全 文 ：果寡糖对断奶前仔猪胃肠道组织形态、消化酶、
有机酸及乳酸杆菌菌群的影响
杭苏琴，时祺，丁立人，朱伟云
（南京农业大学消化道微生物研究室，江苏 南京２１００９５）
摘要：选择６窝（８～１０头仔猪／窝）健康的新生（杜长大）仔猪，随机分为对照组和试验组，每组３个重复，７日龄
（７ｄ）开始对照组辅喂常规开食料，试验组用果寡糖（ＦＯＳ）代替１％的对照组开食料（按干物质折算），２３日龄（２３
ｄ）（断奶）时结束试验，试验开始和结束时每个重复选取１头仔猪屠宰，采集胰脏、胃肠道各部位组织和食糜样品，
研究ＦＯＳ对断奶前仔猪胃肠道组织形态、消化酶、有机酸和乳酸杆菌菌群的影响。结果表明，ＦＯＳ组仔猪小肠绒
毛高度、绒毛高度与隐窝深度之比均高于对照组 （犘＜０．０５）；ＦＯＳ显著提高了仔猪胰腺和十二指肠中淀粉酶活性
（犘＜０．０５），蛋白酶和脂肪酶虽有增加但差异不显著；ＦＯＳ显著提高了仔猪胃肠道内容物中挥发性脂肪酸（ＶＦＡｓ）
浓度（犘＜０．０５），降低了胃中乳酸浓度（犘＜０．０５），显著提高了胃肠道乳酸杆菌菌群的相似性和多样性（犘＜０．０５），
增加了乳酸杆菌数量（犘＞０．０５）。提示，ＦＯＳ能够促进断奶前仔猪小肠形态的发育，减缓固体饲料对其损伤，一定
程度上增加消化酶活性，提高胃肠道中总ＶＦＡｓ浓度，促进乳酸杆菌的增殖，这可能有利于仔猪平稳度过断奶期。
关键词：断奶前仔猪；果寡糖；肠道形态；消化酶活性；有机酸；乳酸杆菌
中图分类号：Ｓ８１５．７　　文献标识码：Ａ　　文章编号：１００４５７５９（２０１４）０２０２６００８
犇犗犐：１０．１１６８６／ｃｙｘｂ２０１４０２３１　　
　　仔猪断奶是以母乳喂养为主向以固体饲料为主转变的过程，在此期间日粮、环境的变化及宿主的不适应都会
引起肠道微生态发生变化，极易导致仔猪出现腹泻、体重下降，甚至致死［１２］，抗生素类产品因其既能抑制病原微
生物的增殖又能促进动物机体的生长而被广泛地用于断奶仔猪日粮中［３］，但近年来耐药菌株的大量出现和药残
问题的日益突出，寻找抗生素的替代品迫在眉睫。功能性低聚糖和纤维类饲料，因可选择性地促进肠道内双歧杆
菌和乳酸杆菌等有益菌的增殖，抑制大肠杆菌等有害菌的生长，产生大量乳酸和挥发性脂肪酸（ｖｏｔｉｌｅｆａｔｔｙ
ａｃｉｄｓ，ＶＦＡｓ），改善肠道微生态环境，进而促进动物肠道健康，发挥益生作用而在动物生产中备受关注［４９］。果寡
糖（ＦＯＳ）是断奶仔猪生产中使用较多的低聚糖之一，ＦＯＳ是蔗糖分子以β１，２糖苷键结合几个（８个以下）Ｄ果
糖而形成的寡糖，果寡三糖，果寡四糖和果寡五糖是最常见的饲料添加剂形式［１０］。王亚军等［１１］报道，断奶仔猪
日粮中添加０．２％果寡糖便能显著提高日增重和采食量，降低料重比及腹泻的发生；车向荣等［１２］报道，３５日龄仔
猪日粮中添加果寡糖可显著提高外周血Ｔ淋巴细胞数和ＩｇＧ水平，ＦＯＳ组仔猪腹泻率降低了６６％；Ｍｉｋｋｅｌｓｅｎ
和Ｊｅｎｓｅｎ［１３］报道，２８日龄的断奶仔猪饲喂ＦＯＳ后后肠丁酸浓度显著提高，乙酸浓度显著降低，即ＦＯＳ改变了微
生物的发酵方式；Ｔｒｅｖｉｓｉ等［１４］报道，断奶仔猪日粮中添加２％的ＦＯＳ促进了Ｔｏｌ样受体２和４（ＴｏｌｌｉｋｅＲｅｃｅｐ
ｔｏｒ，ＴＬＲ２和ＴＬＲ４）及肿瘤坏死因子的表达，发挥了免疫调节作用。但是并不是所有的研究者都发现了ＦＯＳ
的积极作用，Ｍｉｋｋｅｌｓｅｎ等［１５］报道，断奶仔猪日粮中添加４０ｇ／ｋｇＦＯＳ没有促进动物的生长，不能促进断奶仔猪
肠道双歧杆菌和乳酸杆菌等有益菌的增殖和ＶＦＡｓ浓度的增加，认为ＦＯＳ的添加剂量和仔猪年龄与此有关。上
述研究均集中在断奶后仔猪，且关注的是ＦＯＳ对仔猪生长性能、肠道微生物区系和有机酸浓度等的影响，而仔猪
的生长与消化道的发育、消化酶的分泌有直接关系，可是断奶前仔猪开食料中添加ＦＯＳ对肠道形态结构、消化酶
２６０－２６７
２０１４年４月
　　　草　业　学　报　　　
　　　ＡＣＴＡＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＥＳＩＮＩＣＡ　　　
第２３卷　第２期
Ｖｏｌ．２３，Ｎｏ．２
收稿日期：２０１３０４１２；改回日期：２０１３０５１３
基金项目：国家９７３项目“猪利用氮营养素的机制及营养调控”（２０１３ＣＢ１２７３０１）资助。
作者简介：杭苏琴（１９６９），女，新疆石河子人，副教授，博士。Ｅｍａｉｌ：ｓｕｑｉｎｈａｎｇ６９＠ｎｊａｕ．ｅｄｕ．ｃｎ
通讯作者。
分泌、有机酸浓度及乳酸杆菌菌群等影响的报道却很
少，故本研究通过在７～２３ｄ仔猪开食料中添加ＦＯＳ，
研究ＦＯＳ对仔猪肠道发育、消化酶和乳酸杆菌菌群的
影响，探讨ＦＯＳ作为断奶前仔猪开食料调控剂用于缓
解断奶应激的可能性。
１　材料与方法
１．１　试验动物与设计
２０１０年１２月于江苏省某猪场选择出生日龄、胎
次相近的６窝健康新生杜长大仔猪，随机分为对照组
开食料（对照组）和实验组开食料＋１％ ＦＯＳ（ＦＯＳ
组），每组３个重复。ＦＯＳ（广东江门量子高科生物股
份有限公司）纯度高于９０％。仔猪开食料配方及营养
水平见表１。试验于仔猪７ｄ开始至２３ｄ（断奶）结束，
分别于试验开始和结束时，每窝随机选择１头健康仔
猪屠宰采样。试验期间仔猪饲养于半封闭、漏缝地板
式猪舍，自然采光，每天清扫，保持清洁卫生，试验期间
自由采食、饮水。
１．２　样品采集与处理
颈静脉放血处死仔猪，打开腹腔取出胃肠道，按组
织学区分各肠段，收集如下样品。
空、回肠组织样：剪取空、回肠组织各２ｃｍ，磷酸
盐缓冲液（ＰＢＳ）漂去肠内容物后，置组织样于４％多聚
甲醛中常温下充分固定，用于制作常规石蜡切片测定
小肠绒毛高度和隐窝深度。
胰脏组织样和十二指肠内容物：摘取胰脏，剥除脂
肪和结缔组织；分离十二指肠取内容物，液氮中保存胰
脏和十二指肠内容物，用于脂肪酶、胰蛋白酶、淀粉酶
活性测定。
胃、回肠、盲肠和结肠内容物：取各部位内容物２
ｍＬ－２０℃保存，用于ＶＦＡｓ和乳酸浓度测定。
１．３　指标测定及方法
空、回肠组织绒毛高度和隐窝深度测定：切片后，
常规ＨＥ染色，每头猪、每个肠段制５张切片，利用图
表１　断奶前仔猪开食料配方和营养水平 （风干基础）
犜犪犫犾犲１　犆狅犿狆狅狊犻狋犻狅狀犪狀犱狀狌狋狉犻犲狀狋犾犲狏犲犾狊狅犳狊狋犪狉狋犲狉犳犲犲犱狊犻狀
狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊（犪犻狉犱狉狔犫犪狊犻狊）
原料
Ｉｎｇｒｅｄｉｅｎｔｓ
对照组
ＦＯＳｆｒｅｅ
ＦＯＳ组
ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
玉米Ｃｏｒｎ（％） ３８．５ ３５．０
碎米Ｂｒｏｋｅｎｒｉｃｅ（％） １３．７ １５．０
膨化大豆Ｅｘｔｒｕｄｅｄｓｏｙｂｅａｎ（％） １０．０ １３．０
大豆粕Ｓｏｙｂｅａｎｍｅａｌ（％） １０．８ １０．０
鱼粉Ｆｉｓｈｍｅａｌ（％） ８．３ ７．５
乳清粉 Ｗｈｅｙｐｏｗｄｅｒ（％） １２．７ １２．０
蔗糖Ｓｕｃｒｏｓｅ（％） ２．０ ２．５
果寡糖ＦＯＳ（％） － １．０
预混料Ｐｒｅｍｉｘ１（％） ４．０ ４．０
营养水平 Ｎｕｔｒｉｅｎｔｌｅｖｅｌ２
消化能 Ｄｉｇｅｓｔｉｂｌｅｅｎｅｒｇｙ（ｋＪ／ｋｇ） １３９．３４ １３９．０７
粗蛋白Ｃｒｕｄｅｐｒｏｔｅｉｎ（％） １９．６６ １９．６６
钙Ｃａ（％） ０．８０ ０．７８
总磷 ＴｏｔａｌＰ（％） ０．６９ ０．６７
赖氨酸Ｌｙｓ（％） １．４６ １．４６
蛋氨酸 Ｍｅｔ（％） ０．３９ ０．３８
苏氨酸 Ｔｈｒ（％） ０．８９ ０．８９
异亮氨酸Ｉｌｅ（％） ０．７６ ０．７７
　注：１每ｋｇ预混料中含有：维生素Ａ１５５８００ＩＵ；维生素Ｄ３２６９００ＩＵ；
维生素Ｅ９６３ＩＵ；维生素 Ｋ３１４４ｍｇ；维生素Ｂ１３２ｍｇ；维生素Ｂ２２６６
ｍｇ；维生素Ｂ６４５ｍｇ；维生素Ｂ１２１．０５ｍｇ；烟酸１３００ｍｇ；泛酸７２６ｍｇ；
叶酸２５ｍｇ；生物素３．７５ｍｇ；铜４１０１．６ｍｇ；铁２６９０．８ｍｇ；锌２７１６．０
ｍｇ；锰１０２４．０ｍｇ；硒７．２ｍｇ；碘１５．３８ｍｇ。２营养水平为计算值。
　Ｎｏｔｅ：１Ｐｅｒｋｉｌｏｇｒａｍｏｆｐｒｅｍｉｘｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ：ｖｉｔａｍｉｎＡ１５５８００ＩＵ；ｖｉ
ｔａｍｉｎＤ３２６９００ＩＵ；ｖｉｔａｍｉｎＥ９６３ＩＵ；ｖｉｔａｍｉｎＫ３１４４ｍｇ；ｖｉｔａｍｉｎＢ１３２
ｍｇ；ｖｉｔａｍｉｎＢ２２６６ｍｇ；ｖｉｔａｍｉｎＢ６４５ｍｇ；ｖｉｔａｍｉｎＢ１２１．０５ｍｇ；ｎｉａｃｉｎ
１３００ｍｇ；ｐａｎｔｏｔｈｅｎｉｃａｃｉｄ７２６ｍｇ；ｆｏｌｉｃａｃｉｄ２５ｍｇ；ｂｉｏｔｉｎ３．７５ｍｇ；Ｃｕ
４１０１．６ｍｇ；Ｆｅ２６９０．８ｍｇ；Ｚｎ２７１６．０ｍｇ；Ｍｎ１０２４．０ｍｇ；Ｓｅ７．２ｍｇ；Ｉ
１５．３８ｍｇ．２Ｎｕｔｒｉｅｎｔｌｅｖｅｌｉｓｃａｌｃｕｌａｔｅｄｖａｌｕｅｓ．
像分析系统对仔猪空肠、回肠的绒毛高度和隐窝深度进行测量，每张切片中至少选取５个视野进行计量。
胰蛋白酶、淀粉酶、脂肪酶活力测定：采用试剂盒（南京建成生物工程有限公司）的方法，严格按照说明书操
作。
ＶＦＡｓ和乳酸含量测定：岛津ＧＣ１４Ｂ型气相色谱仪测定ＶＦＡｓ浓度［１６］；试剂盒（南京建成生物工程有限公
司）的方法测定乳酸浓度。
ＰＣＲ／ＤＧＧＥ和ＲｅａｌｔｉｍｅＰＣＲ技术分析乳酸杆菌菌群结构和数量，提取２３ｄ胃、回肠、盲肠和结肠内容物
总ＤＮＡ［１７］，用于扩增乳酸杆菌特异的１６ＳｒＲＮＡ基因片段［１８］，扩增产物进行ＤＧＧＥ（ｄｅｎａｔｕｒｉｎｇｇｅｌｇｒａｄｉｅｎｔｅ
ｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓ，变性梯度凝胶电泳法）。ＤＧＧＥ用８％聚丙烯酰胺凝胶，尿素浓度梯度为３５％～４５％，首先２００Ｖ
１６２第２３卷第２期 草业学报２０１４年
电泳１０ｍｉｎ，然后８５Ｖ电泳１２ｈ，电泳结束后进行硝酸银染色［１８］。ＤＧＧＥ凝胶经扫描（ＧＳ８００，ＢｉｏＲａｄ）后，用
分子分析家软件包（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＡｎａｌｙｓｔ，ＢｉｏＲａｄ）进行条带数、相似性和多样性分析。乳酸杆菌定量分析（Ｒｅａｌ
ｔｉｍｅＰＣＲ）的引物及反应条件均参照文献［１９］，以本实验室自行分离自仔猪肠道的乳酸杆菌犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊ｓｐ．
Ｓ１为模板制作标准曲线。
１．４　数据处理及统计分析
数据经Ｅｘｃｅｌ２００７初步处理后，采用ＳＰＳＳ（１６．０）中的独立狋检验进行差异显著性分析，以犘＜０．０５作为显
著性判断标准。数据以３个重复的平均值±标准差（ｍｅａｎ±ＳＤ）表示。
２　结果与分析
２．１　ＦＯＳ对断奶前仔猪小肠形态发育的影响
由表２看出，２３ｄ时ＦＯＳ组仔猪空、回肠绒毛高度均高于对照组，回肠绒毛高度显著高于对照组（犘＜
０．０５），空、回肠绒毛高度与隐窝深度之比也显著高于对照组（犘＜０．０５），但两组仔猪空、回肠隐窝深度差异不
显著。
表２　犉犗犛对断奶前仔猪小肠粘膜形态的影响
犜犪犫犾犲２　犈犳犳犲犮狋狅犳犉犗犛狅狀犿狌犮狅狊犪犾犿狅狉狆犺狅犾狅犵狔狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊
指标
Ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ
空肠Ｊｅｊｕｎｕｍ
对照组ＣｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐＦＯＳ组ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
回肠Ｉｌｉｕｍ
对照组ＣｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐＦＯＳ组ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
绒毛高度 Ｖｉｌｕｓｈｅｉｇｈｔ（μｍ） ４５９．０９±４６．９１ ５３８．２６±４２．９６ ３０５．７８±８．６５ｂ ４１８．４２±２０．４５ａ
隐窝深度Ｃｒｙｐｔｄｅｐｔｈ（μｍ） １２５．７４±８．８３ １０７．６６±１２．６７ ９４．８１±４．１４ ９６．２１±５．４５
绒毛高度／隐窝深度 Ｖｉｌｕｓｈｅｉｇｈｔ／ｃｒｙｐｔｄｅｐｔｈ（Ｖ／Ｃ） ３．６６±０．３６ｂ ５．２３±１．０２ａ ３．２４±０．１７ｂ ４．３６±０．０９ａ
　注：同行数据后不同字母表示差异显著（犘＜０．０５）。下同。
　Ｎｏｔｅ：Ｔｈｅｖａｌｕｅｓｉｎｔｈｅｓａｍｅｒｏｗｗｉｔｈｄｉｆｆｅｒｅｎｔｌｅｔｔｅｒｓｍｅａｎｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅ（犘＜０．０５）．Ｔｈｅｓａｍｅｂｅｌｏｗ．
