 0.885**
Re 0.817** 1 0.585** 0.782** 0.574** 0.928** 0.934**
Rb1 0.573** 0.585** 1 0.698** 0.188 0.695** 0.694**
Rc 0.625** 0.782** 0.698** 1 0.252 0.752** 0.778**
Rb2 0.173 0.574** 0-.188 0.252 1 0.354* 0.349
Rd 0.823** 0.928** 0.695** 0.752** 0.354* 1 0.924**
Rd 0.885** 0.934** 0.694** 0.778** 0.349 0.924** 1
**相关性极显著（P＞0.01），*相关性显著（P＞0.05）
**Correlation is very significant (P＞0.01), *Correlation is significant
(P＞0.05)
r＜0 为负相关。r＝0 表示不相关；r 的绝对值越接
近 1，相关越密切；越接近于 0，相关越不密切。
双尾检验（2-tailed）结果用 P 值表示：P＞0.05，
代表两者间没有明显的相关关系，P＜0.05 代表两
因素间呈现显著的相关关系，P＜0.01 代表非常显
著相关。
由西洋参 14 个组织器官皂苷成分的相关关系
分析可知：除人参皂苷 Rb2 以外，各单体皂苷及总
皂苷之间均呈现正相关关系，Re、Rg1、Rc、Rd、
Rb1 和总皂苷彼此间具有明显的相关关系。说明各
皂苷成分之间有共同增减趋势，这可能是由于它们
有共同的基础代谢机制。人参皂苷 Rb2与其他皂苷
成分之间的P＞0.05，表明Rb2与其他单体皂苷Rb1、
Rg1 及总皂苷之间没有相关关系，也可能是因为 Rb2
在多数部位的量较低。
3.4 实时定量 PCR 过程中的电泳检测
在荧光定量 PCR 过程中，在选定的人参属中
GAPDH 基因和 ACTB 基因作为内参相比，GAPDH
更稳定，主要对 GAPDH 作为内参基因的表达量进
行分析。
3.5 西洋参不同组织器官中SQS和SQE基因表达量
将须根作为参比部位，假设须根基因表达量为
100%，计算其他部位的相对基因表达量。结果见表 5。
表 5 西洋参不同组织器官中 SQS 和 SQE 基因相对表达
（2n，n=3，平均值）
Table 5 Expression rate for GAPDH genes as relative
standard (2n, n=3, average)
编号 部 位 SQE/% SQS/%
1 须根 100.00 100.00
2 支根 52.03 116.39
3 根皮 114.12 162.90
4 根心 4.95 39.48
5 芦头 130.12 150.32
6 茎 15.39 7.01
7 大叶柄 1.37 38.44
8 小叶柄 10.96 33.31
9 叶片 139.30 142.91
10 果茎 25.91 66.67
11 果柄 111.67 116.67
12 果肉 77.43 77.96
13 种皮 0.00 0.00
14 种仁 0.00 0.00
低于检出限不能定量的计为 0.
Result is lower than the detection limits and can not be fixed quantity.
we make it 0.
对西洋参不同组织器官中 SQS 和 SQE 基因的
相对表达量进行单因素方差分析，分析结果 P 值均
为 0（P＜0.01），达到极显著水平。西洋参不同组
织器官间 SQS和 SQE基因表达量具有极显著差异。
3.6 基因间的相关性分析
分析结果表明，SQS、SQE 之间均存在显著的
正相关关系（P＜0.05）。各基因的表达量在西洋参
不同组织器官协同增减，这可能是由于皂苷的合成
是由它们的协同作用决定的。
3.7 基因表达规律曲线分析
SQS、SQE 基因在西洋参各组织器官（1～14）
的表达量曲线图，见图 2。
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图 2 SQS 和 SQE 表达曲线
Fig. 2 Curve of SQS and SQE gene exprassion
西洋参中 SQS、SQE 基因在西洋参各组织器官
的相对表达规律一致，基因在各组织器官基因表达
量有着相同的增减趋势。
3.8 人参皂苷量与基因的关系分析
SQS、SQE 与单体皂苷 Rc、Rb2之间不具有显
著的相关关系。并且人参皂苷 Rc、Rb2 在西洋参 14
个组织器官的相对量较低。这说明，SQS、SQE 基
因可能不是人参皂苷 Rc、Rb2 形成的决定因素。
SQS、SQE 与人参皂苷 Re、Rg1、Rb1、Rd、
总皂苷之间有显著的正相关关系（P＜0.05）见表 6，
皂苷量是基因差异表达量决定的。SQS、SQE 是控
制皂苷合成的关键酶。
表 6 皂苷量与 SQS 和 SQE 表达量相关性分析
Table 6 Correlation between saponins and SQS
and SQE gene exprassion
基因 Rg1 Re Rb1 Rc Rb2 Rd 总皂苷
SQS 0.713** 0.695** 0.567* 0.344 0.287 0.689** 0.820**
SQE 0.790** 0.801** 0.491 0.419 0.449 0.739** 0.872**
**在 0.01 水平（双侧）上显著性相关，*在 0.05 水平（双侧）上显著性相关
**Correlation is significant at the 0.01 level，*Correlation is significant at the
0.05 level
4 讨论
人参皂苷为人参属植物中主要活性成分，是由
皂苷元和糖相连构成的糖苷类化合物。人参皂苷骨
架是通过类异戊二烯合成途径由 2，3 氧化鲨烯环化
形成。此环化部位是一个分支点使其代谢进入两个
途径：一个途径形成甾醇类化合物，另一个途径形
成各种三萜类骨架[7]，并有细胞色素 P450 的参与[8]。
三萜类骨架再经过各种修饰，如在不同种糖基转移
酶作用下形成各种单体皂苷[9-11]。
形成三萜皂苷是一个非常复杂的过程。在这个
过程中涉及许多酶，控制这些酶的基因和代谢途径
中一些过程尚不清楚。Lee 等[12]将 SQS 全长 cDNA
序列转移至人参胚性细胞中，获得再生植株，利用
HPLC 检测转基因人参总皂苷是对照的 3 倍，说明
SQS 在人参皂苷合成中起着非常重要的作用。Han
等[13]利用RNAi技术研究了SQE基因在人参皂苷合
成中的作用，通过 HPLC 检测发现 SQE 基因沉默
后，人参总皂苷量降低了 84.5%，说明 SQE 在人参
皂苷合成中起到了关键作用。
本研究通过测定西洋参 14 个组织器官中单体
皂苷、总皂苷的量，分析单体皂苷、总皂苷在西洋
参中 14 个组织器官的相关关系，同时还分析 SQS、
SQE 基因在 14 个组织或器官的表达量。总皂苷和
单体皂苷在 14 个组织或器官的量：除人参皂苷 Rb2
以外，各单体皂苷及总皂苷之间均呈现极显著的正
相关关系；西洋参 14 个组织或器官的 SQS 和 SQE
基因的表达量具有极显著差异；SQS、SQE 与人参
皂苷 Re、Rg1、Rb1、Rd、总皂苷之间有显著的正
相关关系（P＜0.05）。结果表明 SQS、SQE 基因与
西洋参 14 个组织器官中单体皂苷、总皂苷之间呈
正态分布。说明皂苷的合成是酶基因相互作用的结
果。皂苷量是基因差异表达量决定的，SQS、SQE
是控制人参皂苷合成的关键酶基因。
参考文献
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180


120


60


0
SQE
SQS
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表
达
量
/%

组织器官
中草药 Chinese Traditional and Herbal Drugs 第 42 卷 第 3 期 2011 年 3 月

• 584 •
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关于推荐 2011 年中国药学会-赛诺菲安万特青年生物药物奖的通知
中国药学会-赛诺菲安万特青年生物药物奖是中国药学会与赛诺菲-安万特公司共同设立的青年生物药物奖，旨在奖励中
国优秀青年生物药物工作者，致力于生物药物新药研究。该奖项面向全国，从 2009 年起每年评选一次，每次奖励 8 名从事
生物药物研究的青年学者，奖励金额（含税）为每人 20 000 元人民币，同时颁发获奖证书。现将有关事宜通知如下。
一. 评奖条件
申请人需要具备以下条件：中国药学会会员； 年龄 40 周岁以下（1971 年 1 月 1 日以后出生） 遵纪守法，学风正派； 从
事生物药物领域研究并取得优秀成绩。
二. 申报方式
１. 申请人直接向中国药学会申报；
２. 申请人通过中国药学会各专业委员会以及各省、市、自治区药学会向中国药学会申报。
三. 推荐材料
推荐书电子版请从中国药学会网站 www.cpa.org.cn 上“关于推荐 2011 年中国药学会-赛诺菲安万特青年生物药物奖的通
知”中下载。
四. 申报截止日期
2011 年 4 月 30 日，以邮戳为准。
五. 评审和颁奖
中国药学会组织评审，评审专家组由生物药物领域专家组成。2011 年颁奖时间和地点另行通知。可从中国药学会网站
（www.cpa.org.cn）查询有关事宜。
六. 申报地点和联系人
地 址：北京市朝阳区建外大街四号建外 SOHO 九号楼 1802 室；邮 编：100022
联系人：孙文虹（010-58699280-819）、范玫杉（010-58699280-820）
E-mail: sunwenhong2002@163.com；yxhfms@163.com

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