２．２　ＦＯＳ对断奶前仔猪胰腺和十二指肠酶活性的影响
表３为２３ｄ时胰脏和十二指肠中酶的活性，ＦＯＳ组仔猪胰腺、十二指肠中脂肪酶和蛋白酶活性虽高于对照
组，但差异不显著（犘＞０．０５），而淀粉酶活性ＦＯＳ组仔猪显著高于对照组（犘＜０．０５）。
表３　犉犗犛对断奶前仔猪胰腺和十二指肠酶活性的影响
犜犪犫犾犲３　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犉犗犛狅狀狋犺犲犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋狔犻狀狆犪狀犮狉犲犪狊犪狀犱犱狌狅犱犲狀狌犿狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊
指标
Ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ
胰脏Ｐａｎｃｒｅａｓ
对照组ＣｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐＦＯＳ组ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
十二指肠 Ｄｕｏｄｅｎｕｍ
对照组ＣｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐＦＯＳ组ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
脂肪酶Ｌｉｐａｓｅ（Ｕ／ｇｐｒｏｔ） ３８５８．５±１２２．２ ３８８７．９±２８１．１ ４２．９±３．７ ４９．０±３．７
蛋白酶Ｐｒｏｔｅａｓｅ（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ） ３２２．７±３５．８ ３２６．６９±５．１ ５６６．４±２４．７ ６３３．４±３７．２
淀粉酶 Ａｍｙｌａｓｅ（Ｕ／ｍｇｐｒｏｔ） １９６．７±１４．０ｂ ３７４．２±１５．４ａ ４６．７±３．８ｂ ６０．３±５．１ａ
２．３　ＦＯＳ对断奶前仔猪胃肠道内容物中ＶＦＡｓ和乳酸浓度的影响
表４为仔猪２３ｄ时胃肠道各部位ＶＦＡｓ及乳酸浓度，ＦＯＳ组仔猪胃肠道各部位乙酸和ＴＶＦＡ浓度均显著
高于对照组 （犘＜０．０５），回肠和结肠丙酸浓度显著高于对照组（犘＜０．０５），盲肠中丁酸浓度显著高于对照组（犘＜
０．０５）。乳酸结果显示，ＦＯＳ组仔猪胃中乳酸浓度显著低于对照组（犘＜０．０５），回肠和盲肠乳酸浓度虽低于对照
组，但差异不显著（犘＞０．０５）。
肠道各部位乙酸、丙酸和丁酸占ＴＶＦＡ比例表现一定差异性（数据未列出），对照组和ＦＯＳ组胃中乙酸比分
别为８３．９％和８２．８％，丙酸比为１２．２％和１４．４％，丁酸比为３．９％和２．６％；回肠中乙酸比分别为９１．２％和
２６２ ＡＣＴＡＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＥＳＩＮＩＣＡ（２０１４） Ｖｏｌ．２３，Ｎｏ．２
９０．４％，丙酸比为４．５％和５．６％，丁酸比为４．３％和４．０％；结肠中乙酸比分别为７０．４％和７７．９％，丙酸比为
１８．７％和１４．６％，丁酸比为１０．９％和７．４％；盲肠中乙酸比分别为７２．３％和７３．５％，丙酸比为１９．２％和１６．３％，
丁酸比为７．８％和９．５％。由此看出，相对于胃和回肠，结肠和盲肠乙酸比下降、丙酸和丁酸比上升，回肠和胃也
略有差异，回肠表现为丙酸比急剧下降、丁酸比大幅上升，上述变化在两组之间差异不明显。
表４　犉犗犛对断奶前仔猪胃肠道犞犉犃狊和乳酸浓度的影响
犜犪犫犾犲４　犈犳犳犲犮狋狊狅犳犉犗犛狅狀犞犉犃狊犮狅狀犮犲狀狋狉犪狋犻狅狀犻狀犵犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狋狉犪犮狋犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊 ｍｍｏｌ／Ｌ
挥发性
脂肪酸
ＶＦＡｓ
胃Ｓｔｏｍａｃｈ
对照组
Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ
ＦＯＳ组
ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
回肠Ｉｌｅｕｍ
对照组
Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ
ＦＯＳ组
ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
结肠Ｃｏｌｏｎ
对照组
Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ
ＦＯＳ组
ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
盲肠Ｃａｅｃｕｍ
对照组
Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ
ＦＯＳ组
ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ
乙酸
Ａｃｅｔａｔｅ
５．９２±０．７７ｂ ９．８３±０．６９ａ １１．０４±０．８３ｂ １５．９３±０．５６ａ ３１．６２±３．５７ｂ ６４．７５±２．５３ａ ５９．９６±４．０８ｂ ７６．４９±５．７１ａ
丙酸
Ｐｒｏｐｉｏｎａｔｅ
０．８６±０．３７ １．７１±０．４１ ０．５５±０．０３ｂ ０．９９±０．１３ａ ８．４２±０．９０ｂ １２．１６±１．２６ａ １５．８１±０．０９ １６．９９±１．４９
丁酸
Ｂｕｔｙｒａｔｅ
０．２８±０．０７ ０．３２±０．０９ ０．５２±０．１２ ０．７１±０．１１ ４．８８±１．０１ ６．１８±０．７５ ６．４１±０．３５ｂ ９．９３±０．９６ａ
总挥发酸
ＴｏｔａｌＶＦＡ
７．０５±０．９０ｂ １１．８７±０．７３ａ １２．１１±０．８４ｂ １７．６３±０．６５ａ ４４．９２±３．１７ｂ ８３．０８±３．９０ａ ８２．１８±４．３２ｂ１０４．４１±６．４３ａ
乳酸
Ｌａｃｔｉｃａｃｉｄ
１７．７１±２．５９ａ １１．４９±１．２３ｂ ２．１７±０．３６ １．４７±０．１２ １．７３±０．３２ ２．０５±０．１４ １．７３±０．２４ １．３４±０．２４
２．４　ＦＯＳ对断奶前仔猪消化道中乳酸杆菌菌群结构和数量的影响
图１为２３ｄ时仔猪胃肠道内容物中乳酸杆菌的变性梯度凝胶电泳（ＤＧＧＥ）图谱，两组仔猪胃、回肠、结肠和
盲肠都有共有条带１，但条带２和３只出现在ＦＯＳ组仔猪，说明ＦＯＳ对乳酸杆菌菌群有一定影响。图谱经聚类
分析发现，胃和回肠乳酸杆菌根据相似程度分为明显的４簇（图２ａ），同部位、同组的３头仔猪乳酸杆菌相似性较
高归为１簇（对照组仔猪ｃ回肠除外），说明肠道部位和组别对乳酸杆菌菌群有较大影响，但也能看出，相同部位
对照组和ＦＯＳ组仔猪乳酸杆菌相似性也较高；在盲肠和结肠（图２ｂ），乳酸杆菌菌群也表现了组别和肠道部位的
差异，此时同组、不同部位的乳酸杆菌相似性较高，如对照组仔猪盲肠和结肠归为１簇（相似性约６２％），ＦＯＳ仔
猪盲肠和结肠归为１簇（相似性约７０％），２簇之间相似性约５７％。ＤＧＧＥ图谱多样性分析结果表明（图３），ＦＯＳ
组仔猪胃、回肠、盲肠和结肠乳酸杆菌菌群多样性指数均高于对照组，在胃和盲肠ＦＯＳ组显著高于对照组（犘＜
０．０５）。定量分析仔猪胃肠道中乳酸杆菌，结果表明（图４），ＦＯＳ组仔猪每ｇ胃内容物中乳酸杆菌拷贝数低于对
照组，每ｇ回肠、盲肠和结肠内容物中乳酸杆菌拷贝数高于对照组，但差异不显著（犘＞０．０５）。
３　讨论
３．１　ＦＯＳ对断奶前仔猪小肠形态的影响
小肠是机体消化、吸收营养物质的重要场所，绒毛高度与隐窝深度反映了肠道的功能状况。本研究显示，
ＦＯＳ组仔猪空、回肠绒毛高度均高于对照组（回肠差异显著），两组隐窝深度差异虽不显著，但ＦＯＳ组仔猪绒毛
高度与隐窝深度之比均显著高于对照组，说明ＦＯＳ组仔猪小肠绒毛受损程度低于对照组，仔猪开食料中添加
ＦＯＳ可有效缓解固体日粮对小肠绒毛的损伤，利于仔猪消化吸收营养物质。据文献报道，ＦＯＳ减少绒毛受损的
原因可能与肠道细胞的增殖、上皮更新和微生物区系的改变有关［２０２１］，但具体机制尚不清楚。
３．２　ＦＯＳ对断奶前仔猪消化酶活性的影响
断奶猪消化道分泌酶能力减弱和酶活性降低可影响养分的消化和吸收。本实验结果表明，ＦＯＳ显著提高了
断奶前仔猪胰腺和十二指肠淀粉酶活性，提高了脂肪酶、蛋白酶活性。Ｘｕ等［２０］报道，生长猪每ｋｇ日粮中添加４
３６２第２３卷第２期 草业学报２０１４年
或６ｇＦＯＳ时十二指肠胰蛋白酶、淀粉酶和总蛋白酶活性显著提高，但对胰脏酶的活性无影响，他认为酶活性的
提高与ＦＯＳ促进双歧杆菌和乳酸杆菌的增殖有关，因为这些有益菌能释放酶并促进酶活的提高［２２］。本研究虽
未测定双歧杆菌的变化，但也发现ＦＯＳ能促进某些种类乳酸杆菌的富集，这可能是消化酶活性提高的部分原因。
Ｇａｏ［２３］报道，消化酶活性与肠道形态结构也有关系，当病原微生物如大肠杆菌较高时，肠道绒毛易受损也会抑制
消化酶的分泌和活性，本研究ＦＯＳ组仔猪绒毛受损程度低于对照组，对消化酶的抑制作用相对也较小。还有研
究报道，消化道的长度、食糜通过肠道的速度和ＦＯＳ的粘度都会影响消化酶的活性［２４］。
图１　２３犱仔猪消化道不同部位内容物中乳酸杆菌的犇犌犌犈图谱
犉犻犵．１　犇犌犌犈狆狉狅犳犻犾犲狊狅犳犾犪犮狋狅犫犪犮犻犾狌狊犮狅犿犿狌狀犻狋狔狅犫狋犪犻狀犲犱犳狉狅犿犵犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狋狉犪犮狋犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊狅狀２３犱犪狔狊
　ＣＯＮ：对照组Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ；ＦＯＳ：果寡糖组ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ；Ｍ：标记 Ｍａｒｋｅｒ；ａ，ｂ，ｃ：指每个处理组的３个重复Ｔｈｅｔｈｒｅｅｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ．　
图２　２３犱仔猪胃和回肠（犪）、结肠和盲肠（犫）内容物中乳酸杆菌犇犌犌犈图谱相似性分析
犉犻犵．２　犛犻犿犻犾犪狉犻狋狔犻狀犇犌犌犈狆犪狋狋犲狉狀狊狅犳犾犪犮狋狅犫犪犮犻犾狌狊犮狅犿犿狌狀犻狋狔狅犫狋犪犻狀犲犱犳狉狅犿狊狋狅犿犪犮犺犪狀犱犻犾犲犪犾（犪），
犮狅犾狅狀犻犮犪狀犱犮犲犮犪犾（犫）犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊狅狀２３犱犪狔狊
　Ｄ：对照组Ｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ；Ｆ：果寡糖组ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ；Ｓ：胃Ｓｔｏｍａｃｈｃｏｎｔｅｎｔｓ；Ｉ：回肠Ｉｌｅａｌｃｏｎｔｅｎｔｓ；ＣＯ：结肠Ｃｏｌｏｎｉｃｃｏｎｔｅｎｔｓ；ＣＥ：盲肠Ｃｅｃａｌｃｏｎ
ｔｅｎｔｓ；ａ，ｂ，ｃ：３个重复Ｔｈｅｔｈｒｅｅｒｅｐｌｉｃａｔｅｓ．
４６２ ＡＣＴＡＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＥＳＩＮＩＣＡ（２０１４） Ｖｏｌ．２３，Ｎｏ．２
图３　犉犗犛对仔猪胃肠道各部位乳酸杆菌多样性指数的影响
犉犻犵．３　犈犳犳犲犮狋狅犳犉犗犛狅狀犱犻狏犲狉狊犻狋狔犻狀犱犻犮犲狊狅犳犾犪犮狋狅犫犪犮犻犾狌狊犻狀
犵犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狋狉犪犮狋犮狅狀狋犲狀狋狊狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊狅狀２３犱犪狔狊
　
图４　２３犱仔猪胃肠道中乳酸杆菌的数量 （拷贝数／犵湿重）
犉犻犵．４　犜犺犲狀狌犿犫犲狉狅犳犾犪犮狋狅犫犪犮犻犾狌狊犻狀犵犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狋狉犪犮狋犮狅狀狋犲狀狋狊
狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊狅狀２３犱犪狔狊（犮狅狆犻犲狊／犵狑犲狋狑犲犻犵犺狋）　
３．３　ＦＯＳ对断奶前仔猪胃肠道内容物中ＶＦＡｓ和乳酸含量的影响
寡糖能被肠道微生物发酵或部分发酵后产生ＶＦＡｓ，这些小分子酸可为动物提供能量、抵御病原微生物和维
持肠道健康［２５２６］。本研究结果显示，两组仔猪盲肠和结肠中乙酸、丙酸、丁酸和ＴＶＦＡ均明显高于胃和回肠，其
原因与前、后肠微生物数量、种类及微生态环境不一致所导致的近端肠道乳酸发酵为主，远端肠道ＶＦＡｓ为主有
关，有报道表明猪前、后肠中的微生物数量分别为１０８ 和１０１１ｃｆｕ／ｇ。结果还显示，ＦＯＳ促进了仔猪胃肠道中乙
酸、丙酸、丁酸和ＴＶＦＡ产生，其中ＦＯＳ组乙酸和ＴＶＦＡ浓度在上述４个部位中均显著高于对照，ＦＯＳ组仔猪
回肠和结肠丙酸浓度显著高于对照，ＦＯＳ组仔猪盲肠丁酸浓度显著高于对照，说明ＦＯＳ在胃肠道能被微生物代
谢利用产生更多的ＶＦＡｓ，但由于不同肠道部位优势微生物种类和数量不同导致ＶＦＡｓ浓度表现部位差异性，本
研究中ＶＦＡｓ占ＴＶＦＡ比例在肠道各部位的变化也充分反映了这一现象。Ｄｕｎｃａｎ等［２７］报道人和动物后肠中
含有大量犈狌犫犪犮狋犲狉犻狌犿狉犲犮狋犪犾犲，犚狅狊犲犫狌狉犻犪犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾犻狊和犉犪犲犮犪犾犻犫犪犮狋犲狉犻狌犿狆狉犪狌狊狀犻狋狕犻犻，这些微生物能把乳酸或乙
酸转化为丁酸，本研究中出现的对照组和ＦＯＳ组结肠和盲肠乳酸浓度低、乙酸比下降、丙酸比和丁酸比上升（相
对于胃和回肠）可能与这些微生物将乳酸和乙酸转化为丁酸有关，此时丁酸比例上升可能是乙酸和乳酸共同转化
的结果，而丙酸比例的上升可能与乳酸的转化有关［２８］。但 Ｈｏｕｄｉｊｋ等［４］的研究却没有发现ＦＯＳ促进后肠有机
酸产生的效果，这与ＦＯＳ的添加剂量和仔猪的年龄有关。
３．４　ＦＯＳ对断奶前仔猪胃肠道中乳酸杆菌菌群结构和数量的影响
研究表明，仔猪出生后乳酸杆菌很快便在肠道内定植并成为优势菌伴随仔猪一生，非消化性寡糖（如果寡糖）
可选择性地促进这类有益菌增殖［２９］，而被用于仔猪断奶时的日粮调控。本研究表明，在胃、回肠、盲肠和结肠
ＦＯＳ组都出现了２条对照组没有的条带，ＤＧＧＥ图谱中的条带主要反映优势菌的种、属关系，说明ＦＯＳ可选择
性地促进乳酸杆菌菌群中某些种类的细菌增殖、富集，多样性分析也发现ＦＯＳ组乳酸杆菌多样性指数高于对照
组，说明ＦＯＳ通过这种选择性地富集作用增加了乳酸杆菌种类的多样性。乳酸杆菌定量结果显示，盲肠和结肠
乳酸杆菌数量明显高于胃和回肠，说明乳酸杆菌定植有部位特异性，添加ＦＯＳ后没有明显增加仔猪肠道中乳酸
杆菌数量，说明ＦＯＳ对乳酸杆菌菌群数量影响较小，对菌群种类的影响可能更大，但这种对某些种类乳酸杆菌选
择性地富集作用不能在菌群整体数量上反映。
综上所述，ＦＯＳ能促进断奶前仔猪小肠消化吸收功能的发育，减缓固体饲料对肠壁损伤；在一定程度上提高
消化酶活性和胃肠道内容物中ＴＶＦＡ浓度；增加胃肠道中乳酸杆菌数量，提高乳酸杆菌菌群结构的多样性，促进
菌群结构的稳定，这些可能有利于提高仔猪对断奶应激的适应能力，使仔猪更好地度过断奶期。
参考文献：
［１］　ＬａｓｅｒＴＤ，ＶｉｎｄｅｃｒｏｎａＲＨ，ＪｅｎｓｅｎＴＫ，犲狋犪犾．Ｃｈａｎｇｅｓｉｎｔｈｅｃｏｌｏｎｏｆｐｉｇｓｆｅｄｄｉｆｆｅｒｅｎｔｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌｄｉｅｔａｎｄａｆｔｅｒｉｎｆｅｃｔｉｏｎ
５６２第２３卷第２期 草业学报２０１４年
ｗｉｔｈＢｒａｃｈｙｓｐｉｒａｈｙｏｄｙｓｅｎｔａｅｒｉａｅ［Ｊ］．ＡｐｐｌｉｅｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０００，６６：３２９０３２９６．
［２］　ＳｉｍｐｓｏｎＪＭ，ＭｃＣｒａｃｋｅｎＶＪ，ＧａｓｋｉｎｓＨＲ，犲狋犪犾．Ｄｅｎａｔｕｒｉｎｇｇｒａｄｉｅｎｔｇｅｌｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓａｎａｌｙｓｉｓｏｆ１６ＳｒｉｂｏｓｏｍａｌＤＮＡ
ａｍｐｌｉｃｏｎｓｔｏｍｏｎｉｔｏｒｃｈａｎｇｅｓｉｎｆｅｃａｌｂａｃｔｅｒｉａｌｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓｏｆｗｅａｎｉｎｇｐｉｇｓａｆｔｅｒｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎｏｆ犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊狉犲狌狋犲狉犻ｓｔｒａｉｎ
ＭＭ５３［Ｊ］．ＡｐｐｌｉｅｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２０００，６６：４７０５４７１４．
［３］　ＣｒｏｍｗｅｌＧＬ．Ｗｈｙａｎｄｈｏｗａｎｔｉｂｉｏｔｉｃｓａｒｅｕｓｅｄｉｎｓｗｉｎｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ［Ｊ］．ＡｎｉｍａｌＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００２，１３：７２７．
［４］　ＨｏｕｄｉｊｋＪＧ，ＶｅｒｓｔｅｇｅｎＭ Ｗ，ＢｏｓｃｈＭ Ｗ，犲狋犪犾．Ｄｉｅｔａｒｙｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓａｎｄｔｒａｎｓｇａｌａｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓｃａｎａｆｆｅｃｔ
ｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓｉｎｇｕｔｃｏｎｔｅｎｔｓａｎｄｐｏｒｔａｌｐｌａｓｍａｏｆｇｒｏｗｉｎｇｐｉｇｓ［Ｊ］．ＬｉｖｅｓｔｏｃｋＰｒｏｄｕｃｔｉｏｎＳｃｉｅｎｃｅ，２００２，７３：
１７５１８４．
［５］　ｖａｎｄｅＷｉｅｌｅＴ，ＢｏｏｎＮ，ＰｏｓｓｅｍｉｅｒｓＳ，犲狋犪犾．Ｉｎｕｌｉｎｔｙｐｅｆｒｕｃｔａｎｓｏｆｌｏｎｇｅｒｄｅｇｒｅｅｏｆｐｏｌｙｍｅｒｉｚａｔｉｏｎｅｘｅｒｔｍｏｒｅｐｒｏｎｏｕｎｃｅｄｉｎ
ｖｉｔｒｏｐｒｅｂｉｏｔｉｃｅｆｆｅｃｔｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｐｐｌｉｅｄＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００７，１０２：４５２４６０．
［６］　ＳｃｈｏｌｔｅｎｓＰＡ，ＡｌｅｓＭＳ，ＢｉｎｄｅｌｓＪＧ，犲狋犪犾．Ｂｉｆｉｄｏｇｅｎｉｃｅｆｆｅｃｔｓｏｆｓｏｌｉｄｗｅａｎｉｎｇｆｏｏｄｓｗｉｔｈａｄｄｅｄｐｒｅｂｉｏｔｉｃｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ：
ａｒａｎｄｏｍｉｓｅｄｃｏｎｔｒｏｌｅｄｃｌｉｎｉｃａｌｔｒｉａｌ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＰｅｄｉａｔｒｉｃＧａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙａｎｄＮｕｔｒｉｔｉｏｎ，２００６，４２：５５３５５９．
［７］　姜义宝，杨玉荣，冯长松，等．红三叶异黄酮对低温诱发肉鸡腹水综合症发生和抗氧化性能的影响［Ｊ］．草业学报，２０１３，
２２：９４９９．
［８］　彭宝安，高永革，王成章，等．妊娠母猪饲粮中不同苜蓿鲜草替代量对其生产性能的影响［Ｊ］．草业学报，２０１１，２０（４）：２１９
２２８．
［９］　赵芳芳，郑琛，李发弟，等．菊芋粕对泌乳奶牛的营养价值评定［Ｊ］．草业学报，２０１１，２０（６）：２６４２６９．
［１０］　王洪刚，孙延鸣，向春和．新型绿色饲料添加剂－果寡糖［Ｊ］饲料研究，２００２，（４）：２６２７．
［１１］　王亚军，吴天星，华卫东，等．低聚果糖对杜洛克仔猪生产性能的影响研究［Ｊ］．饲料研究，２０００，１：３３３５．
［１２］　车向荣，岳文斌，减建军，等．功能性低聚糖对断奶仔猪腹泻的防治及生产性能的影响［Ｊ］．中国兽医学报，２００３，２３（３）：
２９２２９４．
［１３］　ＭｉｋｋｅｌｓｅｎＬＬ，ＪｅｎｓｅｎＢＢ．Ｅｆｆｅｃｔｏｆｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓａｎｄｔｒａｎｓｇａｌａｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓｏｎｍｉｃｒｏｂｉａｌｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓａｎｄ
ｍｉｃｒｏｂｉａｌａｃｔｉｖｉｔｙｉｎｔｈｅｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔｏｆｐｉｇｌｅｔｓｐｏｓｔｗｅａｎｉｎｇ［Ｊ］．ＡｎｉｍａｌＦｅｅｄＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００４，１１７：
１０７１１９．
［１４］　ＴｒｅｖｉｓｉＰ，ＦｉｌｉｐｐｉＳＤ，ＭｉｎｉｅｒｉＬ，犲狋犪犾．ＥｆｆｅｃｔｏｆｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓａｎｄｄｉｆｆｅｒｅｎｔｄｏｓｅｓｏｆＢｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍａｎｉｍａｌｉｓｉｎａ
ｗｅａｎｉｎｇｄｉｅｔｏｎｂａｃｔｅｒｉａｌｔｒａｎｓｌｏｃａｔｉｏｎａｎｄＴｏｌｌｉｋｅｒｅｃｅｐｔｏｒｇｅｎｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ，２００８，２４：１０２３１０２９．
［１５］　ＭｉｋｋｅｌｓｅｎＬＬ，ＪａｋｏｂｓｅｎＭ，ＪｅｎｓｅｎＢＢ．Ｅｆｆｅｃｔｏｆｄｉｅｔａｒｙｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓｏｎｍｉｃｒｏｂｉａｌｄｉｖｅｒｓｉｔｙａｎｄｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅ
ｄｅｇｒａｄｉｎｇｂａｃｔｅｒｉａｉｎｆａｅｃｅｓｏｆｐｉｇｌｅｔｓｐｏｓｔｗｅａｎｉｎｇ［Ｊ］．ＡｎｉｍａｌＦｅｅｄＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，２００３，１０９：１３３１５０．
［１６］　秦为琳．应用气相色谱测定瘤胃液挥发性脂肪酸方法的研究改进［Ｊ］．南京农学院学报，１９８２，４：１１０１１６．
［１７］　ＺｏｅｔｅｎｄａｌＥＧ，ＡｋｋｅｒｍａｎｓＡＤ，ｄｅＶｏｓＷ Ｍ．Ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅｇｒａｄｉｅｎｔｇｅｌｅｌｅｃｔｒｏｐｈｏｒｅｓｉｓａｎａｌｙｓｉｓｏｆ１６ＳｒＲＮＡｆｒｏｍｈｕｍａｎ
ｆｅｃａｌｓａｍｐｌｅｓｒｅｖｅａｌｓｓｔａｂｌｅａｎｄｈｏｓｔｓｐｅｃｉｆｉｃｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓｏｆａｃｔｉｖｅｂａｃｔｅｒｉａ［Ｊ］．ＡｐｐｌｉｅｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，１９９８，
６４：３８５４３８５９．
［１８］　ＳｕＹ，ＹａｏＷ，ＰｅｒｅｚＧｕｔｉｅｒｒｅｚｂＯＮ，犲狋犪犾．１６ＳｒｉｂｏｓｏｍａｌＲＮＡｂａｓｅｄｍｅｔｈｏｄｓｔｏｍｏｎｉｔｏｒｃｈａｎｇｅｓｉｎｔｈｅｈｉｎｄｇｕｔｂａｃｔｅｒｉａｌ
ｃｏｍｍｕｎｉｔｙｏｆｐｉｇｌｅｔｓａｆｔｅｒｏｒａｌａｄｍｉｎｉｓｔｒａｔｉｏｎｏｆ犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊狊狅犫狉犻狌狊Ｓ１［Ｊ］．Ａｎａｅｒｏｂｅ，２００８，１４：７８８６．
［１９］　ＳｕＹ，ＹａｏＷ，ＰｅｒｅｚＧｕｔｉｅｒｒｅｚｂＯＮ，犲狋犪犾．Ｃｈａｎｇｅｓｉｎａｂｕｎｄａｎｃｅｏｆ犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊ｓｐｐ．ａｎｄ犛狋狉犲狆狋狅犮狅犮犮狌狊狊狌犻狊ｉｎｔｈｅｓｔｏｍ
ａｃｈ，ｊｅｊｕｎｕｍａｎｄｉｌｅｕｍｏｆｐｉｇｌｅｔｓａｆｔｅｒｗｅａｎｉｎｇ［Ｊ］．ＦＥＭＳＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙＥｃｏｌｏｇｙ，２００８，６６：５４６５５５．
［２０］　ＸｕＺＲ，ＺｏｕＸＴ，ＨｕＣＨ，犲狋犪犾．Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｅｔａｒｙｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｏｎｄｉｇｅｓｔｉｖｅｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｉｅｓ，ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｉｃｒｏｆｌｏｒａ
ａｎｄｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｆｇｒｏｗｉｎｇｐｉｇｓ［Ｊ］．ＡｓｉａｎＡｕｓａｌｉａＪｏｕｒｎａｌＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，２００２，１５：１７８４１７８９．
［２１］　ＷａｌｓｈＡＭ，ＳｗｅｅｎｅｙＴ，ＢａｈａｒＢＦ，犲狋犪犾．Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｏｆｃｈｉｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎｏｎｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ，ｓｅ
ｌｅｃｔｅｄｍｉｃｒｏｂｉａｌｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ，ｖｏｌａｔｉｌｅｆａｔｔｙａｃｉｄｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓａｎｄｉｍｍｕｎｅｇｅｎｅｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎｉｎｔｈｅｗｅａｎｅｄｐｉｇ［Ｊ］．Ａｎｉｍａｌ，
２０１２，６：１６２０１６２６．
［２２］　ＳｉｓｓｏｎｓＪＷ．Ｐｏｔｅｎｔｉａｌｏｆｐｒｏｂｉｏｔｉｃｏｒｇａｎｉｓｍｓｔｏｐｒｅｖｅｎｔｄｉａｒｒｈｅａａｎｄｐｒｏｍｏｔｅｄｉｇｅｓｔｉｏｎｉｎｆａｒｍａｎｉｍａｌｓ：ａｒｅｖｉｅｗ［Ｊ］．Ｊｏｕｒ
ｎａｌＳｃｉｅｎｃｅＦｏｏｄＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，１９８９，４９：１１３．
［２３］　ＧａｏＬＳ．ＤｉｇｅｓｔｉｖｅＰｈｙｓｉｏｌｏｇｙａｎｄＨｅａｌｔｈＰｒｏｔｅｃｔｉｏｎ［Ｍ］．Ｂｅｉｊｉｎｇ：ＣｈｉｎａＣｕｒａｔｏｒｉａｌＳｃｉｅｎｃｅａｎｄＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙＰｒｅｓｓ，１９９８：
１７３２３０．
６６２ ＡＣＴＡＰＲＡＴＡＣＵＬＴＵＲＡＥＳＩＮＩＣＡ（２０１４） Ｖｏｌ．２３，Ｎｏ．２
［２４］　ＡｎｇｕｉａｎｏＭ，ＰｏｈｌｅｎｚＣ，ＢｕｅｎｔｅｌｏＡ，犲狋犪犾．Ｔｈｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆｐｒｅｂｉｏｔｉｃｓｏｎｔｈｅｄｉｇｅｓｔｉｖｅｅｎｚｙｍｅｓａｎｄｇｕｔｈｉｓｔｏｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙｏｆ
ｒｅｄｄｒｕｍ（犛犮犻犪犲狀狅狆狊狅犮犲犾犾犪狋狌狊）ａｎｄｈｙｂｒｉｄｓｔｒｉｐｅｄｂａｓｓ（Ｍｏｒｏｎｅｃｈｒｙｓｏｐｓ３犕．狊犪狓犪狋犻犾犻狊）［Ｊ］．ＢｒｉｔｉｓｈＪｏｕｒｎａｌｏｆＮｕｔｒｉｔｉｏｎ，
２０１３，１０９：６２３６２９．
［２５］　ｖｏｎＨｅｉｍｅｎｄａｈｌＥ，ＢｒｅｖｅｓＧ，ＡｂｅｌＨ．Ｆｉｂｅｒｒｅｌａｔｅｄｄｉｇｅｓｔｉｖｅｐｒｏｃｅｓｓｅｓｉｎｔｈｒｅｅｄｉｆｆｅｒｅｎｔｂｒｅｅｄｓｏｆｐｉｇｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉ
ｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，２０１０，８８：９７２９８１．
［２６］　ＵｒｒｉｏｌａＰＥ，ＳｔｅｉｎＨＨ．Ｅｆｆｅｃｔｓｏｆｄｉｓｔｉｌｅｒｓｄｒｉｅｄｇｒａｉｎｓｗｉｔｈｓｏｌｕｂｌｅｓｏｎａｍｉｎｏａｃｉｄ，ｅｎｅｒｇｙ，ａｎｄｆｉｂｅｒｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙａｎｄｏｎ
ｈｉｎｄｇｕｔｆｅｒｍｅｎｔａｔｉｏｎｏｆｄｉｅｔａｒｙｆｉｂｅｒｉｎａｃｏｒｎｓｏｙｂｅａｎｍｅａｌｄｉｅｔｆｅｄｔｏｇｒｏｗｉｎｇｐｉｇｓ［Ｊ］．ＪｏｕｒｎａｌｏｆＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，２０１０，
８８：１４５４１４６２．
［２７］　ＤｕｎｃａｎＳＨ，ＬｏｕｉｓＰ，ＦｌｉｎｔＨＪ．Ｌａｃｔａｔｅｕｔｉｌｉｚｉｎｇｂａｃｔｅｒｉａ，ｉｓｏｌａｔｅｄｆｒｏｍｈｕｍａｎｆｅｃｅｓ，ｔｈａｔｐｒｏｄｕｃｅｂｕｔｙｒａｔｅａｓａｍａｊｏｒｆｅｒ
ｍｅｎｔａｔｉｏｎｐｒｏｄｕｃｔ［Ｊ］．ＡｐｐｌｉｅｄＥｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，２００４，７０：５８１０５８１７．
［２８］　杭苏琴，毛胜勇，于卓腾．体外法评定甘露寡糖和甜菜汁对肠道微生物发酵的影响［Ｊ］．南京农业大学学报，２００７，３０（１）：
７９８３．
［２９］　ＫｏｎｓｔａｎｔｉｎｏｖＳＲ，ＦａｖｉｅｒＣＦ，ＺｈｕＷＹ，犲狋犪犾．ＭｉｃｒｏｂｉａｌｄｉｖｅｒｓｉｔｙｓｔｕｄｙｏｆｔｈｅｐｏｒｃｉｎｅＧＩｔｒａｃｔｄｕｒｉｎｇｔｈｅｗｅａｎｉｎｇｔｒａｎｓｉ
ｔｉｏｎ［Ｊ］．ＡｎｉｍａｌＲｅｓｅａｒｃｈ，２００４，５４：３１７３２４．
犈犳犳犲犮狋狊狅犳犳狉狌犮狋狅狅犾犻犵狅狊犪犮犮犺犪狉犻犱犲狊狅狀犿狌犮狅狊犪犾犿狅狉狆犺狅犾狅犵狔，犱犻犵犲狊狋犻狏犲犲狀狕狔犿犲犪犮狋犻狏犻狋狔，狅狉犵犪狀犻犮
犪犮犻犱犪狀犱犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊狅犳狋犺犲犵犪狊狋狉狅犻狀狋犲狊狋犻狀犪犾狋狉犪犮狋狅犳狌狀狑犲犪狀犲犱狆犻犵犾犲狋狊
ＨＡＮＧＳｕｑｉｎ，ＳＨＩＱｉ，ＤＩＮＧＬｉｒｅｎ，ＺＨＵ Ｗｅｉｙｕｎ
（ＬａｂｏｒａｔｏｒｙｏｆＧａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ，ＮａｎｊｉｎｇＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｎａｎｊｉｎｇ２１００９５，Ｃｈｉｎａ）
犃犫狊狋狉犪犮狋：Ｓｉｘｌｉｔｔｅｒｓ（８－１１ｐｉｇｌｅｔｓｐｅｒｌｉｔｔｅｒ）ｏｆｈｅａｌｔｈｙｎｅｏｎａｔａｌｃｒｏｓｓｅｄｂｒｅｄｐｉｇｌｅｔｓ（Ｄｕｒｏｃ×Ｌａｎｄｒａｃｅ×
Ｙｏｒｋｓｈｉｒｅ）ｗｅｒｅｒａｎｄｏｍｌｙｄｉｖｉｄｅｄｉｎｔｏａｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐａｎｄｔｒｅａｔｍｅｎｔｇｒｏｕｐ．Ｅａｃｈｇｒｏｕｐｗａｓｃｏｍｐｏｓｅｄｏｆ
ｔｈｒｅｅｌｉｔｔｅｒｓ，ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇｔｒｉｐｌｉｃａｔｅｓ．Ｔｈｅａｎｉｍａｌｓｉｎｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐｗｅｒｅｏｆｆｅｒｅｄｒｅｇｕｌａｒｓｔａｒｔｅｒｆｅｅｄ，ｗｈｉｌｅ
ｔｈｏｓｅｉｎｔｈｅｔｒｅａｔｍｅｎｔｇｒｏｕｐｗｅｒｅｆｅｄｓｔａｒｔｅｒｆｅｅｄｗｉｔｈ１％ｒｅｐｌａｃｅｍｅｎｔｏｆｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ（ＦＯＳ）（ｂｙ
ｄｒｙｍａｔｔｅｒ％）ａｔ７ｄａｙｓａｆｔｅｒｂｉｒｔｈ．Ｔｈｅｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔｗａｓｅｎｄｅｄ２３ｄａｙｓ（ｗｅａｎｉｎｇ）ａｆｔｅｒｂｉｒｔｈ．Ａｔ７ａｎｄ２３
ｄａｙｓ，ｏｎｅｐｉｇｌｅｔｆｒｏｍｅａｃｈｔｒｉｐｌｉｃａｔｅｗａｓｓｌａｕｇｈｔｅｒｅｄ．Ｐａｎｃｒｅａｓ，ｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｔｒａｃｔ（ＧＩＴ）ｔｉｓｓｕｅｓａｎｄｄｉｇｅｓ
ｔａｗｅｒｅｃｏｌｅｃｔｅｄｔｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｅｆｆｅｃｔｓｏｆＦＯＳｏｎｍｕｃｏｓａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ，ｄｉｇｅｓｔｉｖｅｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｙ，ｏｒｇａｎｉｃａｃｉｄ
ａｎｄ犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊ｏｆｔｈｅＧＩＴｏｆｕｎｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓ．Ｔｈｅｒｅｓｕｌｔｓｓｈｏｗｅｄｔｈａｔｔｈｅｖｉｌｉｈｅｉｇｈｔａｎｄｔｈｅｒａｔｉｏｏｆｖｉｌ
ｌｕｓｈｅｉｇｈｔａｎｄｃｒｙｐｔｄｅｐｔｈｗｅｒｅｉｎｃｒｅａｓｅｄｂｙＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔｉｎｔｈｅｊｅｊｕｎａｌａｎｄｉｌｅｕｍ （犘＜０．０５）．Ｔｈｅｈｉｇｈｅｓｔ
ａｍｙｌａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙｗａｓｉｎｔｈｅｐａｎｃｒｅａｓａｎｄｄｕｏｄｅｎｕｍｏｆｔｈｅＦＯＳｇｒｏｕｐ（犘＜０．０５）．Ｌｉｐａｓｅａｎｄｐｒｏｔｅａｓｅａｃｔｉｖｉｔｙ
ｗｅｒｅｎｏｔｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙｈｉｇｈｅｒｉｎｔｈｅＦＯＳｇｒｏｕｐｔｈａｎｉｎｔｈｅｃｏｎｔｒｏｌｇｒｏｕｐ（犘＞０．０５）．ＨｉｇｈｅｒＶＦＡｓ（ｖｏｌａｔｉｌｅ
ｆａｔｔｙａｃｉｄｓ）ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓｉｎｔｈｅＧＩＴａｎｄｌｏｗｅｒｌａｃｔｉｃａｃｉｄｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓｉｎｔｈｅｓｔｏｍａｃｈｗｅｒｅｏｂｓｅｒｖｅｄｉｎｔｈｅ
ＦＯＳｔｒｅａｔｍｅｎｔ（犘＜０．０５）．Ｔｈｅｎｕｍｂｅｒ，ｓｉｍｉｌａｒｉｔｙａｎｄｄｉｖｅｒｓｉｔｙｏｆ犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊ｃｏｍｍｕｎｉｔｉｅｓｗｅｒｅａｌｓｏｉｎ
ｃｒｅａｓｅｄｂｙＦＯＳｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎ．Ｔｈｅｆｉｎｄｉｎｇｓｉｍｐｌｙｔｈａｔｔｈｅｓｍａｌｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔｏｆ
ｕｎｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓ，ｔｈｅａｃｔｉｖｉｔｉｅｓｏｆｄｉｇｅｓｔｉｖｅｅｎｚｙｍｅｓ，ａｎｄＶＦＡｓｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｉｎｇａｓｔｒｏｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｃｏｎｔｅｎｔｓｗｅｒｅ
ｉｍｐｒｏｖｅｄｂｙＦＯＳａｄｄｉｔｉｏｎ．ＦＯＳｃａｎｂｅｕｔｉｌｉｚｅｄｂｙｓｏｍｅｓｐｅｃｉｅｓｏｆ犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊，ｗｈｉｃｈｅｎｈａｎｃｅｓｔｈｅｓｔａｂｉｌｉｔｙ
ｏｆｍｉｃｒｏｂｉａｌｃｏｍｍｕｎｉｔｙｓｔｒｕｃｔｕｒｅｉｎｔｈｅＧＩＴｏｆｕｎｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓ，ｒｅｓｕｌｔｉｎｇｉｎａｂｅｎｅｆｉｃｉａｌｃｏｎｔｒｉｂｕｔｉｏｎｔｏｔｈｅ
ｅｎｔｅｒｉｃｈｅａｌｔｈｏｆｐｉｇｌｅｔｓａｎｄａｐｏｓｓｉｂｌｅｓｍｏｏｔｈｔｒａｎｓｉｔｉｏｎａｔｗｅａｎｉｎｇ．
犓犲狔狑狅狉犱狊：ｕｎｗｅａｎｅｄｐｉｇｌｅｔｓ；ｆｒｕｃｔｏｏｌｉｇｏｓａｃｃｈａｒｉｄｅｓ；ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ；ｄｉｇｅｓｔｉｖｅｅｎｚｙｍｅａｃｔｉｖｉｔｙ；ｏｒ
ｇａｎｉｃａｃｉｄ；犔犪犮狋狅犫犪犮犻犾犾狌狊
７６２第２３卷第２期 草业学报２０１４年